Микоплазмоз у кошек опасность для других кошек: [стоит ли бояться, как уберечь]

Автор: | 18.09.1983

Содержание

Микоплазмоз кошек | Круглосуточная ветеринарная клиника Фауна

Микоплазмоз – это один из видов инфекционных заболеваний кошек, характеризующийся поражением дыхательной системы животного. Кроме того, микоплазмоз кошек может стать причиной конъюнктивита, заболеваний опорно-двигательного аппарата и мочеполовой системы. Носителями инфекции по разным данным является от 60 до 80% всех кошек, но это не значит, что каждая из них обязательно заболеет микоплазмозом. Чаще всего болезнь проявляется как последствие стресса, сниженного иммунитета и т.д.

Микоплазмоз кошек – возбудители заболевания и его источники

Возбудителем микоплазмоза могут быть различные виды прокариотических микроорганизмов, но наиболее широко распространены Micoplasma gatae и Micoplasma felis. Общими признаками всех микоплазм являются небольшие размеры, устойчивость к антибиотикам пенициллиновой группы и высокая чувствительность к тетрациклину.

Микоплазмоз кошек имеет множество путей распространения – от воздушно-капельного до полового и бытового.

Именно поэтому источником и разносчиком заболевания могут быть, как больные или только что переболевшие животные, так и общие предметы быта – миски, подстилки, игрушки и т.д.

Инкубационный период заболевания может колебаться от трёх дней до пяти недель, но в большинстве случаев равен восьми -десяти дням. На первом этапе микоплазмоз кошек никак не проявляет себя, что особенно опасно при питомниковом содержании животных, так как существует опасность заражения всех особей.

Симптомы заболевания

Наиболее часто микоплазмоз кошек проявляется в виде конъюнктивитов различной тяжести, но существуют и другие признаки этого заболевания:

Повышенная температура и лихорадочные состояния.

Ринит (чихание).

Снижение аппетита или полный отказ от еды.

Низкая активность животного – кошка неохотно двигается, не реагирует на зов и т.д.

В запущенных случаях может наблюдаться припухлость и болезненность суставов.

При появлении любого из вышеперечисленных симптомов, необходимо показать животное ветеринарному врачу, который сможет поставить правильный диагноз и назначить лечение. Помните, что занимаясь самостоятельным лечением животного, вы рискуете ещё больше подорвать его здоровье.

Диагностика и лечение микоплазмоза кошек

Диагностируется микоплазмоз кошек на основании анализа крови животного, а также данных лабораторных исследований конъюнктивальных смывов и смывов со слизистых мочеполовых органов. Кроме того, для постановки правильного диагноза необходим и клинический осмотр кошки.

Так же как и диагностика, лечение назначается ветеринарным врачом на основании проведённых исследований. Как правило, для снятия острых симптомов достаточно нескольких дней. Хуже обстоит дело с лечением хронического микоплазмоза – оно может занять несколько месяцев. Хотя в большинстве случаев животное удаётся вернуть к нормальной жизни.

Профилактика микоплазмоза кошек

В настоящее время вакцины от микоплазмоза кошек не существует, но это не значит, что профилактические мероприятия невозможны.

К профилактике микоплазмоза относится:

Сбалансированная диета.

Поддержание иммунитета животного.

Ежегодная вакцинация кошки от различных заболеваний.

Профилактические посещения ветеринарного врача.

Выполняя весь комплекс мер, направленных на профилактику микоплазмоза, вы сможете уберечь свою кошку не только от данного заболевания, но и от многих других болезней.

Микоплазмоз у кошек симптомы и лечение, опасность для человека, препараты и диагностика

Микоплазмоз у кошек — серьёзное заболевание инфекционной природы, инициируемое возбудителями рода «Mycoplasma».

Болезнь поражает многие органы и системы в организме животного.

Наиболее «яркие», «красочные» и специфические симптомы течения заболевания отмечают по состоянию дыхательной, половой и мочевыводящей системы животных.

Микоплазмоз чаще протекает в скрытой форме, поэтому заметить и диагностировать его сложная задача, посильная исключительно ветеринарному врачу или прочему квалифицированному работнику ветеринарной клиники.

Даже самый внимательный, учтивый, заботливый и любящий хозяин самостоятельно не в силах выявить эту форму болезни, а тем более — самостоятельно вылечить её.

ОГЛАВЛЕНИЕ:

Ещё одна опасность этой инфекции — полное отсутствие профилактических мероприятий. Вакцины против микоплазмоза на современном рынке ветеринарных препаратов не существует.

Симптомы проявляются вяло, ведь болезнь преимущественно характеризуется скрытой формой течения.

Симптоматический ряд различен и разнообразен, специфические проявления заболевания отсутствуют.

Косвенными признаками поражения кошки этой инфекцией служат:

  1. Прозрачные водянистые или мутные выделения из глаз, слезотечение.
  2. Симптоматические проявления простуды: насморк, тяжёлое дыхание, одышка, кашель (сухой, влажный или смешанный), риниты, сопряжённые с конъюнктивитами.
  3. Конъюнктива имеет красноватый, гиперемированный оттенок, третье веко выглядит опухшим.
  4. Развитие вторичных бронхитов и пневмоний.
  5. Развитие бесплодия у кошек, выкидыши, а также появление на свет мертворождённых котят.
  6. На фоне микоплазмоза часто развиваются вторичные заболевания мочевыводящей и половой системы: циститы, уроциститы; у самок — вагиниты, эндометриты; у самцов — простатиты и уретриты.
  7. Редко возбудитель поражает костную ткань, влияя на состояние тазобедренных и локтевых суставов. Часто у больных животных отмечается хромота, болезненность при пальпации, нарушения координации.
  8. Локальное или глобальное облысение иногда сопровождает микоплазмозы, но также может являться симптомом другой болезни — лишая, аллергии, дерматита.
  9. При заболевании температура тела чаще колеблется в пределах нормы, но иногда повышается на незначительные 0,5 — 1 градус.

Схема лечения болезни

Лечение микоплазмоза у кошек назначается исключительно лечащим ветеринарным врачом, он же должен определять дозировки вводимых препаратов.

При составлении схемы лечения не следует слушать соседей, заводчиков, и прочих людей, слабо разбирающихся в механизме течения заболевания.

Только в клинике, после проведения всех диагностических и лабораторных исследований, анализов, ветеринарный врач сможет дать верное заключение о состоянии животного, его болезнях и факторах, способствующих выздоровлению.

Как лечить микоплазмоз:

  1. Антибиотики широкого спектра действия (цефатриаксон, бициллин-3, бициллин-5).
  2. Препараты, убирающие симптоматические проявления вторичных болезней (отхаркивающие, жаропонижающие, противокашлевые и т. д.).
  3. Поддерживающая терапия (иммуномодуляторы, противовоспалительные, введение внутривенно глюкозы или раствора Рингера-Локка).
  4. Гепатопротекторы (препараты, поддерживающие состояние и ферментативную активность печени, страдающей от избыточного введения антибиотиков и прочих лекарственных средств химического и синтетического происхождения).
  5. Пробиотики, облегчающие работу желудочно-кишечного тракта.

 
 
Вылечить заболевание можно только при условии ответственного подхода ветеринарного врача к оценке состояния животного, верно прочитанного анализа и поставленного диагноза, правильно назначенного лечения.
 
 

Передаётся ли человеку?

Опасен ли микоплазмоз кошек для человека? Сложно сказать.

Согласно данным исследований врачей, существует шесть видов микоплазмозов, у кошек же встречаются только два из них, полностью безопасные для человека.

Микоплазмоз кошачьих по этим данным заразен только для других кошек, и не затрагивает прочие виды домашних питомцев.

Но даже несмотря на это, в практике медицинских работников встречались случаи, когда люди могли заразиться этой болезнью от кошки.

Чаще всего это были люди со слабым иммунитетом, ослабленные после болезни, химиотерапии. Случаи заболевания беременных женщин микоплазмозом не зарегистрированы.

 
 
Основным методом профилактики этого заболевания у людей считают соблюдение элементарных правил и норм личной гигиены при контакте с больной кошкой или предметами ухода за ней.

 
 

Осложнения после заболевания

При своевременном выявлении заболевания и верно назначенном лечении осложнения не наблюдаются. Сделать это не так просто, ведь диагностика часто затруднена.

При затяжных формах течения микоплазмозов, последствия болезни более выражены и представлены преимущественно:

  1. Незначительными нарушениями в работе сердечно-сосудистой системы (аритмии — тахикардия и брадикардия, сердечный выпот, редко — перикардит).
  2. Хроническими артритами и артрозами.
  3. Болезнями печени (гепатит, гепатоз), желудка (язва, гастрит), общими нарушениями в работе желудочно-кишечного тракта (частые запоры, поносы, реже — тошнота и рвота).
  4. Болезнями почек, нефросклерозом (почечной недостаточностью).

Как передаётся недуг?

Микоплазмоз передаётся воздушно-капельным путём, поэтому заболеть могут даже те животные, что живут в квартире и даже не «высовываются» на улицу.

Патогенные микроорганизмы может принести хозяин, на своей обуви, одежде, коже и волосах. Они, попав в квартиру, выбирают «жертву» и постепенно начинают атаковать организм кошки.

Интересный факт: у животных с хорошим иммунитетом и высокой скоростью обменных процессов в организме на порядок выше шанс избежать этого недуга.

Коронавирус у кошек: симптомы и лечение

Вирусная болезнь кошек, отличающаяся средней степенью заразности, характеризующаяся нетяжелым поражением желудочно-кишечного тракта и иногда приводящая к развитию отдельного заболевания – инфекционного перитонита кошек.

Не опасна для человека.

Вызывается РНК-содержащим вирусом из семейства коронавирусов.

Как кошка может заразиться коронавирусом?

Путь заражения коронавирусом – через рот (так называемый алиментарный способ передачи вирусов). Здоровой кошке достаточно полизать что-то, на поверхности чего есть вирусы, или вылизать себе лапы и другие части тела, на которые попали вирусы.

Основной источник заражения – больные и переболевшие кошки, которые активно выделяют вирусы с калом. Основной способ передачи – прямой контакт. Но надо понимать, что вместе с мельчайшими частицами кала вирусы разносятся повсюду – больные кошки при вылизывании разносят их по всей своей шерсти. Поэтому все, обо что трется больная кошка, и где с нее падает шерсть – эта места скопления вирусов. Заражена бывает вся подстилка больного животного, его миски, источником инфекции могут служить руки хозяина больной кошки, его одежда (если кошка об нее трется или вы берете ее на руки). В теплых и влажных условиях (в помещении) вирус может выживать до 1 года, на улице его убивает сильная жара летом и холод зимой. Поэтому основные вспышки этого заболевания приходятся на весенний и осенний период.

Когда кошка заболеет?

Коронавирус не отличается большой степенью заразности (вирулентности), то есть если вирус попал в организм кошки, она может заболеть, а может и не заболеть. Это зависит от общего состояния здоровья кошки, одновременного переболевания другим заболеванием, поражающим желудочно-кишечный тракт или иммунную систему, возраста, а также от степени заразности (вирулентности) конкретного штамма вируса, которым кошка заразилась. Период от попадания вируса в кошку до проявления у нее признаков заболевания называется инкубационным периодом, этот период для коронавирусной инфекции составляет от 2 до 14 дней.

В некоторых случаях возможен третий вариант: вирус, попавший в организм кошки, не вызовет у нее клинических симптомов, однако она останется пожизненным носителем коронавируса и будет существовать опасность заражения от нее других кошек.

Симптомы заболевания коронавирусом у кошек

Вирус, попавший на слизистую ротовой полости или желудочно-кишечного тракта кошки, размножается там, что может протекать как вообще бессимптомно, так и сопровождаться диареей или размягчением стула. Возможно также вкрапление капель крови в нормальный стул или же периодическая диарея, перемежающая периодами нормального стула. Симптомы заболевания коронавирусом со временем проходят или сами по себе, или в результате лечения; однако заболевшее животное остается пожизненным носителем коронавируса.

Как врач ставит диагноз?

Сначала врач соберет всю информацию (анамнез) — откуда животное, когда оно заболело. После этого врач проведет осмотр животного – измерит температуру, оценит цвет слизистых оболочек, степень обезвоживания, прослушает сердце и легкие, прощупает живот. Для подтверждения диагноза из прямой кишки берется смыв на ПЦР-исследование (этим методом обнаруживают в кале участки РНК коронавируса). Также врач может провести УЗИ органов брюшной полости для оценки перистальтики кишечника.

Лечение коронавирусной инфекции у кошек

Главное, что надо понимать – что лечения, направленного против возбудителя болезни – коронавируса у кошек – на данный момент не существует. Поэтому мы применяем у кошек симптоматическое лечение (лечение, направленное на устранение симптомов заболевания коронавирусом), позволяющее стабилизировать состояние животного и дождаться, пока организм справится с вирусом самостоятельно.

При легком течении заболевания обычно ограничиваются препаратами, улучшающими состояние стула (смекта, энтеросгель).

При сильно выраженном поносе для лечения коронавирусного энтерита могут потребоваться капельницы для борьбы с обезвоживанием у кошки и антибиотики широкого спектра действия для борьбы с условно патогенными бактериями. Для стимуляции нормальной перистальтики кишечника при его атонии (отсутствии перистальтики) или наличии обратной перистальтики применяются прокинетики. Для защиты слизистой от действия соляной кислоты желудка используют препараты для снижения выработки соляной кислоты.

Сколько кошка остается заразной после выздоровления?

К сожалению, абсолютное большинство кошек, переболевших коронавирусной инфекцией, остаются заразными пожизненно. Процент животных, полностью избавившихся от вируса, крайне низок. Поэтому, даже после выздоровления такой кошки, вы должны относиться к ней, как к потенциально заразной, и соблюдать все меры профилактики распространения инфекции.

Как можно профилактировать заболевание коронавирусом?

Существует несколько разработанных вакцин, но WSAVA (Международная ветеринарная ассоциация мелких животных) не рекомендует ни одну из них из-за недоказанности их профилактического эффекта. Поэтому на первый план выходит профилактика перезаражения животных в условиях их группового содержания. Она включает в себя дезинфекцию предметов ухода после больных животных (клеток, мисок и другого инвентаря), мытье рук персоналом и использование средств защиты (перчаток, халатов и бахил), а также грамотная фиксация животных при манипуляциях, не допускающая попадания шерсти на одежду персонала.

Для уничтожения вируса используются хлорсодержащие соединения (хлорка и другие дез. средства, содержащие хлор), а также соединения, содержащие гипохлорит натрия («Белизна»). Время обработки этими растворами от пяти до пятнадцати минут.

Также ветеринарные врачи рекомендуют для профилактики коронавируса стерилизовать домашних котов и кошек, гуляющих на улице, так как это снижает частоту их контактов с другими животными и, таким образом, уменьшает вероятность заражения.

Чем опасен коронавирус ?

В процессе жизни кошки, являющейся носителем коронавируса, этот вирус может мутировать и вызвать крайне опасное заболевание – инфекционный перитонит кошек (ФИП, FIP). Заболевание это, к сожалению, лечению не поддается и приводит к летальному исходу в 100% случаев. Такая мутация вируса и связанная с ней болезнь поражает примерно 10% процентов зараженных коронавирусом кошек. Наиболее часто инфекционный перитонит кошек случается с котятами до шести месяцев. У кошек до трех лет, зараженных коронавирусом, вероятность этого смертельного заболевания также повышена. Дополнительным фактором риска также является совместное содержание более трех кошек – носителей коронавируса.

Необходимо, тем не менее, понимать, что 10% — это не такая большая вероятность, так что большинство зараженных коронавирусом кошек проживет свою жизнь, так и не заболев инфекционным перитонитом.

Установлено, что дополнительным фактором развития инфекционного перитонита кошек может быть серьезный стресс у животного, зараженного коронавирусом. Например, это может быть другое серьезное заболевание (поэтому к вакцинации животных, зараженных коронавирусом, нужно подходить особенно тщательно), либо серьезная операция (поэтому перед операциями у таких животных всегда надо тщательно взвешивать пользу и возможный риск), либо длительный ремонт в доме, скученное содержание и т.п.

Как может проявляться инфекционный перитонит кошек?

Мутировавшие коронавирусы подвергаются атакам специфических клеток иммунной системы – макрофагов. Уничтожить мутировавший вирус макрофагу не удается, и он прилипает к вирусной частице. Процесс продолжается дальше, в результате чего собираются крупного размера глобулы из макрофагов и вирусной частицы. Размеры таких глобул сравнимы с размерами капилляров. В результате насыщения капилляров такими глобулами либо повышается проницаемость капиллярных стенок для жидкости (вследствие механического воздействия на них), либо просто затрудняется кровоток. Первый вариант развития событий приводит к выделению жидкости из капилляров (а также лимфатических сосудов) в грудную или брюшную полость (так называемая влажная форма инфекционного перитонита). Затруднение кровотока приводит к так называемой сухой форме инфекционного перитонита: нарушению питания самых различных органов и, в результате, к полиорганной недостаточности (то есть к последовательному отказу органов).

Влажная форма инфекционного перитонита проявляется:

— в случае скопления жидкости в грудной клетке – затруднением дыхания, посинением языка, дыханием с открытым ртом, общей вялостью и отказом от еды;

— в случае скопления жидкости в брюшной полости – увеличением объема живота, общей вялостью и отказом от еды.

Сухая форма инфекционного перитонита кошек характеризуется общей вялостью, отказом от еды и симптомами, характерными для поражения различных органов. Например, в случае отказа печени может обнаруживаться желтушность слизистых оболочек и кожи, а в случаях поражения нервной системы – судороги, нарушение координации движений и тики.

К сожалению, как мы уже говорили, ни один из современных способов лечения не приводит к выздоровлению или даже к существенному продлению жизни животного; все эти способы имеют паллиативный характер.

Микоплазмоз у кошки симптомы и лечение

Микоплазмоз у кошек – это тяжелая инфекционная болезнь, требующая вмешательства ветеринарных врачей. Даже если владелец уверен в диагнозе, кошку просто необходимо срочно показать ветеринару. Ветеринарный врач может провести диагностику и дать лечение, учитывая индивидуальность кошки — ее породу, вес, состояние здоровья. Диагностика важна — поскольку при различных возбудителях заболевания — различное лечение. Всего две микоплазмы вызывают болезнь: Mycoplasma Felis и Mycoplasma Gatae. Микоплазмоз у кошек симптомы и лечение микоплазмоза кошек — тема нашей статьи.

Как возникает микплазмоз у кошек

Возбудители болезни микоплазмы — это одноклеточные микроорганизмы, которые, попадая в организм, прикрепляются к клеткам и начинают паразитировать на них. Наибольшая опасность для животного связана с продуктами жизнедеятельности микоплазм. Основные возбудители болезни именно у кошек — это Mycoplasma Gatae и Mycoplasma Felis. Микоплазмоз у взрослой кошки можно увидеть часто. Этим заболеванием страдают не только домашние кошки, но и часто бездомные кошки.  Бактерии микоплазмы размножаются в организме и отравляют организм кошки.


Микоплазмы отличаются по воздействию на организм. Mycoplasma Gatae, например, вызывает у кошки полиартрит. Mycoplasma Felis атакует не только суставы, но и половую систему, и печень.  Заражение вначале проявляется в форме насморка, а если случай запущенный, то может возникнуть пневмония и даже отек легких. Нередок и летальный исход.

Любая кошка может быть носителем болезнетворных микроорганизмов. Но если иммунитет кошки ослаблен, то микоплазмы начинают активно размножаться. Именно снижение иммунитета, плохое питание или не достаточный уход за кошкой — приводят к заболеванию. Вот почему чаще всего страдают бездомные кошки. Механизмы передачи: воздушно-капельный, половой, нисходящий — от мамы кошки к котятам. Однако есть и хорошая новость — микоплазмоз хорошо поддается лечению.

Симптомы микоплазмоза кошки

Микоплазмоз у кошки или кота хозяин может начать подозревать тогда, когда у кошки начнется любой из перечисленных ниже симптомов:

  • Слезящиеся, красные и отекшие глаза
  • Чихание, насморк
  • Кашель
  • Дыхание, особенно если оно сопровождается свистом и/или хрипом.

Если иммунитет у животного сильный, то симптомы могут на время исчезнуть даже при отсутствии лечения. Но это вовсе не означает, что кошка вылечилась. Просто микоплазмоз перешел в хроническую  вялотекущую форму. Опасность микоплазмоза для кошек в том, что микобактерии разрушительно воздействуют на легкие. Так скорость поражения поражает — сначала кошка чихает, через короткое время развивается бронхит, потом пневмония, отек легких и летальный исход. Вот почему важно как можно быстрее привезти кошку в ветклинику.


Если же микоплазмы проникают в мочеполову систему, то они провоцируют вагинит, цистит,  эндометрит. Коты мучаются от простатита и уретрита. Суставы кошки разъедаются и появляется артрит. Пищеварение резко нарушается. Понос чередуется с запорами. Вскоре выделения из глаз, носа, уретры становятся гнойными. Кожа кошки может начать менять цвет, мокнуть, изъязвляться, а вокруг язв выпадать шерсть.

Быстрее всего заражаются котята и молодые кошки и коты до 2 лет. Беременная кошка в 100% случаях передает инфекцию потомству. Если не начать лечение, то котята могут родиться с различными патологиями, а взрослая кошка может лишиться зрения, обоняния, получить повреждение внутренних органов. 

Бессимптомный микоплазмоз у кошек

Явная симптоматика микоплазмоза при заражении кошки встречается не всегда. Иногда можно встретить так называемый бессимптомный микоплазмоз кошки — когда внешних признаков нет или почти нет, а кошка вдруг начинает прихрамывать. В этом случае нужно наблюдать за кошкой — любые изменения ее поведения, привычек должны вызвать подозрения у хозяина. Но все-таки, даже при недифференцированном  микоплазмозе можно увидеть, что животное стало больше спать, отмечается слабость и вялость. Конечно, возможно причина и не в микоплазмозе — в этом случае лабораторные анализы помогут вам разобраться с состоянием кошки. Вот почему важно делать плановые осмотры кошки у ветеринара.

Лечение кошки

Первое, что нужно сделать, при подозрении на микоплазмоз – посетить ветклинику. Диагностика микоплазмоза кошки сложна технически, так как микобактерии умеют подражать здоровым клеткам.

 Поэтому ветеринарный врач в ветклинике может назначить вам следующие анализы:

  1. Мазок с конъюнктивы
  2. ПЦР-анализ смывов с верхних дыхательных путей.
  3. ИФА-анализ крови, чтобы идентифицировать вирус.

Когда результаты будут готовы, врач сможет назначить оптимальную схему лечения. Диагностика микоплазмоза у кошек (симптомы) и лечение будут тем более эффективны, чем ранее хозяин кошки обратится в ветеринарную клинику.Возможно, что анализы покажут наличие и других, сопутствующих инфекций.

Это бывает очень часто, ведь микоплазмоз возникает при ослабленном иммунитете, поэтому вполне может соседствовать и несколько других инфекций. Тогда необходимо вести лечение микоплазмоза у кошки с учетом общей картины состояния здоровья.

Лечение микоплазмоза у кошек

Пока вакцины от микоплазмоза не существует, а терапия является длительной. Лечение микоплазмоза должно быть комплексным с учетом поднятия иммунной системы кошки, а кроме того кошку ждет долгий восстановительный период, потому что кошка должна восстановить работу всех внутренних органов, поврежденных микобактериями. 

Основное лечение составляют:

  1. Иммунные лекарства, содержащие азитромицин, энрофлоксацин, офлоксацин.
  2. Антибиотики тетрациклинового ряда.
  3. Глазные капли: ронколейкин, риботан, циклоферон, иммунофан.
  4. Карсил — для поддержания функции печени.
  5. Пробиотики и пребиотики .
  6. Обезболивающие, противорвотные, противодиарейные препараты по показаниям.
  7. Интерферон.
  8. Фелиферон — для повышения резистентности клеток к микоплазмам назначают .

Может ли заразиться человек

Этот вопрос владельцы кошек часто задают ветеринару. На самом деле, насколько же опасен микоплазмоз у кошек для человека и для других видов животных? 

Считается, что для каждого вида животных имеется 1–2 опасных разновидностей микобактерий. Возбудители микоплазмоза у кошек не являются такими же опасными и для человека, то есть вы не заразитесь от своей кошки микоплазмозом, даже если она чихнет вам прямо в лицо. 

Вам нужно сосредоточиться об уходе за животным — продезинфецировать лежанки, место кошки, лоток. Тщательно подобрать корм на время болезни, держать кошку в тепле, уберегать от стресса. Чтобы после выздоровления от микоплазмоза кошки снова не заболели, рекомендуется ежегодно осматриваться у ветеринарного врача и поднимать иммунитет кошки, правильно подобрав корм. 

Похожие статьи

Хламидиоз у кошек — симптомы заражения

Возбудитель хламидиоза


Большинство владельцев пушистых котов и кошек любят погладить своих питомцев и подержать на руках. Особенно счастливым домочадцам разрешается по утрам запрыгнуть на кровать к хозяину и тыкаться в него мокрым носом. При таких манипуляциях, кроме милых и приятных ощущений, кошка может передать человеку весьма заразное заболевание — хламидиоз.

Хламидиоз — это болезнь инфекционного типа. В первую очередь, в зону поражения попадают: слизистые глаз, верхние дыхательные пути, кишечная, реже половая системы. При попадании в организм животного хламидии начинают активно размножаться и постепенно разрушать здоровые клетки организма.

Заболеванию подвержены как домашние коты, так и уличные гуляки. В зоне риска находятся котята из-за ослабленного иммунитета.

Для успешной борьбы с этим коварным заболеванием изучим тему более детально.

Как происходит заражение инфекцией

Хозяин, сам того не ведая, может принести бактерии хламидиоза домой на своей одежде или обуви.

Заражение происходит следующими путями:

  • При половых контактах;
  • Через зараженную пищу;
  • Воздушно-капельным путем;
  • Котята заражаются при родах от матери.

Также усатый питомец рискует заболеть, охотясь на птиц и грызунов. Те коты, которые часто контактируют с бездомными животными, заражаются чаще. Примечательно, что кошки не могут заразить собак из-за разной формы вируса.

Симптомы хламидиоза

Инкубационный период хламидиоза длится до 10-15 дней. Коварство болезни заключается в длительном отсутствии симптомов. На фоне ослабленного иммунитета у кошки, к хламидиозу начинают цепляться другие инфекционные болезни.

Обратите внимание!

Владелец попросту может не замечать весьма долго, что его питомец болен. Первые признаки болезни заметны на пятые сутки.

Симптоматика различается в зависимости от категории болезни. Специалисты различают несколько форм развития инфекции:

Скрытая форма:

Ничто не указывает на заболевание. Кошка чувствует себя вполне сносно. Однако, она является переносчиком болезни и в это время активно заражает других животных и людей.

Острая форма:

С течением времени симптомы хламидиоза у кошки становятся все заметнее. Повышается температура, появляются выделения из носа и глаз. Наблюдается поражение гноем одного глаза, через пару недель начинает гноиться второй глаз. Насморк, кашель, вялость и отказ от еды — это сопутствующие признаки острой формы хламидиоза.

Хроническая форма:

Кашель, насморк и слезоточивость глаз наблюдаются на протяжении длительного периода.

Влияние хламидий на организм кошек

К сожалению, заболевание хламидиозом не проходит даром для ослабленного питомца.
Последствия зависят от конкретной формы заболевания. Болезнь затрагивает многие органы кошек следующим образом:

  • Поражение глаз

Если не лечить воспаление слизистой глаз, то есть риск развития хронического конъюнктивита.

  • Воспаляются легкие

Воспаление легких трудно выявить сразу. Все начальные признаки напоминают простуду — кашель, одышка, выделения из носа, повышение температуры тела.

  • Половые органы

В результате воспаления шейки матки, беременность кошки зачастую оканчивается бесплодием. Коты теряют свою репродуктивную функцию.

  • Пищеварительная система

Если у животного кишечная патология, то зачастую признаки болезни выявить трудно. Но при этом кошка становится активным разносчиком инфекции.

  • Выделительная система

Поражение мочевого пузыря и уретры характеризуется сильными болями и воспалением почек. Зачастую это приводит к образованию камней в почках.

Специалисты отмечают, что в большинстве случаев у кошек к хламидиозу присоединяются другие различные инфекции. В том случае, если у кошки поражено сразу несколько органов, весьма высока вероятность летального исхода.

Лечение кошек

Как видим, самостоятельно выявить хламидиоз у кошки весьма затруднительно. Знание одних лишь симптомов недостаточно. К тому же данную инфекцию легко спутать с простудой и другими болезнями с похожей симптоматикой.

Совершенно необходимо показать пушистого питомца ветеринару. Специалист проведет сразу несколько различных процедур и мероприятий:

  • проведет осмотр животного и уточнит его состояние на данный момент
  • назначит взятие анализов крови и мазков выделений из носа и глаз
  • рентген понадобится при подозрении на воспаление легких
  • анализы на выявление вирусов и т. д.

Важно выявить источник инфекции, а хозяину обратиться к своему лечащему врачу и тоже сдать анализы.

Хламидиоз можно и нужно лечить. В каждом отдельном случае специалист разрабатывает индивидуальную схему выздоровления. Если случай не тяжелый и нет подозрения на пневмонию, лечиться можно и дома.

Примерная картина лечения выглядит следующим образом:

  • Антибиотики не менее 14 дней для гибели хламидий, например, Тетрациклин, Эритромицин и т.д;
  • Для обработки глаз нужна антибактериальная мазь или капли;
  • При обезвоживании помогут глюкоза и физраствор;
  • Иммуномодуляторы необходимы для придания сил организму. Они помогут дать отпор инфекции, например, Гамавит, Фоспренил и т. д;
  • Питание включает в себя куриный бульон и кисломолочные продукты;
  • Регулярная дезинфекция, места, лотка и миски больного животного.

Для успешного лечения важно выполнять все предписания и назначения врача. Также следует временно исключить общение питомца с другими членами семьи и животными.

Хламидиоз у котят

Маленькие котята могут заразиться еще в утробе матери. Такая форма болезни называется неонатальный конъюнктивит.
Симптомы такие же, как и у взрослых особей. Следует учитывать, что заболевание для малышей проходит в более тяжелой форме. Сначала новорожденный чихает и кашляет. Постепенно его силы тают, и он больше не сосет молоко. Болезнь может закончиться гибелью животного.

В случае вялотекущего ринита болеющий питомец будет заражать других животных. Хламидиоз необходимо лечить как у котят, так и у взрослых кошек.

Опасность хламидиоза для человека

Кошка, зараженная хламидиозом, может передать болезнь и человеку. Это происходит в том случае, если человеческий иммунитет сильно ослаблен.

Важно знать!

Последствия для человека, который заразился хламидиозом, могут быть не самыми радужными.

Ведь хламидии разрушают здоровые клетки и тогда организм подвергается атакам других инфекций: пневмонии, бесплодию у женщин, конъюнктивиту, венерическим заболеваниям и т. д.

Поэтому, во избежание опасных последствий стоит соблюдать элементарные правила гигиены:

  • Мыть руки после общения с усатым питомцем;
  • Не целовать кошек;
  • Чаще дезинфицировать место обитания животного и т. д.

Однако специалисты отмечают, что процент заражения человека хламидиями от кошки достаточно низок.

Профилактические меры

Уменьшить риск заражения хламидиозом поможет плановая вакцинации кошек. Регулярные обследования ветеринара помогут выявить болезнь на ранней стадии. Исключите игры с бродячими животными. Не следует поощрять ловлю птиц и грызунов. Регулярно дезинфицируйте не только места обитания питомца, но и собственной уличной одежды и обуви!

Бронхиальная астма у кошек — лечение органов дыхания в ветеринарной клинике «Амикус Вет»

Астма кошек — одна из наиболее распространенных патологий дыхательной системы среди кошек. По статистике в большинстве случаев проявления симптомов кашля и затрудненного дыхания у кошек причиной является именно бронхиальная астма.

Что такое астма

Астма кошек — это хроническое воспалительное заболевание, поражающее бронхи и бронхиолы и сопровождающееся их сужением (обструкцией). Заболевание провоцируется аллергенами, попадающими в просвет дыхательных путей и оседающими на слизистой оболочке. Что, в результате, вызывает местную воспалительную реакцию аллергического характера и повышенное выделение слизистого секрета. Все эти изменения приводят к сужению и затруднению работы мелких бронхов, что в свою очередь провоцирует нарушение дыхания, кашель и повышенную утомляемость.

Кто виноват

Причины развития бронхиальной астмы кошек на текущий момент до конца не изучены. Известно, что провоцирующими факторами могут быть:

  • Плохие условия внешней среды (экология, курящие хозяева и пр.)
  • Хронические инфекции (микоплазмоз, бордетеллиоз и др.)
  • Паразитарные инвазии

Наиболее распространенными аллергенами-провокаторами являются:

  • Дым, в том числе и сигаретный
  • Пыль и пылевые клещи
  • Плесень
  • Наполнитель кошачьего туалета (особенно склонный к активному пылению)
  • Бытовая химия
  • Пыльца
  • Парфюмерия

Обострение симптомов также может спровоцировать чрезмерно низкая влажность воздуха (ниже 30%). Именно этим зачастую объясняются зимние обострения в период активного отопительного сезона.

Как проявляется

На ранней стадии развития распознать проявления астмы довольно сложно. Первым симптомом может быть затрудненное или усиленное дыхание в совокупности с повышенной утомляемостью. На этой стадии астму следует дифференцировать от сердечной или инфекционной патологии. 

На более поздних стадиях появляется основной симптом астмы кошек — сухой кашель, при этом симптомы затрудненного дыхания и повышенной утомляемости, как правило, усиливаются. По мере нарастания тяжести симптомов может появиться угроза жизни пациента. Если во время не вмешаться, может наступить смерть от удушья. 

Проявляющийся у кошек кашель можно спутать с попыткой откашлять или отрыгнуть комочки шерсти или корма. Отличить подобные проявления от астматического кашля можно прежде всего по положению тела кошки во время кашля. Во время приступа астмы кошка значительно вытягивает шею, расставляет грудные конечности в стороны и старается принять более горизонтальное (распластанное) положение, при этом в результате откашливания комочков шерсти не появляется, но возможно выделение небольшого количества слизи.

Чаще всего кашель, связанный с астмой проявляется у животных среднего возраста (от 2 до 8 лет). Кошки болеют примерно в два раза чаще, чем коты. Отмечена большая склонность к астме у кошек сиамской и гималайской пород среди прочих. 

При проявлении регулярных приступов кашля следует, как можно раньше обратиться к ветеринарному доктору для уточнения причин и назначения адекватного лечения. 

Астма не заразна, ей нельзя заразить другую кошку или человека. Однако, если в вашем доме большинство членов семьи испытывают затруднения с дыханием и подкашливают — это повод глубоко задуматься над тем, что вас окружает.

Как диагностировать

Астму следует дифференцировать от ряда других патологий дыхательной системы. 
Сделать это можно на основе истории болезни, описания симптомов, осмотра и дополнительных тестов. 

При описании симптомов, доктору может оказаться полезной видеосъемка приступа. 
После сбора всех данных, доктор проведет осмотр, послушает кошку и при необходимости прибегнет к помощи дополнительных исследований:

  • Рентгенография грудной клетки.

Рентген, пожалуй, один из наиболее ценных методов диагностики заболеваний дыхательной системы. На рентгеновском снимке можно оценить состояние трахеи, бронхов, легочной ткани, размеры сердца и состояние легочных сосудов. Астма кошек в большинстве случаев провоцирует достаточно характерные изменения на рентгенограмме. Прежде всего, это характерные изменения бронхиального и легочного рисунка.  

  • Анализы крови. 

По анализам крови можно оценить признаки воспалительного (инфекционного) и аллергического процесса. Так в ряде случаев при астме может быть повышена концентрация эозинофилов.  

  • Бронхоскопия, бронхо-альвеолярный лаваж. 

При этом исследовании дыхательная система осматривается изнутри при помощи специального оборудования — эндоскопа. Оценивается внутренняя структура бронхов, трахеи, состояние слизистой и проводится лаваж (смыв) с последующим лабораторным анализом содержимого бронхов. Таким образом, можно выявить возбудителей различных инфекций (например, токсоплазм), обнаружить признаки онкологической патологии, а также нарушения структуры и работы бронхов и трахеи. Исследование проводится под общей анестезией.  

Лечение

Если диагноза астма подтвердился, прежде всего, не стоит отчаиваться. Современная медицина позволяет успешно контролировать и профилактировать астматические приступы. 

Самая главная задача в лечении астмы — это выявление провоцирующих аллергенов. Можно до бесконечности бороться с проявляющимися симптомами, однако выявление и удаление провокаторов позволяет в ряде случаев полностью прекратить приступы и избавить кошку от необходимости принимать медикаменты. 

Для того чтобы определить спектр подозреваемых помогут следующие приемы:

1. Проанализировать время и сезонность проявления симптомов. Например, известны случаи, когда приступы провоцировались строго во время цветения определенного домашнего цветка.

2. Изучить все новые предметы, средства бытовой химии, одежду, парфюмерию появившиеся в доме за 1-2 месяца до начала проявления симптомов или их резкого усиления.

3. Понаблюдать за поведением кошки в течение дня — где она бывает, с чем или кем контактирует и т. д.


Даже если выявить конкретные провокаторы не удалось необходимо соблюдать общие принципы, позволяющие снизить вероятность проявления новых приступов:

1. Не курите в одном помещении с кошкой.

2. Чаще проводите влажные уборки.

3. Полезным может оказаться установка очистителя и/или увлажнителя воздуха.

4. В период активного цветения не выпускайте кошку на улицу.

5. Старайтесь свести к минимуму использование бытовой химии или попытайтесь найти «зеленую» альтернативу.

6. Замените «пылящий» наполнитель для кошачьего туалета.

7. Избегайте стрессов (как эмоциональных, так и физических), они могут спровоцировать приступ.


В том случае если симптомы причиняют ощутимый дискомфорт, кошке может потребоваться медикаментозная терапия. В лечении астмы кошек возможно применение нескольких групп препаратов:

  • Бронхорасширяющие препараты (тербуталин, теофиллин).

Расширяют бронхи, облегчая тем самым дыхание. Применяются в сочетании с противовоспалительными препаратами при их недостаточной эффективности.  

  • Кортикостероидные гормоны (преднизолон, дексаметазон и их пролонгированные формы).

Оказывают противовоспалительное действие, тем самым влияют на основной компонент заболевания. Препараты этой группы быстро и эффективно снимают симптомы, однако таблетированная и инъекционные формы при длительном приеме могут вызывать ряд побочных эффектов.  

  • Антигистаминные (противоаллергические) препараты (кетотифен, лоратодин и др.).

Также оказывают противоспалительное действие, снижая выраженность аллергической реакции. По эффективности уступают кортикоидам, однако при этом имеют меньшее количество побочных эффектов.  

Высокоэффективным и очень перспективным направлением является применение аэрозольных форм бронхорасширяющих или гормональных препаратов. Таким образом, удается существенно уменьшить вероятность проявления побочных эффектов и повысить терапевтическую эффективность. Основной сложностью в этом случае является непосредственно сам процесс дачи такого медикамента кошке. 

Однако сейчас появилось специальное приспособление для облегчения этого процесса – Аэрокет (Aerokat). Это насадка для ингалятора представляющая из себя накопительную камеру, в которую поступает аэрозоль из баллончика и маску, через которую кошка вдыхает лекарство. Приобрести Aerokat можно за рубежом (через интернет-магазины или знакомых) или в нашей клинике на приеме у профильного специалиста (предварительно уточнив наличие по телефону).

Микоплазмоз у кошек. Микоплазмоз у кошек симптомы.Опасен ли для человека?

Микоплазмоз у домашней кошки

Если домашний питомец страдает от нескольких заболеваний сразу, то велик риск возникновения у него микоплазмоза. Эту болезнь вызывает бактерия микоплазма, которая при попадании в организм поражает дыхательные пути, а также значительно снижает иммунитет. Это и является причиной возникновения нескольких сопутствующих заболеваний у кошки.

Симптоматика микоплазмоза у кошек

Если произошло заражение микоплазмозом у кошки, симптомы не заставят себя ждать и проявятся следующим образом:

  • Обильная слезоточивость, поражение одного или обоих глаз.
  • Поражение суставов, которое сказывается на активности животного.
  • Повышенная температура тела.
  • Возникновение заболеваний мочевыводящей системы.
  • Отёчность.
  • Диарея.
  • Кашель или чихание, сопровождаемые выделениями из носа.

Когда диагностируют микоплазмоз у кошек, опасность заболевания кроется в его развитии. Чем дольше игнорировать болезнь, тем сильнее она будет развиваться, если иммунитет питомца не укрепить. Самую большую опасность несёт заболевание в период беременности и непосредственно родов – мать может заразить своих малышей, котята могут родиться мёртвыми и т.д.

Опасен ли микоплазмоз для человека?!

Микоплазмоз у кошек передаётся воздушно-капельным путём, поэтому больное животное необходимо срочно изолировать от других домашних питомцев. При этом микоплазмоз кошек для человека не опасен – даже при попадании в человеческий организм бактерии не начинают прогрессировать.

Что делать, если у кошки появились признаки микоплазмоза?!

Правильное лечение может назначить только квалифицированный специалист. Комплекс принимаемых мер направлен на устранение причины заболевания, а также на ослабление сопутствующих симптомов и укрепление иммунитета.

Никогда не пытайтесь вылечить болезнь самостоятельно, ведь важен не только список принимаемых препаратов, но и их дозировка.

Если заболел маленький котёнок, то бывает очень сложно отвезти его в ветеринарную клинику. В такой ситуации мы предлагаем вам вызвать врача на дом. Опытный ветеринар сможет провести наружное обследование, возьмёт необходимые анализы и назначит эффективное лечение микоплазмоза.

Гемотропный микоплазмоз кошек в сочетании с бактериальным циститом у домашней короткошерстной кошки

J Adv Vet Anim Res. 2018 Dec; 5 (4): 490–495.

Сукумаран Хемасри

1 Факультет ветеринарной медицины, Малайзийский университет Келантан, Кота-Бару, Малайзия

Ибрагим Абдул-Азиз Окене

1 Факультет ветеринарной медицины3, Малайзийский университет Келантана Дауда Гони

2 Кафедра медицинской микробиологии и паразитологии, Школа медицинских наук, Университетский кампус здоровья Малайзии, Кубанг Кериан, Малайзия

1 Факультет ветеринарной медицины, Университет Малайзии Келантан, Кота-Бару

2 Департамент медицинской микробиологии и паразитологии, Школа медицинских наук, Медицинский кампус Universiti Sains Malaysia, Кубанг Кериан, Малайзия

Корреспонденция Ибрагим Абдул-Азиз Окене, электронная почта: [email protected], факультет ветеринарной медицины, Малайзийский университет Келантан, Кота-Бару, Малайзия

Поступило 20 июня 2018 г .; Пересмотрено 3 сентября 2018 г .; Принято 7 сентября 2018 г.

Авторские права: © Journal of Advanced Veterinary and Animal Research

Это статья в открытом доступе, распространяемая в соответствии с условиями Creative Commons Attribution-Noncommercial-Share Alike 3.0 Unported, что разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии правильного цитирования оригинальной работы.

Abstract

Цель:

Основная цель этого клинического случая — представить случай гемотропного микоплазмоза кошек, который возник одновременно с бактериальным циститом после укуса.

Материал и методы:

Трехлетний неповрежденный домашний короткошерстный кот весом 3,7 кг был направлен в ветеринарную клинику Университи Малайзии Келантан с клиническими признаками гематурии и дизурии. История показала, что они содержались на открытом воздухе, питались сухими кормами и влажным кормом, но без вакцинации и дегельминтизации.При медицинском осмотре кошка имела тусклый вид, бледность слизистой оболочки, нормальную частоту дыхания, переохлаждение и брадикардию. При обследовании мочеполовой системы были обнаружены ожоги мочой в анальной области, некротизированный кончик полового члена и наличие укушенной раны в области промежности. При пальпации выявлен набухший и увеличенный мочевой пузырь.

Результаты:

Диагностическое исследование выявило гемотропный микоплазмоз под микроскопом, а посев мочи оказался положительным на инфекцию Escherichia coli .Кошка успешно лечилась симптоматически.

Заключение:

Однако прогноз для этой кошки был осторожным, учитывая, что анемия не исчезла в момент выписки.

Ключевые слова: Гемотропный микоплазмоз кошек, бактериальный цистит, кошка

Введение

Гемотропная микоплазма кошек — это часто диагностируемая инфекционная анемия у кошек в Малайзии. Это может происходить одновременно с другими заболеваниями, такими как панлейкопения кошек, лейкемия кошек и комплекс заболеваний верхних дыхательных путей.Микоплазмы — это небольшие свободноживущие бактерии, у которых отсутствует жесткая и защитная клеточная стенка, они процветают в окружающей среде [1]. Гемотропные микоплазмы — это небольшие грамотрицательные, не кислотоустойчивые некультивируемые бактерии без стенки, которые выживают на поверхности эритроцитов, ранее классифицированные как риккетсии под родом Hemobartonella. Однако результаты секвенирования генов 16S рРНК (рибосомная РНК) и рибонуклеазной (РНКазы) РНК повлияли на переклассификацию в род Mycoplasma [2]. Он состоит из двух родов классификации: гемотропных с приставкой «гемо» и неполностью классифицированных с приставкой «кандидатус» [3].Гемотропная микоплазма плеоморфна, поэтому ее можно найти во многих формах, таких как сферическая (кокковидная), кольцевая (печатка) или стержневая. Это безстеночные бактерии, которые прикрепляются и растут на поверхности эритроцитов. Он воспроизводится путем двойного деления и может происходить по отдельности или в цепочках. Гемотропная микоплазма может поражать кошек любого возраста [4].

Существует три основных пути передачи гемотропной микоплазмы кошкам; вертикальная передача (от матери к потомству), прямая передача от инфицированных кошек через слюну, десны или когти в результате царапин или укусов во время драки, а также от членистоногих-переносчиков, таких как ушные клещи, блохи, клещи, а также от комаров [5].

Бактериальный цистит — это воспаление мочевого пузыря в результате бактериальной инфекции. Это вызвано рядом грамположительных (например, Staphylococcus aureus ) и грамотрицательных бактерий (например, Escherichia coli ). Клинически он проявляется поллакиурией, гематурией, дизурией и мочеиспусканием в неподходящих местах [6].

Таким образом, цель данного отчета — продемонстрировать случай сочетанного гемотропного микоплазмоза кошек с бактериальным циститом у домашней короткошерстной кошки.В настоящее время имеется мало сообщений о возникновении обоих заболеваний у одной кошки в рутинной ветеринарной клинической практике.

История болезни

Трехлетний неповрежденный домашний короткошерстный кот, вес 3,7 кг, был направлен в ветеринарную клинику Университета Малайзии Келантан из частной ветеринарной клиники. Направлен из-за стойкой дизурии и гематурии; следовательно, кошка пришла с постоянным мочевым катетером.

Диагностические осмотры

Клиническое обследование

После медицинского осмотра кошка была вялой, подавленной и страдающей жаром.Также наблюдались нормопноэ, брадикардия, выраженная бледность слизистой оболочки. Обследование мочеполовой системы выявило некротизированный кончик полового члена, укушенные раны и ожог мочой в промежности, а также опухший и увеличенный мочевой пузырь. Рентгенологическое исследование брюшной полости показало значительно увеличенный мочевой пузырь, охватывающий пять тел поясничных позвонков; таким образом, вызывая краниальное смещение органов брюшной полости и потерю рентгенографических деталей, как показано на. Ультразвуковое исследование брюшной полости показало растянутый мочевой пузырь (5 см × 5 см), содержащий взвешенные эхогенные материалы, и утолщенную стенку мочевого пузыря.

Рентгенография брюшной полости, (A) вентродорсальный вид и (B) правый боковой вид, показывающий гепатомегалию в ответ на гемолиз (маленькая белая стрелка) и растяжение мочевого пузыря (большая белая стрелка), вызывающее краниальное смещение содержимого брюшной полости.

Гематология и биохимия сыворотки

Общий анализ крови выявил гранулоцитоз, лимфопению, моноцитопению, макроцитарную гипохромную анемию, тромбоцитопению и признаки тромбопоэза, как показано на -. Быстро окрашенный мазок периферической крови выявил эперитроцитарные палочковидные организмы, которые весьма наводят на мысль о Mycoplasma haemofelis ().Образец крови подвергали полимеразной цепной реакции для обнаружения генетического материала M. haemofelis , и результат был положительным.

Таблица 1.

Отображение биохимического профиля сыворотки.

1,15
Биохимия Результат Ссылка
BUN 30 мг / дл 16–36
CREA6 ТП 6.7 г / дл 5,7–8,9
ALB 3,8 г / дл 2,2–4,0
GLB 2,9 г / дл 2,5–4,5 2,5–4,5 Таблица 2.

Показан гематологический профиль на 1 и 6 день госпитализации.

) –55,0 800
Гемограмма Результат Ссылка
День 1 День 6
Белые кровяные тельца (10 3 / мкл) 90,116 5 28,3 6,0–15,5
Гранулоциты (10 3 / мкл) 20,3 17,5 2,0–8,0
5,5 8,0116 Лимфоциты
Моноциты 0,6 2,2 2,2–4,0
Эритроциты (10 6 / мкл) 4,54 4,38 6,50111 d10,00 90m116 6,50111 90m116 6.6 6,8 10,0–15,0
Гематокрит (%) 26,5 27,3 30,0–45,0
Средний корпускулярный объем (мкм 3 16
Средний корпускулярный гемоглобин (пг) 14,5 13,8 25,9–34,0
Средняя концентрация корпускулярного гемоглобина (гм / дл) 24,9 26 24,9 264 30,0–35,9
Ширина распределения ретикулоцитов (%) 16,2 16,5 10–16,00
Тромбоциты (10 3 / мкл)
Тромбокрит (%) 0,066 0,145 0,200–0,500

Мазок периферической крови, показывающий присутствие палочковидных эперитроцитарных организмов.

Общий анализ мочи

Моча темного цвета наблюдалась при цистоцентезе () с pH 7.0. Цитологическое исследование мочи показало присутствие кокков и бактерий, имеющих форму палочки, а также нейтрофилов, однако кристаллов мочи не наблюдалось. Также наблюдались протеинурия, билирубинурия и гематурия. Посев мочи выявил E. coli . На основании вышеуказанных исследований у животного диагностирован гемотропный микоплазмоз кошек на фоне бактериального цистита.

Центрифугированная моча показывает красный оттенок надосадочной жидкости (гемоглобинурия) с осадками.

Диагноз

На основании анамнеза, физического осмотра, диагностической визуализации, клинической патологии, бактериологии и результатов полимеразной цепной реакции у кошки был диагностирован гемотропный микоплазмоз, сочетающийся с бактериальным циститом.

Лечение

Как показано в, лечение было начато для достижения целей по устранению микоплазмы из крови (с использованием системных антибиотиков), восстановлению адекватной перфузии тканей и излечению бактериального цистита (с помощью антибиотиков). Катетеризация мочи была проведена для уменьшения растяжения мочевого пузыря и эффективного проведения ретроградной промывки мочевого пузыря метронидазолом и холодным физиологическим раствором в течение 5 дней. Для регидратации кошки и восстановления почечной потери электролитов была назначена медленная внутривенная инфузия раствора Хартмана.Гематология, проведенная на 6-й день госпитализации, показала уменьшение гранулоцитоза и изменение лимфоцитопении и моноцитопении. Рентгенография стенки мочевого пузыря показала уменьшение толщины. Общий прогноз был хорошим.

Таблица 3.

Лекарства, которые давали кошке во время госпитализации.

Лекарственное средство Дозировка Маршрут Частота Продолжительность Показания
Амоксициллин-клавулановая кислота Лечить бактериальную инфекцию мочевого пузыря
Метронидазол 10 мг / кг IUT BID 5 дней Лечить бактериальную инфекцию мочевого пузыря
Feline cystaid 1 таблетка PO BID 10 дней Защита стенки мочевого пузыря
Мелоксикам 0.3 мг / кг. а также укушенная рана
Ливоферол
  • Глюконат железа

  • Хлорид железа

  • Тиамин HCl

  • Рибофлавин

  • Никотиновая кислота

  • Ликотиновая кислота

  • Ликотинамид
2 мл PO BID 12 дней В качестве печеночной добавки для лечения анемии
Vetri DMG
  • N, N Диметилглицин

  • Бромелайн

0.5 мл PO 14 дней Повышение иммунитета
Доксициклин 10 мг / кг PO SID 21 день Discoplasma

На основании истории болезни, диагностики клинических признаков и реакции на лечение, подтверждающим диагнозом в этом случае был гемотропный микоплазмоз кошек, сочетающийся с бактериальным циститом.Гемотропный микоплазмоз диагностировали на основе сочетания истории борьбы и наличия инвазии блох [7,8] и, что более важно, клинических признаков анемии, летаргии, гипертермии и желтухи [9,10]. Будучи заболеванием, характеризующимся иммуноопосредованной гемолитической анемией, в некоторых случаях также наблюдается желтуха. В этом случае наблюдалась гепатомегалия, что свидетельствует об активном ответе печени на гемолиз (). Наблюдение эперитроцитарной микоплазмы в тонком мазке крови, проведенное во время диагностического обследования (), и обнаружение генетического материала микоплазмы с помощью полимеразной цепной реакции подтвердили диагноз гемотропного микоплазмоза в этом случае [11].

Для клинического лечения микоплазмоза используется несколько режимов антибиотиков [12]. Доксициклин в дозе 5 мг / кг массы тела два раза в день per os в течение 28 дней является режимом выбора как при остром, так и при хроническом микоплазмозе. Это было начато сразу после подтверждения наличия у кошки гемотропного микоплазмоза. Однако кошек, которые не реагируют на доксициклин, обычно назначают марбофлоксацин в дозе 2 мг / кг веса тела два раза в день в течение 14 дней [13]. Из-за иммуноопосредованного характера патогенеза микоплазмоза введение преднизона было приостановлено, несмотря на его стратегическое значение для снижения гуморального иммунного ответа, жизненно важного для патогенеза внесосудистого гемолиза [7].Кроме того, из-за лимфоцитопенического состояния этой кошки преднизон не вводили, чтобы не вызывать в дальнейшем иммуносупрессию. Возникновение бактериального цистита также повлияло на решение не вводить стероид, а заменить его несколькими добавками, чтобы помочь печени и костному мозгу (). Через 6 дней параметры начали нормализоваться, и количество лимфоцитов также начало расти.

Кошки, содержащиеся на открытом воздухе, обычно участвуют в драках, в которых могут участвовать кошки, инфицированные Mycoplasma spp.или заражены возможными переносчиками [7]. У этой кошки была укушенная рана в области промежности, а также в области полового члена; следовательно, предполагается передача микоплазмоза и бактериального цистита через укус в паховой области. Бактериальный цистит возник в результате восходящей инфекции из зараженной раны от укуса в нижние мочевыводящие пути. Бактериальный цистит лечили ретроградным промыванием катетеризованного мочевого пузыря метронидазолом в дозе 10 мг / кг массы тела и холодным физиологическим раствором в течение 5 дней, а также введением per os амоксициллин-клавулановой кислоты в дозе 25 мг / кг b.wt два раза в день в течение 5 дней [14]. Этот режим был предназначен для борьбы с инфекцией E. coli , поскольку может существовать риск множественной лекарственной устойчивости E. coli с вероятностью рецидива, если не лечить с помощью синергической антибактериальной терапии [15]. Рентгенография после лечения показала хороший ответ в виде уменьшения толщины стенки мочевого пузыря ().

Рентгенография брюшной полости сбоку после лечения, показывающая нормальный размер мочевого пузыря (стрелка) и наличие запора.

Подавление иммунитета, вызванное иммуноопосредованным гемолизом, вызванным микоплазмами, еще больше усиливает прогрессирование бактериального цистита.Стресс от укуса и цистита, вызванный болью, также приводит к анорексии и снижению иммунного ответа. Исследование показало, что наличие сопутствующего заболевания вместе с микоплазмозом кошек является отрицательным прогностическим показателем для кошек [16]. Однако в этом отчете прогноз выглядит неплохим, потому что гематологические параметры начали улучшаться и, что наиболее важно, лимфоциты поднялись до нормального уровня в течение недели.

Септицемия может возникнуть из-за восходящей инфекции от этого случая; следовательно, необходимость усердно преподносить им антибиотик и дополнительное покрытие.Неразрешенная анемия может прогрессировать до множественных осложнений, связанных с гипоксическим повреждением тканей. Поэтому проводился постоянный мониторинг гематологической картины для упреждающего управления состоянием, а прогноз был осторожным.

Заключение

Гемотропный микоплазмоз кошек и бактериальный цистит были диагностированы у домашних короткошерстных кошек на основании анамнеза, клинических признаков, гематологии, бактериального посева и выделения, рентгенографии и молекулярного обнаружения. Было назначено лечение с использованием доксициклина (от микоплазмоза), амоксициллин-клавулановой кислоты (от бактериального цистита) и добавок для поддерживающей терапии, но прогноз для этой кошки осторожен, так как гематологическая картина на момент выписки все еще не соответствовала норме.Гемотропный микоплазмоз кошек, поэтому необходимо исследовать возможность возникновения одновременно с другими заболеваниями, чтобы правильно лечить кошек с этим заболеванием. Клиницисты также должны быть внимательны к E. coli с множественной лекарственной устойчивостью как возможное осложнение гемотропного микоплазмоза кошек, связанное с ранами от укусов.

Конфликт интересов

Конфликт интересов, о котором следует заявлять, отсутствует.

Вклад авторов

Сукумаран Хемасри и Ибрагим Абдул-Азиз Окене придумали и составили рукопись, Мохаммед Дауда Гони рецензировал рукопись.

Ссылки

1. Уэйтс К.Б., Сяо Л., Лю И, Балиш М.Ф., Аткинсон Т.П. Mycoplasma pneumoniae из дыхательных путей и за их пределами. Clin Microbiol Rev.2017; 30 (3): 747–809. https://doi.org/10.1128/CMR.00114-16. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 2. Сайкс Дж. Э. Гемотропные микоплазмы кошек. Ветеринарная клиника Малая анимационная практика. 2010. 40 (6): 1157–70. [PubMed] [Google Scholar] 3. Roura X, Peters IR, Altet L, Tabar MD, Barker EN, Planellas M, et al. Распространенность гемотропных микоплазм у здоровых и нездоровых кошек и собак в Испании.J Vet Diagn Investig. 2010. 22 (2): 270–4. https://doi.org/10.1177/104063871002200219. [PubMed] [Google Scholar] 4. Hooshyar SH, Akhtardanesh B, Fard SRN, Khalili M. Гемотропные микоплазмы у бездомных кошек в Кермане, Иран. J Med Bacteriol. 2017; 5 (3–4): 1–8. [Google Scholar] 5. Сото Ф., Уокер Р., Сепульведа М., Биттенкур П., Акоста-Джаметт Г., Мюллер А. Возникновение гемотропных микоплазм собак у домашних собак из городских и сельских районов провинции Вальдивия на юге Чили. Comp Immunol Microbiol Infect Dis.2017; 50: 70–7. https://doi.org/10.1016/j.cimid.2016.11.013. [PubMed] [Google Scholar] 6. Lew-Kojrys S, Mikulska-Skupien E, Snarska A, Krystkiewicz W. Оценка клинических признаков и причин заболеваний нижних мочевыводящих путей у польских кошек. Vet Med. 2017; 62 (7): 386–93. https://doi.org/10.17221/170/2016-VETMED. [Google Scholar] 7. Нибблетт BMD, Снид EC, Валднер С., Тейлор С.М., Джексон М.Л., Кнорр Л.М. Анемия у кошек с хемотропной инфекцией mycoplasma : ретроспективная оценка 23 случаев (1996–2005) Canad Vet J.2009; 50 (11): 1181. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 8. Сентил Н., Нагараджан К., Падманатх К., Субаприя С., Вайрамуту С., Тилагар М.Б. и др. Редкий случай микоплазмоза кошек. Int J Adv Vet Sci Technol. 2014; 3 (1): 106–8. [Google Scholar] 9. Мазахери Н.Ф., Вахеди С.М., Мохаммадхан Ф. Гемотропные микоплазмы (гемоплазмы): обзор. Int J Adv Biol Biomed Res. 2014. 2 (5): 1484–503. [Google Scholar] 10. Вилли Б., Новакко М., Мели М., Вольф-Джекель Г., Боретти Ф., Венги Н. и др. Гемотропные микоплазмы кошек и собак: передача, диагностика, распространенность и значение в Европе.Schweiz Arch Tierheilkd. 2010. 152 (5): 237–44. https://doi.org/10.1024/0036-7281/a000055. [PubMed] [Google Scholar] 11. Дуарте А., Маркес В., Коррейя Дж. Х., Нето И., Браз Б. С., Родригес С. и др. Молекулярное обнаружение гемотропных видов Mycoplasma у городских и сельских кошек из Португалии. J Feline Med Surg. 2015; 17 (6): 516–22. https://doi.org/10.1177/1098612X14550172. [PubMed] [Google Scholar] 12. Таскер С. Гемотропные микоплазмы: каково их реальное значение для кошек? J Feline Med Surg. 2010. 12 (5): 369–81.https://doi.org/10.1016/j.jfms.2010.03.011. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 13. Новакко М., Сугиарто С., Вилли Б., Бауманн Дж., Спири А.М., Остман А. и др. Последовательное лечение антибиотиками доксициклином и марбофлоксацином устраняет бактериемию у кошек, инфицированных Mycoplasma haemofelis . Vet Microbiol. 2018; 217: 112–20. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2018.03.006. [PubMed] [Google Scholar] 14. Cray M, Berent AC, Weisse CW, Bagley D. Лечение пионефроза с помощью устройства подкожного обхода мочеточника у четырех кошек.J Am Vet Med Assoc. 2018; 252 (6): 744–53. https://doi.org/10.2460/javma.252.6.744. [PubMed] [Google Scholar] 15. Лай СС, Чен СС, Хуанг Х.Л., Чуанг Ю.К., Тан Х.Дж. Роль доксициклина в терапии кишечной палочки с множественной лекарственной устойчивостью — исследование in vitro. Научный доклад 2016; 6: 31964. https://doi.org/10.1038/srep31964. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 16. Reynolds CA, Lappin MR. Инфекция « Candidatus Mycoplasma haemominutum » у 21 кошки, принадлежащей клиенту. J Am Anim Hosp Assoc.2007. 43 (5): 249–57. https://doi.org/10.5326/0430249. [PubMed] [Google Scholar]

8-месячная защита от COVID с помощью препарата антител

10 ноября 2021 — Фармацевтическая компания Regeneron заявляет, что клинические испытания показывают, что одна доза ее препарата антител снижает шансы неинфицированного человека заразиться COVID-19 на 81,6% на срок до восьми месяцев после приема препарата, говорится в сообщении компании.

Regeneron провела исследование фазы 3 совместно с Национальным институтом аллергии и инфекционных заболеваний и изучила людей, которые жили в семье с кем-то, у кого за последние четыре дня был поставлен положительный диагноз COVID-19.

Никто из группы лечения, получившей препарат, не был госпитализирован из-за COVID, по сравнению с шестью людьми в группе плацебо, говорится в пресс-релизе. Никто из участников исследования не умер.

Результаты могут помочь компании убедить правительство расширить разрешение на использование препарата антител, REGEN-COV, для людей, которые не подвергались воздействию COVID-19.

Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов США уже разрешило REGEN-COV для людей с COVID-19 от легкой до умеренной степени тяжести, а также в качестве профилактического лечения для людей, которые контактировали с инфицированными людьми, и людей, работающих с повышенным риском, таких как тюремные охранники.

В своем выпуске новостей компания отметила, что REGEN-COV может быть особенно ценным для людей, чья иммунная система находится под угрозой, потому что они не получают такой же степени защиты от вакцины, как другие.

«Эти данные добавляют к растущему количеству доказательств, подтверждающих использование REGEN-COV для предотвращения COVID-19 у неинфицированных людей, что может быть особенно полезно для многих людей с ослабленным иммунитетом, которые не реагируют должным образом на вакцины и остаются« узниками » пандемия », — сказал Джордж Д.Янкопулос, доктор медицины, президент и главный научный сотрудник компании.

За последние несколько месяцев фармацевтические компании объявили о разработке других невакцинных средств лечения COVID-19.

Компания Pfizer заявила на прошлой неделе, что ее противовирусная таблетка Паксловид, похоже, очень хорошо помогает удерживать людей с высоким риском тяжелой формы COVID-19 от госпитализации и смерти. Компания заявляет, что планирует обратиться в FDA с просьбой разрешить использование препарата в экстренных случаях.

В прошлом месяце компания Merck сообщила, что ее экспериментальная противовирусная таблетка молнупиравир снижает риск госпитализации или смерти на 50% у пациентов с COVID легкой и средней степени тяжести по сравнению с плацебо.Компания Merck подала заявку на экстренное разрешение на выпуск своих таблеток.

Оценка межвидовой передачи гемоплазм на границе диких и домашних кошачьих в Чили с использованием анализа генетических и ландшафтных переменных

  • 1.

    Daszak, P., Cunningham, AA & Hyatt, AD Антропогенные изменения окружающей среды и появление инфекционных заболеваний в дикой природе. Acta Trop. 78 , 103–116 (2001).

    CAS PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 2.

    Бевинс, С. Н. и др. . Три патогена в симпатрических популяциях пумы, рыси и домашних кошек: последствия для передачи инфекционных заболеваний. PLoS ONE 7 , e31403 (2012).

    ADS CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 3.

    Olival, K. J. et al. . Признаки хозяина и вируса предсказывают распространение зоонозов у ​​млекопитающих. Природа 546 , 646–650 (2017).

    ADS CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 4.

    Верделин Л., Ямагути Н., Джонсон В. Э. и О’Брайен С. Дж. Филогения и эволюция кошек (Felidae). Биол . Консерв . Wild Felids Oxf . Унив . Пресс Oxf . UK 60–82 (2010).

  • 5.

    Хасселл, Дж. М., Бегон, М., Уорд, М. Дж. И Февр, Э.M. Урбанизация и возникновение болезней: динамика на стыке дикой природы, домашнего скота и человека. Trends Ecol. Evol. 32 , 55–67 (2017).

    PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 6.

    Вассмер Д. А., Гюнтер Д. Д. и Лейн Дж. Н. Экология рыси в южно-центральной части Флориды (1988).

  • 7.

    Meli, M. L. et al. . Вирус лейкемии кошек и другие патогены как важные угрозы выживанию находящихся под угрозой исчезновения иберийских рысей ( Lynx pardinus ). PLOS ONE 4 , e4744 (2009 г.).

    ADS PubMed PubMed Central Статья CAS Google ученый

  • 8.

    Браун М.А. и др. . Генетическая характеристика вируса лейкемии кошек из Флориды Пантерс. Emerg. Заразить. Дис. 14 , 252–259 (2008).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 9.

    Чиу, Э. С. и др. . Множественные интродукции вируса кошачьей лейкемии домашних кошек у находящихся под угрозой исчезновения флоридских пантер 1. Emerg. Заразить. Дис. 25 , 92–101 (2019).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 10.

    Neimark, H., Johansson, K.-E., Rikihisa, Y. & Tully, JG Предложение о переводе некоторых представителей родов Haemobartonella и Eperythrozoon в род Mycoplasma с описанием Candidatus Mycoplasma haemofelis , Candidatus Mycoplasma haemomuris, Candidatus Mycoplasma haemosuis и Candidatus Mycoplasma wenyonii. Внутр. J. Syst. Evol. Microbiol. 51 , 891–899 (2001).

    CAS PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 11.

    Biondo, A. W. et al. . Обзор возникновения гемоплазм (гемотрофических микоплазм) в Бразилии. Ред. Бюстгальтеры. Паразитол. Veterinária 18 , 1–7 (2009).

    Артикул Google ученый

  • 12.

    Таскер, С. и др. . Гемоплазмоз у кошек: европейские рекомендации ABCD по профилактике и лечению. J. Feline Med. Surg. 20 , 256–261 (2018).

    PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 13.

    Foley, J. E., Harrus, S., Poland, A., Chomel, B. & Pedersen, N.C. Молекулярное, клиническое и патологическое сравнение двух различных штаммов Haemobartonella felis у домашних кошек. Am. J. Vet. Res. 59 , 1581–1588 (1998).

    CAS PubMed PubMed Central Google ученый

  • 14.

    Westfall, DS, Jensen, WA, Reagan, WJ, Radecki, SV & Lappin, MR Инокуляция двух генотипов Hemobartonella felis (варианты для Калифорнии и Огайо) для индукции инфекции у кошек и ответ на лечение с азитромицином. Am. J. Vet. Res. 62 , 687–691 (2001).

    CAS PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 15.

    Таскер С. Гемотропные микоплазмы: каково их реальное значение для кошек? J. Feline Med. Surg. 12 , 369–381 (2010).

    PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 16.

    Вилли Б. и др. . Филогенетический анализ изолятов « Candidatus Mycoplasma turicensis» от домашних кошек в Соединенном Королевстве, Австралии и Южной Африке с анализом факторов риска заражения. J. Clin. Microbiol. 44 , 4430–4435 (2006).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 17.

    Вилли Б. и др. . От гемобартонеллы до гемоплазмы: молекулярные методы открывают новые горизонты. Вет. Microbiol. 125 , 197–209 (2007).

    CAS PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 18.

    Камрани, А., Паррейра, В. Р., Гринвуд, Дж. И Прескотт, Дж. Ф. Распространенность инфекций Bartonella, , гемоплазма, и Rickettsia felis, , у домашних кошек и кошачьих блох в Онтарио. Банка. J. Vet. Res. 72 , 411 (2008).

    CAS PubMed PubMed Central Google ученый

  • 19.

    Сайкс, Дж. Э., Терри, Дж. К., Линдси, Л. Л. и Оуэнс, С. Д. Распространенность различных видов гемоплазмы среди кошек в США с возможным гемоплазмозом. J. Am. Вет. Med. Доц. 232 , 372–379 (2008).

    CAS PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 20.

    Танахара, М. и др. . Эпидемиологическое исследование инфекции кошачьей гемоплазмы в Японии. J. Vet. Med. Sci. 72 , 1575–1581 (2010).

    PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 21.

    Peters, IR, Helps, CR, Willi, B., Hofmann-Lehmann, R. & Tasker, S. Распространенность трех видов кошачьих гемоплазм в образцах, отправленных в диагностическую службу, по данным трех новых дуплексных ПЦР в реальном времени. анализы. Вет. Microbiol. 126 , 142–150 (2008).

    CAS PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 22.

    Haefner, M. et al. . Идентификация Haemobartonella felis ( Mycoplasma haemofelis ) у домашних кошек, содержащихся в неволе. J. Zoo Wildl. Med. 34 , 139–143 (2003).

    PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 23.

    Вилли Б. и др. . Распространенность инфекций кошачьей гемоплазмы у диких видов кошачьих во всем мире. J. Clin. Microbiol. 45 , 1159–1166 (2007).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 24.

    Андре, М. Р., Адания, К. Х., Аллегретти, С. М. и Мачадо, Р. З. Гемоплазмы у диких собак и кошачьих в Бразилии. J. Zoo Wildl. Med. 42 , 342–347 (2011).

    PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 25.

    Хирата М. и др. . Эпидемиологическое исследование гемоплазменной инфекции у кошек Iriomote ( Prionailurus bengalensis iriomotensis ). J. Vet.Med. Sci. 74 , 1531–1537 (2012).

    CAS PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 26.

    Hwang, J., Oh, D.-H., Lee, H. & Chun, M.-S. Anaplasma sp. и инфекция гемоплазмы у леопардовых кошек ( Prionailurus bengalensis euptilurus ) из Кореи. J. Vet. Sci. 16 , 385–388 (2015).

    PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 27.

    Келлнер, А. и др. . Пути передачи и распространение эритроцитарного бактериального патогена от домашних кошек к диким кошачьим. Экол . Evol ., Https://doi.org/10.1002/ece3.4451 (2018).

    PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 28.

    Millán, J. et al. . Высокое разнообразие гемотропных микоплазм у диких хищников Иберии. Сравн. . Иммунол . Микробиол . Заразить . Dis ., Https://doi.org/10.1016/j.cimid.2018.09.007 (2018).

    PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 29.

    Сайкс, Дж. Э., Дразенович, Н. Л., Болл, Л. М. и Лойтенеггер, К. М. Использование обычной полимеразной цепной реакции и полимеразной цепной реакции в реальном времени для определения эпидемиологии гемоплазменных инфекций у анемичных и неанемических кошек. J. Vet. Междунар. Med. 21 , 685 (2007).

    PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 30.

    Woods, J. E., Brewer, M. M., Hawley, J. R., Wisnewski, N. & Lappin, M. R. Оценка экспериментальной передачи Candidatus Mycoplasma haemominutum и Mycoplasma haemofelis21 кошкам Mycoplasma haemofelis21 . Am. J. Vet. Res. 66 , 1008–1012 (2005).

    PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 31.

    Lappin, M. R. Кошачьи гемоплазмы не передаются Ctenocephalides felis. в 9-м симпозиуме Всемирного форума CVBD . Лиссабон , Португалия 44–46 (2014).

  • 32.

    Museux, K. et al. . In vivo Исследования передачи ‘ Candidatus Mycoplasma turicensis’ у домашней кошки. Вет. Res. 40 , 1–14 (2009).

    Артикул Google ученый

  • 33.

    Вилли Б. и др. . Идентификация, молекулярная характеристика и экспериментальная передача нового изолята гемоплазмы от кошки с гемолитической анемией в Швейцарии. J. Clin. Microbiol. 43 , 2581–2585 (2005).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 34.

    Pennisi, M. G. et al. . Переливание крови кошкам: рекомендации ABCD по минимизации риска инфекционных ятрогенных осложнений. J. Feline Med. Surg. 17 , 588–593 (2015).

    PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 35.

    Сильва-Родригес, Э. А. и Сивинг, К. Э. Влияние ухода за домашними плотоядными животными на их хищничество с позвоночными. Консерв. Биол. 25 , 808–815 (2011).

    PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 36.

    Наполитано К., Гальвес Н., Беннетт М., Акоста-Джаметт Г. и Сандерсон Дж. Leopardus guigna . Красный список видов, находящихся под угрозой исчезновения МСОП, https://doi.org/10.2305/IUCN.UK.2015-2.RLTS.T15311A50657245.en (2015).

  • 37.

    Сандерсон, Дж., Санквист, М. Э. и У. Ириарте, А. Естественная история и ландшафтное использование гиньи ( Oncifelis guigna ) на острове Гранде-де-Чилоэ, Чили. J. Mammal. 83 , 608–613 (2002).

    Артикул Google ученый

  • 38.

    Акоста-Джаметт, Г. и Симонетти, Дж. А. Использование среды обитания Oncifelis guigna и Pseudalopex culpaeus в фрагментированном лесном ландшафте в центральной части Чили. Biodivers. Консерв. 13 , 1135–1151 (2004).

    Артикул Google ученый

  • 39.

    Гальвес, Н. и др. . Лесной покров за пределами охраняемых территорий играет важную роль в сохранении уязвимой гиньи, Leopardus guigna . Орикс 47 , 251–258 (2013).

    Артикул Google ученый

  • 40.

    Gálvez, N. et al. . Пространственно интегрированная структура для оценки социально-экологических факторов сокращения численности хищников. J. Appl. Ecol. 55 , 1393–1405 (2018).

    PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 41.

    Наполитано, К. и др. . Уменьшение генетического разнообразия и увеличение расселения в Гинье ( Leopardus guigna, ) в чилийских фрагментированных ландшафтах. J. Hered. 106 , 522–536 (2015).

    CAS PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 42.

    Mora, M., Napolitano, C., Ortega, R., Poulin, E. & Pizarro-Lucero, J. Инфекция, вызванная вирусом иммунодефицита кошек и вирусом кошачьей лейкемии, у свободно выгуливаемых морских птиц ( Leopardus guigna, ) и симпатрических домашних кошек в пейзаже, нарушенном человеком, на острове Чилоэ, Чили. J. Wildl. Дис. 51 , 199–208 (2015).

    PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 43.

    Уокер Вергара, Р. и др. . Распространенность, анализ факторов риска и гематологические данные о гемоплазменной инфекции у домашних кошек из Вальдивии, Южный Чили. Комп. Иммунол. Microbiol. Заразить. Дис. 46 , 20–26 (2016).

    PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 44.

    Cabello, J. et al. . Исследование возбудителей инфекционных заболеваний у исчезающих лисиц Дарвина ( Lycalopex fulvipes ): высокая распространенность и разнообразие гемотрофных микоплазм. Вет. Microbiol. 167 , 448–454 (2013).

    PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 45.

    Сайкс, Р. С. и Гэннон, В. Л. Руководство Американского общества маммологов по использованию диких млекопитающих в исследованиях. J. Mammal. 92 , 235–253 (2011).

    Артикул Google ученый

  • 46.

    Beltrán, S. и др. . Inmovilización química, evalación hematológica y coproparasitología de Leopardus colocolo en Khastor, Potosí, Bolivia. Ред. Расследование. Вет. Перу 20 , 297–305 (2009).

    Google ученый

  • 47.

    Harasawa, R., Orusa, R. & Giangaspero, M. Молекулярные доказательства хемотропной микоплазменной инфекции у японского барсука (Meles meles anakuma ) и енотовидной собаки ( Nyctereutes procyonoides viverrinus ). J. Wildl. Дис. 50 , 412–415 (2014).

    PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 48.

    Watanabe, M. et al. . Молекулярное обнаружение инфекции Mycoplasma haemominutum Mycoplasma haemofelis и Candidatu s Mycoplasma haemominutum у кошек методом прямой ПЦР с использованием цельной крови без экстракции ДНК. J. Vet. Med. Sci. 70 , 1095–1099 (2008).

    CAS PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 49.

    Дарриба Д., Табоада Г. Л., Доалло Р. и Посада Д. jModelTest 2: больше моделей, новая эвристика и параллельные вычисления. Нат. Методы 9 , 772 (2012).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 50.

    Посада Д. и Бакли Т. Р. Выбор модели и усреднение модели в филогенетике: преимущества информационного критерия Акаике и байесовских подходов перед тестами отношения правдоподобия. Syst. Биол. 53 , 793–808 (2004).

    PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 51.

    Стаматакис А., Гувер П. и Ружмонт Дж. Алгоритм быстрой загрузки для веб-серверов RAxML. Syst. Биол. 57 , 758–771 (2008).

    PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 52.

    Летунич, И.И Борк П. Интерактивное древо жизни (iTOL) v4: последние обновления и новые разработки. Nucleic Acids Res . (2019).

  • 53.

    Ронквист, Ф. и Хуэльсенбек, Дж. П. MrBayes 3: Байесовский филогенетический вывод в смешанных моделях. Биоинформатика 19 , 1572–1574 (2003).

    CAS Статья Google ученый

  • 54.

    Либрадо, П. и Розас, Дж. DnaSP v5: программное обеспечение для всестороннего анализа данных полиморфизма ДНК. Биоинформатика 25 , 1451–1452 (2009).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 55.

    Leigh, J. W. & Bryant, D. Popart: полнофункциональное программное обеспечение для построения сети гаплотипов. Methods Ecol. Evol. 6 , 1110–1116 (2015).

    Артикул Google ученый

  • 56.

    Бурбан, К., Petit, R.J., Carcreff, E. & Jactel, H. Широкие вариации морской чешуи из соснового луба Matsucoccus feytaudi Duc. (Homoptera: Matsucoccidae) в связи с генетической структурой хозяина. Мол. Ecol. 8 , 1593–1602 (1999).

    CAS PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 57.

    Понс, О. и Пети, Р. Дж. Оценка, дисперсия и оптимальная выборка разнообразия генов. Теор. Прил. Genet. 90 , 462–470 (1995).

    CAS PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 58.

    Понс, О. и Пети, Р. Дж. Измерение и тестирование генетической дифференциации с упорядоченными и неупорядоченными аллелями. Генетика 144 , 1237–1245 (1996).

    CAS PubMed PubMed Central Google ученый

  • 59.

    Excoffier, L. & Lischer, H.E. Arlequin Suite ver 3.5: новая серия программ для выполнения популяционного генетического анализа под Linux и Windows. Мол. Ecol. Ресурс. 10 , 564–567 (2010).

    PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 60.

    Хадсон, Р. Р. Новая статистика для обнаружения генетической дифференциации. Генетика 155 , 2011–2014 (2000).

    CAS PubMed PubMed Central Google ученый

  • 61.

    Данстон, Н. и др. . Пространственная организация, поведение в диапазоне и использование среды обитания кодкода ( Oncifelis guigna ) на юге Чили. J. Zool. 257 , 1–11 (2002).

    Артикул Google ученый

  • 62.

    Schüttler, E. et al. . Использование среды обитания и чувствительность к фрагментации самых маленьких диких кошек Америки. Мамм. Биол. 86 , 1–8 (2017).

    Артикул Google ученый

  • 63.

    Хансен, М. С. и др. . Глобальные карты изменения лесного покрова в XXI веке в высоком разрешении. наука 342 , 850–853 (2013).

    ADS CAS PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 64.

    Instituto Nacional de Estadística (INE), URL, http://www.ine.cl/estadisticas/medioambiente/informes-anuales (2017).

  • 65. Веб-сайт

    Ministerio de Bienes Nacionales, http: // www.ide.cl/descarga/capas/advanced-search/92.html.

  • 66.

    Команда, Р. К. Р: Язык и среда для статистических вычислений (2013).

  • 67.

    Тир, Дж. А. Нормальные диапазоны физиологических показателей в неволе диких животных. Инт . Виды Inf . Syst . Яблочный Вал . Минн . (2002).

  • 68.

    Волохов Д.В., Хван Дж., Чижиков В.Е., Данасо, Х. и Готтденкер, Н.Л. Распространенность, богатство генотипов и паттерны коинфекции гемотропных микоплазм у енотов ( Procyon lotor и Environmentally Protected). Урбанизированные Барьерные острова. Прил. Environ. Microbiol. 83 , e00211–17 (2017).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 69.

    Criado-Fornelio, A., Martinez-Marcos, A., Buling-Saraña, A. & Barba-Carretero, JC Присутствие Mycoplasma haemofelis, Mycoplasma haemominutum и пироплазмиды у кошек из южной Европы: a молекулярное исследование. Вет. Microbiol. 93 , 307–317 (2003).

    CAS PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 70.

    Лобетти, Р. Г. и Таскер, С. Диагностика инфекции гемоплазмы кошек с использованием анализа ПЦР в реальном времени. J. S. Afr. Вет. Доц. 75 , 94–99 (2004).

    CAS PubMed PubMed Central Google ученый

  • 71.

    Лурия Б. Дж. и др. . Распространенность инфекционных заболеваний у одичавших кошек в Северной Флориде. J. Feline Med. Surg. 6 , 287–296 (2004).

    PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 72.

    Таскер С. и др. . Диагностика инфекции кошачьей гемоплазмы у австралийских кошек с помощью анализа ПЦР в реальном времени. J. Feline Med. Surg. 6 , 345–354 (2004).

    CAS PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 73.

    Гонсалес-Акунья, Д. и Гульельмоне, А. А. Клещи (Acari: Ixodoidea: Argasidae, Ixodidae) из Чили. Exp. Прил. Акарол. 35 , 147 (2005).

    PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 74.

    Диас, Ф. Э., Мартинес-Вальдебенито, К., Лопес, Дж., Вайцель, Т. и Абарка, К. Географическое распространение и филогенетический анализ Rhipicephalus sanguineus sensu lato в северной и центральной частях Чили. Ticks Tick-Borne Dis. 9 , 792–797 (2018).

    PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 75.

    Терио, К. А., Макалоуз, Д. и Митчелл (урожденная Лейн), Е. Глава 10 — Кошачьи. in Патология диких животных и животных зоопарка (ред. Терио, К. А., Макалоуз, Д. и Леже, Дж. Стрит) 263–285 (Academic Press, 2018).

  • 76.

    Андре М. Р. и др. . Патогены, переносимые членистоногими, циркулируют среди домашних кошек, свободно гуляющих в зоопарке Бразилии. Ticks Tick-Borne Dis. 5 , 545–551 (2014).

    PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • Распространенность гемоплазменных инфекций у бездомных кошек в Северной Италии

    В этом исследовании изучалась распространенность кошачьих гемоплазменных инфекций в ряде колоний бездомных кошек в Милане, Северная Италия. Образцы крови 260 бездомных кошек оценивали с помощью стандартной ПЦР на наличие ДНК, связанной с Mycoplasma haemofelis (Mhf) и « Candidatus Mycoplasma haemominutum » (CMhm).Нечетные отношения (OR) были рассчитаны для определения факторов риска гемоплазменных инфекций. ПЦР была положительной у 86 из 260 субъектов (33,1%), с распространенностью 10,8% (28/260 кошек) для Mhf и 22,3% (58/260 кошек) для CMhm. Коинфекций не зарегистрировано. Существовали значительные ассоциации между инфекциями и сезоном отбора проб, то есть отрицательная связь между зимним отбором проб и положительным статусом гемоплазмы, или положительным статусом CMhm,. Гемоплазменные инфекции распространены среди бездомных кошек в Милане.Таким образом, домашних кошек, находящихся в открытом доступе, следует регулярно контролировать и лечить на предмет эктопаразитов, чтобы минимизировать риски заражения. Более того, поскольку эти инфекции передаются через кровь, доноры кошачьей крови из этой области должны быть проверены с помощью ПЦР и, предпочтительно, должны быть взяты из популяции домашних кошек, регулярно получающих лечение от блох.

    1. Введение

    Гемотропные микоплазмы (гемоплазмы) — это бактериальные организмы без клеточных стенок, которые прикрепляются к эритроцитам и растут на них.Описаны три вида гемоплазмы кошек: Mycoplasma haemofelis (Mhf), « Candidatus Mycoplasma haemominutum » (CMhm) и « Candidatus Mycoplasma turicensis » (CMt) [1]. Эти кошачьи гемоплазмы являются возбудителями инфекционной анемии у кошек и некоторых видов млекопитающих. Существует также потенциальная межвидовая передача некоторых из этих агентов, как было зарегистрировано от кошек собакам с ослабленным иммунитетом [2]. Их зоонозный потенциал недавно был подтвержден молекулярной идентификацией изолята кошачьей гемоплазмы (Mhf) у ВИЧ-положительного пациента с ослабленным иммунитетом [3].Три вида кошачьей гемоплазмы имеют разную патогенность, Mhf часто приводит к гемолизу и тяжелой анемии, в отличие от CMhm и CMt, которые менее патогенны [4].

    Хотя несколько исследований по всему миру сообщили об эпидемиологии кошачьего гемоплазмоза у больных или здоровых домашних кошек, принадлежащих клиентам, с распространенностью от 7,2% до 45,8% [5–19], и несколько исследований были сосредоточены на бездомных кошках (с распространенностью от 11,5%). % до 60% [20–24]), исследований по изучению бездомных кошек в Северной Италии не проводилось.Информация о региональной распространенности гемоплазм может быть использована для ограничения распространения болезней в популяциях кошек и для прогнозирования вероятности инфицирования кошек с анемией.

    Передача гемоплазмы еще недостаточно изучена. Векторный потенциал Ctenocephalides felis был продемонстрирован при экспериментальных инфекциях Mhf [25], и бездомные кошки могут играть роль в размножении микроорганизмов в виде блох, которые затем заражают домашних кошек, собак и людей.Прямая передача, при агрессивном взаимодействии с кошками или межвидовая передача может играть роль в эпидемиологии этих организмов. Кроме того, гемоплазмы могут передаваться напрямую через внутривенное вливание инфицированной крови [4, 26], и было показано, что они выживают до 1 недели в хранящихся продуктах крови [27]. По мере того, как введение свежей или хранящейся цельной крови становится все более распространенным явлением в медицине кошек, все большее значение приобретает информация о региональной распространенности патогенов, передающихся через кровь, у домашних и бездомных кошек, которые живут в одной среде и имеют одинаковые паразиты.Это предоставит полезную информацию для оценки рисков передачи инфекций, передающихся через кровь, от потенциальных доноров крови и для разработки оптимальных протоколов скрининга доноров крови.

    Целью этого исследования было оценить с помощью обычного ПЦР-анализа распространенность инфекций Mhf и CMhm у бездомных кошек из колоний в Милане и определить возможные факторы риска этих инфекций.

    2. Материалы и методы
    2.1. Популяция образцов и сбор данных

    В течение 2-летнего периода сбора (с января 2008 г. по январь 2010 г.) образцы крови были взяты у 260 бездомных кошек из городских колоний в Милане (Северная Италия) в условиях ловушки-кастрации (TNR). Программа утверждается местным органом власти городского совета.Программа проводилась, как описано ранее [28, 29].

    Возраст (оценивается на основе зубных рядов, животные младше 6 месяцев считались молодыми, тогда как все остальные считались взрослыми), пол (самец или самка), происхождение (место происхождения колоний) и оценка состояния тела (BCS 4– 6, указывающий на нормальный вес, 1-3 недовес) были записаны вместе с данными, полученными при физическом осмотре кошек (здоровых или нездоровых). К нездоровым кошкам относились кошки с одной или несколькими из следующих клинических аномалий: увеличение лимфатических узлов, бледность слизистых оболочек, стоматит или признаки глазных и респираторных инфекций.

    Сезонный анализ, основанный на дате отбора проб, был сгруппирован следующим образом: зима (январь, февраль и март), весна (апрель, май и июнь), лето (июль, август и сентябрь), осень (октябрь). , Ноябрь и декабрь). Систематически кошек не обследовали на наличие клещей или блох, поэтому показатели эктопаразитизма не регистрировались.

    2.2. Гематологический и серологический анализы

    Образцы крови были собраны в асептических условиях из яремной вены, в то время как кошек анестезировали для стерилизации и помещали в пробирки, обработанные ЭДТА, и пробирки для отделения сыворотки.

    В течение 24 часов после сбора образца был выполнен полный анализ цельной крови (CBC) с использованием системы ADVIA 120 (Siemens Healthcare Diagnostics, Милан, Италия). Кошки были разделены на категории по наличию или отсутствию анемии (HCT <24%), лейкопении (количество лейкоцитов <10,570 / мк л), лейкоцитозу (лейкоциты> 14,390 / мкл л) и тромбоцитопении (PLT <200,670 / мкл). мк л) [30]. Избыточную кровь хранили при -20 ° C для дальнейшего использования в ПЦР-анализе.

    После разделения образцы сыворотки были протестированы на антитела к FIV (относительно антигенов gp40 и p24 FIV) и на антиген p27 FeLV с помощью коммерческого набора для иммуноферментного анализа (ELISA) (Snap FeLV / FIV Combo Plus Test; Idexx Laboratories , Хофддорп, Нидерланды). Toxoplasma gondii сыворотки IgG-антитела были обнаружены с помощью непрямых флуоресцентных тестов на антитела (IFAT), выполненных с помощью коммерческого набора (Fuller-labratories, Fullerton, CA, USA). Титры ≥1: 64 считались серореактивными и, следовательно, свидетельствовали о воздействии T. gondii . Результаты этих серологических тестов уже были опубликованы [28] и были повторно проанализированы с получением настоящих результатов.

    2.3. Анализ ПЦР

    Обычную ПЦР проводили на образцах крови для амплификации ДНК, связанной с гемоплазмами (Mhf и CMhm) . Реакционная смесь включала 2 мкл мкл матричной ДНК, 0,25 мМ dNTP, 0,4 мМ каждого праймера, 1х реакционный буфер и 2,5 единицы ДНК-полимеразы Tap (GoTaq DNA Polymerase, Promega, Мэдисон, Висконсин, США). Объем этой смеси доводили до 25 мкл л стерильной водой. Использовали праймеры, которые нацелены на часть гена 16S рРНК, продуцируя продукт из 170 пар оснований (п.н.) из Mhf и ампликон из 193 п.н. из MChm (прямой праймер, 5′-ACG AAA GTC TGA TGG AGC AAT A-3 ‘и обратный праймер 5’-ACG CCC AAT AAA TCC GRA TAA T-3 ‘) [6, 31].ПЦР-реакции проводили с использованием автоматического термоциклера. Продукты ПЦР разделяли с использованием 2% агарозных гелей, и размер фрагментов оценивали с помощью маркера молекулярной массы ДНК (ДНК-лестница 50 п.н .; Promega Madison, WI, США). Контрольные реакции проводили в отсутствие матричной ДНК, чтобы исключить контаминацию во время ПЦР.

    2.4. Статистический анализ

    Связь между тремя группами статуса гемоплазмы (положительная гемоплазма, только положительная реакция на Mhf и только положительная реакция на CMhm) и категориальными переменными (возраст, пол, колония происхождения, BCS, сезон отбора проб, состояние здоровья, наличие или отсутствие отдельные клинические аномалии и аномалии общего анализа крови, статус FeLV / FIV и T.gondii ) были проанализированы с помощью одномерного анализа с использованием критерия хи-квадрат (частота клеток> 5) или точного критерия Фишера (частота клеток ≤5). Любые параметры, статистически связанные с положительными результатами ПЦР, использовали в модели логистической регрессии для проверки независимых факторов риска, связанных с инфекцией.

    Описательная статистика (включая минимум, максимум, среднее значение, медианное значение и стандартное отклонение (SD)) была получена для непрерывных переменных значений количества эритроцитов, HCT, HB, количества лейкоцитов и количества PLT.Распределение данных о нормальности оценивали с помощью теста Колмогорова-Смирнова, а -тест или тест Манна-Уитни, соответственно, использовали для проверки различий между кошками с положительной и отрицательной гемоплазмой кошек в зависимости от того, были ли данные распределены нормально или нет.

    Ассоциации считались статистически значимыми при. Сообщается как значение, так и отношение шансов (OR) с 95% доверительным интервалом (CI). Данные анализировали с помощью программного обеспечения MedCalc (версия 12.3.0; Mariakerke, Бельгия).

    3. Результаты

    Гемоплазматическая ДНК была обнаружена в 33,1% (86/260, 95% ДИ 26,5–40,9%) образцов крови. Из положительных образцов 28 кошек (10,8%, 95% ДИ 7,2–15,6%) были инфицированы Mhf и 58 кошек (22,3%, 95% ДИ 16,9–28,8%) были инфицированы CMhm. Коморбидных инфекций не зарегистрировано.

    Характеристики популяции и связь между факторами риска и статусом ПЦР гемоплазмы (отрицательный или положительный) представлены в таблице 1, а положительные результаты только Mhf и CMhm — в таблице 2.

    9010 , BCS: оценка состояния тела, CBC: общий анализ крови, CI: 95% доверительный интервал, OR: отношение шансов, FeLV: вирус лейкемии кошек и FIV: вирус иммунодефицита кошек.
    значения, выделенные жирным шрифтом, являются статистически значимыми.
    * Результаты многомерного логистического регрессионного анализа.
    531580%) 531580

    Фактор Категория Общее количество ПЦР значение
    (%) Отрицательное (%) Положительное (%)

    Зона 6 2 9011 1 3 (1,2%) 3/174 (1,7%) 0/86 (0,0%)
    Зона 2 11 (4.2%) 6/174 (3,4%) 5/86 (5,8%)
    Зона 4 108 (41,5%) 68/174 (39,1%) 40/86 (46,5%)
    Зона 5 12 (4,6%) 8/174 (4,6%) 4/86 (4,7%)
    Зона 6 27 (10,4 %) 15/174 (8,6%) 12/86 (14,0%)
    Зона 7 55 (21,2%) 41/174 (23/6%) 14 / 86 (16.3%)
    Зона 8 22 (8,5%) 14/174 (8,0%) 8/86 (9,3%)
    Зона 9 22 (8,5%) 19/174 (10,9%) 3/86 (3,5%)

    Возраст Несовершеннолетний (до 6 месяцев) 118 (45,4%) 81/174 (46,6%) 37/86 (43,0%)
    Взрослый (> 6 месяцев) 142 (54.6%) 93/174 (53,4%) 49/86 (57,0%)

    Пол Мужской 90 (34,6%) 30/174 %) 60/86 (69,8%)
    Женский 170 (65,4%) 144/174 (82,7%) 26/86 (30,2%)

    BCS Плохо (1–3 / 9) 18 (7,4%) 10/165 (6.1%) 8/78 (10,3%)
    Хорошо (4–6 / 9) 225 (92,6%) 155/165 (93,9%) 70/78 (89,7%) )

    Сезоны Зима 64 (24,6%) 54/64 (94,4%) 10/64 (15,6%) P = 0,01
    OR = 0,29
    CI = 0.14–0,61
    P = 0,001 *
    Пружина 69 (26,5%) 38/69 (55,1%) 31/69 (44,9%) Лето 31 (11,9%) 23/31 (74,2%) 8/31 (25,8%)
    Осень 96 (36,9%) 59/96 (61,5%) 37/96 (38,5%)

    Состояние здоровья Здоровый 72 (27.7%) 47/174 (27,0%) 25/86 (29,1%)
    Нездоровое 188 (72,3%) 127/174 (73,0%) 61/86 ( 70,9%)

    Клинические отклонения у нездоровых кошек Увеличение лимфатических узлов 133 (70,7%) 87/102 (85,3%)
    Слизистые оболочки бледные 14 (7.4%) 11/102 (10,8%) 3/86 (3,5%)
    Стоматит 101 (53,7%) 71/102 (69,6%) 30/86 ( 34,9%)
    Признаки инфекции дыхательных путей 22 (11,7%) 12/102 (11,8%) 10/86 (11,6%)
    Признаки глазной инфекции 40 (21,3%) 26/102 (25,5%) 14/86 (16,3%)

    Нарушения общего анализа крови
    Анемия 62 (3%) 33/91 (36,3%) 29/59 (49,2%)
    Лейкопения 15 (10,0%) 11/91 (12,1%) 4/59 ( 6,8%)
    Лейкоцитоз 5 (3,3%) 3/91 (3,3%) 2/59 (3,4%)
    Тромбоцитопения 1011 (6,7%) 4/91 (4,4%) 6/59 (10,2%)

    Результаты теста FIV Положительный 13 (7.8%) 8/102 (7,8%) 5/64 (7,8%)
    Отрицательный 153 (92,2%) 94/102 (92,2%) 59/64 ( 92,2%)

    Результаты теста на FeLV Положительные 6 (3,6%) 4/102 (3,9%) 2/64 (3,1%)

    16
    Отрицательный 160 (96,4%) 98/102 (96,1%) 62/64 (96.9%)

    T. gondii результаты теста Положительный 31 (27,4%) 18/87 (20,7%) 13/116 (28,3%) 90
    Отрицательный 82 (27,4%) 49/87 (56,3%) 33/46 (71,7%)

    цепная реакция полимеразы
    (%) BCS 915 80 P * 31 (19,4%) 9,21580 16/72 (22 9116 9 9,8%) 9topenia 2215,680 7/31 %)

    Фактор Категория Положительные результаты ПЦР
    Mhf6 значение значение

    Происхождение кошек Зона 1 0/3 (0.0%) 0/3 (0,0%)
    Зона 2 1/11 (9,1%) 4/11 (36,4%)
    Зона 4 12 / 108 (11,1%) 28/108 (25,9%)
    Зона 5 1/12 (8,3%) 3/12 (25,0%)
    Зона 6 6/27 ( 22,2%) 6/27 (22,2%)
    Зона 7 5/55 (9,1%) 9/55 (16,4%)
    Зона 8 2/22 (9.1%) 6/22 (27,3%)
    Зона 9 1/22 (4,5%) 2/22 (9,1%)

    Возраст Ювенильный ( ≤6 месяцев) 13/118 (11,0%) 24/118 (20,3%)
    Взрослые (> 6 месяцев) 15/142 (10,6%) 34/142 (23,9%)

    Пол Мужской 11/90 (12.2%) 15/90 (16,7%)
    Женский 17/170 (10,0%) 43/170 (25,3%)

    Плохо (1–3 / 9) 3/18 (16,7%) 5/18 (27,8%)
    Хорошо (4–6 / 9) 191/225 (84,9 %) 51/225 (22,7%)

    Сезоны Зима 4/64 (6.3%) 6/64 (9,4%) P = 0,01
    OR = 0,29 *
    CI = 0,12–0,70 *
    Весна 10/69 (14,5%) 21/69 (30,4%)
    Лето 2/31 (6,5%) 6 6 6
    Осень 12/96 (12.5%) 25/96 (26,0%)

    Состояние здоровья Здоровый 9/72 (12,5%) %
    Нездоровый 19/188 (10,1%) 42/188 (22,3%)

    Клинические аномалии у нездоровых кошек 131580 Lymph 33/133 (24.8%)
    Бледные слизистые оболочки 1/14 (7,1%) 2/14 (14,3%)
    Стоматит 11/101 (10,%) 19/101 (18,8%)
    Признаки инфекции дыхательных путей
    3/22 (14,1%) 7/22 (31,8%)
    Признаки глазного Инфекция 3/40 (7,5%) 11/40 (27.5%)

    Нарушения общего анализа крови Анемия 7/69 (10,1%) 22/69 (31,9%) 14 (0,0%) 4/14 (28,6%)
    Лейкоцитоз 0/5 (0,0%) 2/5 (40,0%) Th
    1/10 (10.0%) 5/10 (50,0%)

    Результаты теста FIV Положительный 1/13 (7,7%) % 4/13 (30,88 )
    Отрицательный 15/150 (10,0%) 44/150 (29,3%)

    Результаты теста FeLV Положительный % 1/6 (16,7%)
    Отрицательный 15/157 (9.6%) 47/157 (29,9%)

    T. gondii результаты теста Положительный 6/31 (19,4%)
    Отрицательный 6/81 (7,4%) 27/81 (33,3%)

    ПЦР: полимеразная цепная реакция; BCS: оценка состояния тела; CBC: общий анализ крови; ДИ: 95% доверительный интервал; ИЛИ: отношение шансов; FeLV: вирус лейкемии кошек; FIV: вирус иммунодефицита кошек.значения, выделенные жирным шрифтом, являются статистически значимыми.
    * Результаты многомерного логистического регрессионного анализа.

    Ни один из факторов риска не был связан с результатами ПЦР для гемоплазм (таблицы 1 и 2), за исключением отрицательных ассоциаций при однофакторном и многофакторном анализе между зимним сезоном отбора проб и положительным статусом гемоплазмы (, OR = 0,29 , 95% ДИ = 0,14–0,61,) и положительный статус CMhm (, OR = 0,29, 95% ДИ = 0,12–0.70,).

    Результаты клинического анализа крови 150/260 кошек представлены в таблице 3. Данные были нормально распределены в соответствии с тестом Колмогорова-Смирнова. Не было обнаружено значительных ассоциаций с аномалиями общего анализа крови и положительными результатами ПЦР гемоплазмы (рис. 1) или с количеством кошек с анемией и неанемией, использовавших -тест.

    Наивысшее значение ПЦР-положительный результат для всех гемоплазм 9116 9015 9015 9015 9116

    9116 9116

    9156 9116 9116

    9156 9116

    9116

    Переменная, контрольный диапазон Количество кошек Среднее SD Среднее
    Наименьшее значение
    WBC 59 11.019 4,427 10,720 1,558 23,240
    RBC 59 6,406 1,059 6,300 2,100 2,100 2,100 8,9 4,7 12,4
    HCT 59 24,7 1,4 24,7 13,2 32,2 13,2 32,2 90 693

    ПЦР-отрицательный для всех гемоплазм
    WBC 91 10.815 3,957 10,440 1,516 22,870
    RBC 91 6.555 1,113 6.550 3,780 9116 3,780 9116 3,780 9,2 14,6 13,2
    HCT 91 9,4 4,4 25,2 4,2 38,4 4,2 38,4
    PLT 119 800

    ПЦР-положительный Mhf
    WBC 15 10.547 3,062 9,990 6,400 15,460
    RBC 15 6,541 800 6,310 5,610 6,310 5,610 8,4 9,4 7,6 12,4
    HCT 15 24,8 3,1 25,2 20,4 30,9 20,4 30,9
    20,4 30,9
    135 693

    ПЦР-положительный CMhm
    WBC 43 11.181 4,825 10,790 1558 23,240
    RBC 43 6,360 1,138 6,285 2,100 6,285 2,100 8,285 2,100 2,100 8,9 4,7 12,1
    HCT 43 24,6 4 24,5 13,2 32,2 PLT 90 662

    WBC: лейкоциты; RBC: красные кровяные тельца; HB: гемоглобин; HCT: гематокрит; PLT: тромбоциты.

    4. Обсуждение

    Мы представляем первое исследование по изучению распространенности гемоплазмы у городских бездомных кошек из города Милан в Северной Италии.

    Распространенность гемоплазменной инфекции в нашей выборке была аналогична наблюдаемой во всем мире у принадлежащих клиентам [5–7, 9–15, 17–19] и бездомных кошек [19–23]. Сообщается, что инфекция CMhm является наиболее распространенной инфекцией: от 8% в Аризоне [21] до 41,6% в Португалии [19]; Инфекция Mhf была менее распространена в диапазоне от 0 до 0.От 5% в Швейцарии [9] до 12,8% в Португалии [19], а двойная инфекция отсутствовала или была редкой (не более 5,4%, как в Корее) [22].

    Распространенность гемоплазм у бездомных кошек в нашем исследовании (33,1%) была выше, чем в других исследованиях на бездомных кошках, проведенных во всем мире (Таблица 4). Различия в распространенности среди стран можно объяснить географическими различиями, такими как климат, распространение переносчиков и обследованная популяция кошек. Более того, прямые сравнения результатов распространенности имеют ограниченную ценность из-за характеристик выборки исследуемых популяций кошек (количество кошек, включенных в исследование, здоровых кошек по сравнению с больными), критериев включения, диагностических методов (молекулярные инструменты в сравнении с микроскопическим обнаружением), различных статистические методы, стадия инфекции (острая или хроническая) или их комбинация, что приводит к различиям между исследованиями.

    81 9010fcoplas ; CMhm: « Candidatus Mycoplasma haemominutum .

    80 CMhm (260)

    Источник образца
    (количество протестированных кошек) Ref
    Положительные образцы
    Общая распространенность Mhf 33,1% 10,8% 22,3%
    США (Флорида) (484) [20] 20,5% 8,3% 12,2%
    [Корея (331) 22] 14.5% 4,2% 10,3%
    США (Аризона) (112) [21] 27,7% 4,5% 8,0%
    Ирландия (75) [23] 17,3 % 1,3% 13,3%
    Канада (96) [24] 11,5% 3,1% 8,4%

    У бездомных кошек, участвовавших в этом исследовании, частота инфекций была выше, чем у домашних кошек в Северной Италии [12], в которых 18,9% кошек, прошедших ПЦР-тест, оказались положительными на гемоплазму. Высокая частота гемоплазм у бездомных кошек неудивительна, поскольку доступ на улицу является признанным фактором риска заражения. Например, в исследовании гемоплазмы у принадлежащих клиентам кошек из Барселоны (Испания) было обнаружено, что доступ на улицу является фактором риска заражения (OR = 3.8) [15]. Кроме того, в исследовании с участием доноров крови кошек из США распространенность гемоплазм составляла 19,7% у домашних кошек, находящихся в открытом доступе, и только 3,6% у домашних кошек, не допускаемых на улицу [8]. Кошки, находящиеся на свободном выгуле, могут больше контактировать с кровососущими членистоногими и проявлять более высокую боевую активность, чем домашние кошки; таким образом, у них может быть более высокий риск инфицирования гемоплазм.

    В нашем исследовании была выявлена ​​отрицательная статистическая связь между отбором образцов в зимний период и положительным статусом ПЦР гемоплазмы и положительным статусом CMhm.Это может быть связано со снижением активности блох на открытом воздухе в зимнее время года, хотя эта гипотеза является чисто умозрительной. Не было статистически значимых различий или какой-либо взаимосвязи между наличием инфекции гемоплазмы и статусом анемии или уровнями HCT между положительными и отрицательными группами гемоплазмы. Это открытие было несколько неожиданным и согласуется с исследованиями, проведенными на кошках, принадлежащих клиентам, в Швейцарии [9] и в Италии [12], которые также не обнаружили связи между инфекцией гемоплазмы и анемией или вариациями HCT.Кроме того, в других исследованиях не удалось продемонстрировать значительных различий в показателях распространенности гемоплазмы у здоровых кошек и кошек с анемией [10, 32]. Эти результаты можно объяснить более высокой распространенностью CMhm (менее патогенного вида, чем Mhf) в этом и предыдущих исследованиях или тем фактом, что у наших кошек с положительным результатом ПЦР неизвестна стадия инфекции, поскольку у кошек с хроническим инфицированием выздоровление после острого заболевания может протекать бессимптомно. Другое объяснение отсутствия связи между инфекционным статусом и наличием анемии в настоящем исследовании могло заключаться в том, что HCT был известен только для 150 из 260 протестированных кошек.

    Эпидемиологические данные о гемоплазме особенно важны в регионах, где действуют программы донорства кошачьей крови, как, например, в Милане, где донорская программа работает с 2010 года в Ветеринарном отделении переливания крови Университета (REV, Reparto di Medicina Emotrasfusionale Veterinaria). Гемоплазмы кошек могут передаваться напрямую при внутривенной инфузии свежей крови с антикоагулянтом EDTA [26], гепаринизированной крови [4] и при инфузии крови, хранящейся в растворе CPDA-1 в течение 1 часа (Mhf) и 1 недели (CMhm) [27 ].Кошки не могут надежно уничтожить организм после заражения [26], и большинство инфекций CMhm являются хроническими и бессимптомными [1]. Значительное количество бессимптомных кошек является положительным для инфекции гемоплазмы [16] и может играть роль, наряду с инфицированными кошками, в поддержании инфекции гемоплазмы в популяции. Все эти характеристики кошачьей гемотропной микоплазменной инфекции необходимо учитывать при выборе потенциальных доноров крови.

    К ограничениям этого исследования относится отсутствие информации о « Candidatus Mycoplasma turicensis » в популяции нашего исследования.Анализируемые факторы риска не были доступны для всех 260 кошек. Наконец, статистический анализ был ограничен в некоторых группах из-за размера выборки, поэтому на некоторые выводы или ассоциации могут повлиять ошибки типа I; то есть не наблюдалось различий между группами с положительной и отрицательной гемоплазмой из-за недостаточного размера выборки; например, не было зарегистрировано никакой связи между анемией и положительным результатом на гемоплазму из-за небольшого числа кошек с положительным диагнозом Mhf (28/260). Несмотря на эти ограничения, мы считаем, что это исследование предоставляет новую и полезную информацию о кошачьих гемоплазменных инфекциях у бездомных кошек в Италии.

    5. Заключение

    Из этого исследования можно сделать вывод, что кошачьи гемотропные микоплазмы Mhf и CMhm распространены в популяции бездомных кошек Милана. Действительно, домашних кошек, находящихся на открытом воздухе в этом регионе, следует регулярно контролировать и лечить от эктопаразитов, чтобы минимизировать риски для здоровья. Важно отметить, что доноры кошачьей крови в этой области должны пройти ПЦР-скрининг на эти инфекции перед сдачей крови, и желательно, чтобы доноры были взяты исключительно от домашних кошек, которые регулярно проходят контроль над блохами.

    Конфликт интересов

    Все авторы (Ева Спада, Даниэла Провербио, Паола Галлуццо, Алессандра Делла Пепа, Роберта Перего, Джада Багнагатти Де Джорджи и Элизабетта Ферро) заявляют об отсутствии конфликта интересов.

    Подтверждение

    Это исследование не получило специального гранта от какого-либо финансирующего агентства в государственном, коммерческом или некоммерческом секторах.

    Микоплазмы в медицине кошек (Proceedings)

    Виды микоплазм были выделены в нашей лаборатории от кошек с URTD (Veir et al 2004) и были обнаружены у кошек с URTD с большей частотой, чем у нормальных кошек другими авторами (Bannasch и Фоли 2005).Однако они легко обнаруживаются также в ротоглотке и носовой полости нормальных кошек (Randolph et al 1993, Tan et al 1977).

    Респираторные микоплазмы

    Микоплазмы видов были выделены в нашей лаборатории от кошек с URTD (Veir et al 2004) и были обнаружены у кошек с URTD с большей частотой, чем у нормальных кошек другими авторами ( Bannasch and Foley 2005). Однако они легко обнаруживаются в ротоглотке и носовой полости нормальных кошек (Randolph et al 1993, Tan et al 1977).У кошек с хроническим заболеванием верхних дыхательных путей видов Mycoplasma были выращены из носовой полости только у больных кошек, хотя контрольная группа была небольшой (Johnson et al 2005), а видов Mycoplasma были выращены в чистой культуре из полость носа при ретроспективном исследовании болезни (Cape 1992). Виды Mycoplasma также чаще выделялись из конъюнктивы кошек с конъюнктивитом по сравнению с нормальным контролем, и конъюнктивит был вызван экспериментально с видами Mycoplasma , хотя повторное введение было необходимо для появления клинических признаков (Haesebrouck et al. al 1991).

    Роль видов Mycoplasma как патогенов в заболеваниях нижних дыхательных путей у кошачьих также является предметом горячих споров, при этом многие авторы сообщают о выделении микоплазм из образцов нижних дыхательных путей (Chandler and Lappin 2002, Crisp et al 1987, Foster et al 1998, Foster et al 2004b, Foster et al 2004a), но они также изолированы от нормальных животных (Padrid et al 1991). Отдельные сообщения об ответе на терапию доксициклином у кошек с чистыми культурами видов Mycoplasma из нижних отделов дыхательных путей наводят на мысль, что эти микроорганизмы могут быть настоящими патогенами.Однако следует отметить, что эта группа организмов связана с заболеваниями нижних дыхательных путей у людей, часто в сочетании с астмой. Поскольку очень немногие центры имеют возможность измерять реактивность дыхательных путей у кошек, трудно определить, сколько из этих анекдотических сообщений также касается основного субклинического случая заболевания нижних дыхательных путей кошек.

    Еще одним мешающим фактором в дебатах о роли видов Mycoplasma в респираторных заболеваниях у кошек является привередливая природа организма. Виды Mycoplasma нуждаются в быстрой доставке в диагностическое учреждение, поскольку они плохо выживают вне организма-хозяина, и для культивирования требуются специальные среды (Johnson et al 2004), поэтому врач должен специально запросить культуру организма в большинстве случаев. удобства. Наконец, видов Mycoplasma растут медленно и требуют до недели культивирования.

    Появление методов обнаружения на основе нуклеиновых кислот значительно улучшило диагностику заболеваний человека.Микоплазменная пневмония — частая причина внебольничной пневмонии у людей. Однако из-за медленных микробиологических характеристик культуры при диагностике оцениваются результаты серологии и культуры. В небольшом сравнительном исследовании было показано, что ПЦР в реальном времени и обычная ПЦР по конечным точкам более чувствительны, чем и так же специфичны, как традиционный серологический диагноз (Templeton et al 2003), и позволяют проводить более целенаправленную терапию на ранних стадиях заболевания из-за сокращение времени выполнения работ.Повышенная чувствительность и время обработки также применялись к пациентам с микоплазменной пневмонией, чтобы снизить заболеваемость, связанную с методами отбора проб. Результаты ПЦР в реальном времени, примененной к сыворотке, были такими же специфическими, как и традиционные методы диагностики (серология и клинические признаки), но не такими чувствительными (Daxboeck et al 2005). Эти методы были оценены и на животных из семейства кошачьих. Специфическая для Mycoplasma felis стандартная ПЦР с конечными точками была недавно разработана и оценена для использования в клинических образцах из дыхательных путей кошек (Chalker et al 2004).ПЦР-анализ был одновременно чувствительным и специфичным, что позволяло широко использовать его в ветеринарных диагностических лабораториях и сокращало время обработки для клиницистов, ожидающих результатов. Другая лаборатория применила результаты стандартной конечной ПЦР, специфичной для Mycoplasma на уровне рода, как для промывания носа, так и для образцов биопсии у нормальных кошек и сравнила результаты с микробиологическим посевом (Johnson et al 2004). Соответствие между двумя анализами было превосходным, и ампликон с более широким определением может позволить использовать более полезный скрининговый анализ.В нашем исследовании организмов, связанных с URTD у кошек, было выявлено девять случаев, в которых традиционные первичные патогены не были обнаружены ни с помощью молекулярных, ни микробиологических методов культивирования, но были положительные образцы на Mycoplasma felis. Значение этих выводов еще предстоит определить.

    Гемоплазмы

    Недавняя реклассификация организмов, ранее называвшихся Haemobartonella haemofelis и Haembobartonella haemominutum, в род Mycoplasma, а также описание недавно описанного организма Candida Mycoplasma turicensis имеет значение для диагностики и лечения кошек.Несмотря на то, что инфицированию Candida Mycoplasma haemominutum приписывается несколько клинических признаков, болезненные состояния, связанные с Mycoplasma haemofelis, являются обычным явлением, и сообщается о росте числа клинически больных животных, связанных с животными, инфицированными Candida Mycoplasma turicensis. Диагностические тесты должны быть оценены на предмет специфичности и чувствительности обнаружения всех трех этих организмов, а также других гемотрофических микоплазм. Новые методы лечения устойчивых инфекций могут быть изначально экстраполированы на основе антимикоплазменных препаратов.

    Традиционно диагноз ставился на основе цитологического исследования мазков периферической крови. Гемоплазмы — это небольшие грамотрицательные эпицлеточные образования на эритроцитах кошек. Однако это нечувствительный диагноз, поскольку бактериемия в лучшем случае циклична, организмы имеют тенденцию отделяться от эритроцитов с накоплением, а организмы могут быть приняты за более часто идентифицируемые аномалии эритроцитов, включая тельца Хауэлла-Джолли и тельца Хайнца. Разработка ПЦР для всех трех обычно идентифицируемых гемоплазм кошачьих значительно улучшила точность и чувствительность обнаружения и должна стать золотым стандартом в ветеринарии.

    Доксициклин является основой лечения гемоплазм у кошек. Десять мг / кг перорально один раз в день было оценено и устраняет бактериемию, по крайней мере, на начальном этапе. Не забудьте либо использовать суспензию доксициклина, либо добавить шесть миллилитров воды или другой жидкости, чтобы избежать язвы пищевода и стриктур, связанных с доксициклином в твердой форме. Проблема с предыдущим лечением заключалась в том, что не удалось полностью избавиться от инфекции, что приводило к рецидивам, когда животное подвергалось стрессу или имеет сопутствующее заболевание.Реклассификация гемоплазм показала, что фторхинолоны также могут быть эффективными. Доза 5 мг / кг перорально два раза в день вылечила двух из пяти экспериментально инфицированных кошек даже после нескольких иммуносупрессивных доз депо-медрола. Наконец, в резистентных случаях можно рассмотреть возможность использования имидокарба, однако в острой фазе это редко бывает необходимо. Значительная анемия — наиболее частое опасное для жизни проявление инфекции гемоплазмами. Лечение бактериемии, конечно, является первой линией лечения, однако, если присутствует агглютинация солевого раствора, следует рассмотреть возможность применения глюкокортикоидов в дозе 1 мг / кг перорально один раз в день в течение семи дней до тех пор, пока агглютинация не исчезнет.Конечно, тем временем переливание крови является оплотом и его следует рассматривать у любой кошки, у которой проявляются значительные клинические признаки, включая крайнюю летаргию и тахикардию.

    Часто задаваемые вопросы о вирусе лейкемии кошек (FeLV)

    Дом » Ресурсы »Кошки» Часто задаваемые вопросы о вирусе лейкемии кошек (FeLV)
    Что такое FeLV?

    FeLV — вирус лейкемии кошек. Как следует из названия, это вирусная инфекция кошек, которая поражает иммунную систему и костный мозг кошки.

    Как кошки передаются FeLV?

    Вирус обычно передается от кошки к кошке при тесном контакте с инфицированными и незараженными кошками. Обычно он передается через слюну, но также может передаваться при уходе за собой, совместном использовании мисок, укусов и других формах тесного контакта. Обычно он не передается с мочой или фекалиями. Он также может передаваться от матери-кошки котенку внутриутробно или во время кормления грудью. Менее распространенные, но возможные причины передачи вируса включают в себя блох, переливание крови или зараженные иглы.

    Вирус не живет долго за пределами кошки-хозяина, поэтому распространение FeLV через одежду и руки человека очень маловероятно. Таким образом, если FeLV-положительная кошка содержится в отдельной комнате от FeLV-отрицательной кошки, передача вируса маловероятна (хотя было бы разумно не делиться мисками с едой).

    Каковы признаки инфекции FeLV?

    Специфических признаков инфекции FeLV нет. В целом, кошки с FeLV имеют более слабую иммунную систему, поэтому они более подвержены инфекциям, таким как инфекции верхних дыхательных путей, стоматологические заболевания и микоплазма гемофелиса.Большинство кошек с FeLV живут нормальной жизнью, но продолжительность их жизни, как правило, значительно короче. Около 80 процентов котят FeLV не доживают до трех лет, и большинство из них умирают в течение года. Молодые кошки, как правило, умирают от кошачьего инфекционного перитонита (FIP), лимфомы (рак, поражающий лимфатическую ткань) или болезни костного мозга. У пожилых кошек меньше шансов получить стойкую инфекцию, и когда они это сделают, они, как правило, лучше переносят болезнь.

    Как мне узнать, есть ли у моей кошки FeLV?

    Единственный способ узнать, есть ли у вашей кошки вирус FeLV, — это попросить ветеринара пройти тест, называемый ELISA.Кошки могут получить положительный результат в течение нескольких недель после заражения, но почти все кошки, у которых обнаружен вирус, будут положительными к 28 дням. Однако положительный результат теста означает, что вирус циркулирует в крови кошки; это не означает, что кошка будет инфицирована навсегда. У них есть возможность бороться с инфекцией.

    Чтобы узнать, является ли это хронической инфекцией, можно отправить тест IFA в лабораторию. Если этот тест положительный, кошка положительна на FeLV и всегда будет. Если он отрицательный, есть шанс, что кошка сможет бороться с инфекцией (хотя недавние исследования показывают, что вирус может просто бездействовать, пока физиологический фактор стресса не позволит ему снова циркулировать).Если ИФА отрицательный, ИФА и ИФА следует повторить через шесть недель. Некоторые кошки остаются дискордантными (положительными по ИФА, но отрицательными по ИФА) в течение очень долгого времени; возможно, у них локализованная инфекция. Мы не рекомендуем этим кошкам жить с кошками с отрицательным вирусом лейкоцита, поскольку они могут передавать вирус другим кошкам. Кошки, которые боролись с вирусом, с меньшей вероятностью заразятся повторно, но это возможно.

    Можно ли вылечить FeLV?

    Специфического лечения FeLV не существует, поэтому большая часть лечения FeLV-положительных кошек включает поддерживающую терапию.Поскольку FeLV-положительные кошки имеют более слабую иммунную систему, их нужно лечить от инфекций верхних дыхательных путей чаще, чем FeLV-отрицательных кошек. Кроме того, они, как правило, нуждаются в зубных тканях в более молодом возрасте, чем другие кошки.

    Что можно сделать, чтобы предотвратить распространение FeLV?

    Поскольку лекарства неизлечимы, лучшим лечением FeLV является профилактика. Если кошка с отрицательной реакцией на вирус лейкоцитов не находится рядом с кошкой с положительной реакцией на вирус, она не заразится вирусом. Это зависит от того, где человек живет, но примерно от 2 до 8 процентов уличных кошек являются FeLV-положительными.Таким образом, содержание кошек в помещении должно предотвратить заражение. Кроме того, все кошки, попадающие в дом, должны быть проверены, прежде чем вводить их своим кошкам.

    Есть вакцина против FeLV. Если ваша кошка все-таки выходит на улицу или вы приносите в дом кошек, которых вы не можете проверить или изолировать, ваша кошка должна быть вакцинирована, особенно в молодом возрасте. Однако вакцина не идеальна; была ассоциация опухолей, развивающихся на месте вакцины против FeLV. Однако с улучшением вакцин это становится все реже.

    Могут ли кошки с отрицательным и FeLV-статусом жить вместе?

    Негативная и позитивная кошка, безусловно, могут жить в одном доме, если они не контактируют друг с другом.

    Могут ли кошки с положительным вирусом иммунодефицита жить хорошо?

    FeLV-позитивные кошки могут жить совершенно счастливой жизнью, и они этого заслуживают. Людям, у которых есть FeLV-положительные кошки, просто нужно знать, что у них может быть более короткая продолжительность жизни и что их нужно отвезти к ветеринару, как только будет обнаружена проблема.

    Случай гемотрофического микоплазмоза кошек

    Пиклз — серый полидактильный кот (у него есть лишние пальцы), который обратился в ветеринарную больницу Гикори, потому что был вялым, гиперсаливающим, тяжело дышал и не ел. Пиклз тоже помочился на себя, что было очень необычно. Он комнатный кот.

    Соленья в его питомнике в ветеринарной больнице Хикори.

    Пиклз не испытывал проблем с пищеварением, таких как рвота или диарея, но накануне вечером он не ел и не пил.Владельцы Пиклза отметили, что, насколько им известно, он не употреблял ничего необычного. У него не было других известных болезней, и он находился на профилактическом лечении.

    Специалист по интенсивной терапии Шэрон Финстер, DVM, DACVECC, осмотрела Пиклз и начала диагностическое тестирование, чтобы разобраться в сути проблемы. Анализ крови показал умеренную или тяжелую нерегенеративную анемию, очень низкое количество эритроцитов, которое организм Пиклса не пытался исправить. На основании всех имеющихся данных доктор Финстер заподозрил гемотрофическую микоплазму.Образец крови был отправлен во внешнюю лабораторию для анализа. Он был доставлен в больницу на ночь, где ему сделали капельницу и назначили доксициклин, антибиотик. Ему не потребовалось переливание крови.

    На следующий день Пиклсу стало намного лучше, и он нормально ел и пил. Ветеринарная больница Гикори продолжала лечить соленья доксициклином от предполагаемой микоплазменной инфекции. Соленья хорошо отреагировали на лечение и смогли вернуться домой после лечения антибиотиками. Контрольное обследование было назначено на два дня спустя.Его анализ крови оказался положительным на Mycoplasma haemofelis.

    Гемотрофический микоплазмоз кошек (FHM) — необычная инфекция у кошек, вызываемая паразитом, передающимся через укусы блох. Паразит заставляет организм преждевременно разрушать эритроциты. Разрушение красных кровяных телец приводит к анемии, которая может быть опасной для жизни. Поскольку инфекция передается блохами, многие кошки из бродячих особей являются переносчиками. Передача от неодушевленных предметов, таких как миски с едой или подносы для мусора, маловероятна.

    Признаки этой инфекции включают, как и в случае с Пиклсом, вялость и бледность слизистых оболочек (например, слизистой оболочки глаз и десен). Однако многие случаи FHM остаются незамеченными. Некоторые кошки являются долгосрочными носителями болезни и даже передают болезнь другим кошкам, но не проявляют ее признаков до тех пор, пока их иммунная система не будет нарушена иным образом, или они не окажутся в состоянии стресса. По этой причине Ветеринарная больница Гикори проверяет всех доноров крови кошек перед их первой сдачей крови.

    Пиклз демонстрирует свои полидактильные лапы.

    Как и многие заболевания, связанные с паразитами, микоплазменную инфекцию можно предотвратить с помощью ежемесячной профилактики блох и клещей.

    Когда Пиклз пришел на повторный прием, он получил еще доксициклин. Владельцам соленья посоветовали продолжать прием доксициклина в течение трех недель. Пиклзу разрешили придерживаться своей обычной диеты и диктовать свой уровень активности.

    Они сообщают, что у Пиклза сейчас все хорошо! Он активен, сообразителен и внимателен.

    Ветеринарная больница Хикори благодарит родителей Пиклза и их ветеринара за то, что доверили нам свою заботу! Если с вашим питомцем что-то не так, посоветуйтесь с ветеринаром.

    Добавить комментарий

    Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *

    © 2007–2021. При использовании материалов упоминание сайта «ЖИВОЙ УГОЛОК» обязательно
    custom footer text right
    Iconic One Theme | Powered by Wordpress