Вакцина мультикан 8: Мультикан — 8 комплексная вакцина для собак , 1 доза

Антигенная активность усовершенствованной вакцины против чумы, аденовирусных инфекций, парвовирусного и коронавирусного энтеритов, лептоспироза и бешенства собак «Мультикан-8»

Алексей Николаевич Мухин, к.б.н., старший научный сотрудник

Ольга Васильевна Остапчук, научный сотрудник

Милана Анатольевна Лосич, к.б.н., научный сотрудник

Ирина Владимировна Непоклонова, к.в.н., заведующая отделом

Олег Анатольевич Верховский, д.б.н., профессор, президент

АНО «Научно-исследовательский институт диагностики и профилактики болезней человека и животных» (г. Москва)

Наталья Николаевна Концевая, к.в.н., зам. начальника ОКК

ООО «Ветбиохим», г. Москва.

Тарас Иванович Алипер, д.б.н., профессор, заведующий отделом

Федеральный научно-исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. Н.Ф. Гамалеи Минздрава РФ (г. Москва)

В статье представлены результаты исследования антигенной активности вакцины против чумы, аденовирусных инфекций, парвовирусного и коронавирусного энтеритов, лептоспироза и бешенства собак «Мультикан-8» с адъювантом на основе карбомера на 42 щенках 8-12 недельного возраста.

 

Профилактическая вакцинация, с использованием живых аттенуированных и инактивиронных вакцин вот уже более полувека является наиболее эффективным методом борьбы с инфекционными болезнями собак.

Для собак «базовыми», т.е. вакцинами, иммунизация которыми должна быть проведена всем животным, являются вакцины против чумы плотоядных, аденовирусных инфекций, парвовирусного энтерита, лептоспироза и бешенства.

К «дополнительным», но имеющим значение в определенных условиях относятся вакцины против коронавирусного энтерита и парагриппа собак [4, 13, 22].

В нашей стране более 20 лет применяется вакцина «Мультикан-8», содержащая живые аттенуированные штаммы вируса чумы плотоядных, аденовируса 2-го типа, право- и коронавируса собак и инактивированные производственные штаммы вируса бешенства и лептоспир серогрупп Icterohaemorrhagiae, Canicola и Gryppotyphosa, а также гидроокись алюминия в качестве адъюванта. Препарат обладает выраженной антигенной и иммуногенной активностями, безопасен для собак [2].

Недостатком этой вакцины является отсутствии возможности подкожного применения — при попадании под кожу входящая в ее состав гидроокись алюминия индуцирует образование местной безболезненной припухлости, которая рассасывается от нескольких дней до 1 – 2 недель. В некоторых случаях на месте введения возможно образование стерильного абсцесса.

В ветеринарии применяют инактивированные вакцины с адъювантом на основе карбомеров [6,7,8,9]. Карбомеры (карбополы)– синтетические высокомолекулярные полимеры акриловой кислоты, сшитые аллиловым эфиром сахарозы или пентаэритрита, которые входят в состав косметических и фармацевтических средств, предназначенных людям [15].

Антигенная активности, т.е. способность вакцины стимулировать синтез специфических антител является важным критерием качества препарата. Существует положительная корреляция между титром выявляемых в реакциях нейтрализации (вирус чумы плотоядных, аденовирус собак 1-го типа, вирус бешенства) или (и) торможения гемагглютинации (РТГА) (парвовирус собак) антител и защитой животных при контрольном заражении.

Цель работы – оценить антигенную активность вакцины против чумы, аденовирусных инфекций, парвовирусного и коронавирусного энтерита, лептоспироза и бешенства собак с адъювантом на основе карбомера для щенков.

Материалы и методы.

Для изготовления вакцины использовали:

Живые аттенуированные штаммы, депонированые в Государственную коллекцию вирусов Института вирусологии им. Д.И. Ивановского (в настоящее время ФНИЦ эпидемиологии и микробиологии имени Н.Ф. Гамалеи Минздрава РФ):

— вируса чумы собак (Canine distemper virus (CDV))» №37» адаптированный к перевиваемой культуре клеток почки зеленой мартышки Vero с активностью в культуре клеток 6,5lg ТЦД₅₀/см³;

— парвовируса собак (Canine parvovirus 2 (CPV-2))» №23», адаптированный к перевиваемой культуре клеток почки кошки CRFK с активностью 4Х10^4,0ГАЕ/см³;

— аденовируса собак 2-го типа (Canine adenovirus 2 (CAV-2))» №46», адаптированный к перевиваемой культуре клеток почки собаки MDCK с активностью в культуре клеток 6,0 lg ТЦД

50/см³;

— коронавируса собак (Canine coronavirus (CCoV))» №49», адаптированный к перевиваемой культуре клеток почки собаки MDCK с активностью в культуре клеток 7,5 lg ТЦД₅₀/см³;

Инактивированные производственные, депонированые в коллекции ФГБУ «ВГНКИ» штаммы:

— инактивированный β-пропиолактоном штамм вируса бешенства ERA-СВ-20М, полученный в перевиваемой культуре клеток почки сирийского хомячка ВНК-21 с активностью в культуре клеток 6,5 lg ТЦД₅₀/см³;

— инактивированные формальдегидом вакцинные штаммы лептоспир серологических групп Icterohaemorrhagiae, Canicola и Gryppotyphosa одноимённых сероваров.

Перевиваемые линии клеток культивировали стационарным и роллерным методами с использованием общедоступных питательных сред и растворов [1,3].

Инфекционную активность вируса чумы собак, аденовируса собак 2-го типа и коронавируса собак устанавливали титрованием в соответствующей культуре клеток по цитопатическому действию (ЦПД).

Инфекционную активность вируса бешенства до инактивации устанавливали титрованием в культуре клеток ВНК-21 с окраской специфическим флуоресцентным коньюгатом (FITS anti-Rabies monoclonal globulin, «Fujirebio», USA). Окраску проводили в соответствие с рекомендациями производителя.

Титры агентов рассчитывали методом Рида и Менча, выражая в lg ТЦД₅₀/см³ [1].

Титр парвовируса собак выражали в ГАЕ/см³ по результатам исследования культуральной жидкости микрометодом в реакции гемагглютинации с эритроцитами свиньи [1].

Концентрацию лептоспир определяли путем подсчета микробных клеток в тёмном поле микроскопа.

Для изготовления лиофилизированного компонента вакцины смешивали осветленные центрифугированием при 4500 об/мин в течение 20 мин при 4-6⁰ С вируссодержащие культуральные жидкости, содержащие вирус чумы, аденовирус, парво- и коронавирус собак со стабилизатором и подвергали лиофилизации в соответствие с ТР ООО «Ветбиохим».

Жидкий компонент вакцины (растворитель) изготавливали путем смешивания осветленной центрифугированием при 4500 об/мин в течение 20 мин при 4-6⁰ С вируссодержащей культуральные жидкости, содержащей инактивированный вирус бешенства, концентрат лептоспир до конечной концентрации 6Х10⁸ клеток/см³ и адъюванта до конечной концентрации 10%.

Адъювантом служила стерилизованная автоклавированием 2%-ная суспензия полимера акриловой кислоты (Corel Pharma Chem, Индия).

Контроль качества полученного препарата осуществляли в соответствие ТР ООО «Ветбиохим» и СТО 76418883-1003-2011. Контаминацию препаратов посторонними вирусами, бактериями, грибами и микоплазмами исключали общепринятыми методами [24].

Иммуногенную активность изготовленного препарата в отношение вируса бешенства исследовали на беспородных белых мышах по методу NIH (Национальный институт здоровья, США) [24].

Антигенную активность вакцины исследовали на 42 клинически здоровых ранее не вакцинированных щенках обоих полов в возрасте 8 -12 недель, содержавшихся в домашних условиях.

Всем животным дважды с интервалом 21 день подкожно в межлопаточную область вводили исследуемую вакцину в дозе 1см

3. 

До иммунизации, на 21- и 42-й дни после первой вакцинации, у всех животных брали пробы крови.

Сыворотку крови исследовали на наличие специфических антител к вирусу чумы, аденовирусам и коронавирусу собак в реакции нейтрализации, к парвовирусу собак в реакции торможения гемагглютинации (РТГА) с эритроцитами свиньи.

 Реакции ставили микрометодом по общепринятым методикам [1].

Наличие специфических антирабических антител определяли методом FAVN [12, 24].

Превентивную активность сывороток вакцинированных животных в отношение лептоспир определяли на золотистых хомяках [5].

До вакцинации у всех животных брали мазки из глотки, глаз и прямой кишки.

Мазки из глотки и глаз исследовали на наличие вируса чумы и аденовирусов собак, с помощью «Набора для выявления антигена вируса чумы собак иммуноферментным анализом (ИФА)» и «Набора для выявления антигенов аденовирусов плотоядных иммуноферментным анализом (ИФА)» ( «Ветбиохим», Россия) соответственно.

Для выявления парвовируса в мазках из прямой кишки применяли «Набор для выявления антигенов парвовируса собак, вирусов энтерита норок и панлейкопении кошек иммуноферментным анализом (ИФА)» ( «Ветбиохим», Россия).

Для выявления генетического материала коронавируса в мазках из прямой кишки использовали тест-систему для выявления и идентификации коронавирусов кошек и собак методом полимеразной цепной реакции «КОРОНАВИР» ( «ИнтерЛабСервис», Россия).

Тест-системы использовались в соответствии с рекомендациями производителей.

В исследованиях использовали только тех животных, результаты тестов материалов от которых на наличие соответствующих возбудителей до начала эксперимента были отрицательными.

Результаты исследований и обсуждение. Предварительные исследования изготовленной вакцины показали ее полное соответствие по качественным показателям ТР ООО «Ветбиохим» и СТО 76418883-1003-2011.

Иммуногенная активность вакцины в отношении вируса бешенства (NIH) составила 1,8 МЕ\дозу.

Все животные сохраняли нормальные поведенческие реакции во время и после вакцинации. При подкожной инъекции вакцины не отмечено чрезмерной болевой и аллергической реакций, а возникающая при этом припухлость спонтанно исчезала в течение 12 ч.

Результаты серологических исследований проб сыворотки крови двукратно вакцинированных щенков, представлены на рисунке 1.

У щенков до вакцинации не было вируснейтрализующих антител к вирусу чумы, коронавирусу собак и вирусу бешенства. Титр вируснейтрализующих антител к аденовирусам составил <1:2-1:8 (<1-3log₂ , средний геометрический 0,36 log₂), а уровень антигемагглютининов к парвовирусу собак был от 1:20 до 1:40 (4,32-5,32 log₂, средний геометрический 4,72 log₂).

 Введение вакцины стимулировало у животных синтез специфических антител, с увеличением их уровня после бустер-вакцинации.

Уровень вируснейтрализуещих антител к вирусу чумы плотоядных после однократной вакцинации составил 4-8 log₂ (1:6-1:256) (средний геометрический 6,05 log₂), с увеличением до 6-9 log₂ (1:64-1:512) (средний геометрический 7,06 log₂) после второй инъекции препарата.

 Титр вируснейтрализуещих антител к аденовирусам собак после первого введения вакцины был 7-8 log₂ (1:128-1:256) (средний геометрический 7,47 log₂), а после второй инъекции увеличился до 7-9 log₂ (1:128-1:512) (средний геометрический 8,36 log₂).

Средний геометрический титр вируснейтрализуещих антител к коронавирусу собак составил 3,31 log₂ и 4,79 log₂ после однократной и двукратной вакцинации соответственно.

После первой вакцинации уровень специфических антител к парвовирусу собак, выявляемые в реакции торможения гемагглютинации, повысился до 9,32 – 10,32 log₂ (1:640 – 1:1280) (средний геометрический титр 9,43 log₂). Повторная вакцинация привела к его дальнейшему увеличению у части животных до 11,32 log₂ (средний геометрический титр 9,64 log₂).

У всех животных после вакцинации выявляли нейтрализующие антитела к вирусу бешенства в титре превышающем необходимые для защиты 0,5 МЕ/см³. После однократной вакцинации – 1,99-7,92 МЕ/см³ (средний геометрический 3,26 МЕ/см³), и 4,56-10,45 МЕ/см³ (средний геометрический 6,5 МЕ/см³) после двукратной.

Превентивная активность сывороток вакцинированных животных в отношение лептоспир представлена на рис.2.

 До вакцинации превентивная активность сывороток крови щенков в отношении лептоспир серогрупп Icterohaemorrhagiae, Canicola и Gryppotyphosa была 10% (средняя по группе).

 Сыворотки крови, взятые через 21 день после первой вакцинации, в среднем защищали 60% хомяков при заражении лептоспирами серогруппы Icterohaemorrhagiae и 70% животных при заражении лептоспирами серогрупп Gryppotyphosa и Canicola соответственно.

После двукратной вакцинации сыворотки крови щенков обладали 90% превентивной активностью в отношении лептоспир всех 3-х серогрупп.

Соотношения животных с различным уровнем вируснейтрализующих антител к вирусу чумы плотоядных до и после вакцинации представлены на рисунке 3.

Уже первое введение вакцины позволило защитить щенков от чумы плотоядных – все животные имели уровень антител от 1:16 до >1:128. После второй вакцинации 50% животных имели титр 1:64-1:128, остальные выше, чем 1:128, что превышает протективный уровень вируснейтрализующих антител.

Однократная вакцинация стимулировала у всех щенков защиту от аденовирусных инфекций (Рис.4) – у 42,9% животных титр антител составил 1:64-1:128, а у 57,1% более чем 1:128. После бустер-вакцинации животных с титром вируснейтрализующих антител к аденовирусу собак более 1:128 стало 78,6%.

Несмотря на то, что протективным уровнем антител для защиты против парвовируса собак, некоторые исследователи считают 1:10-1:40, мы в своей работе исходили из того, что уровень антигемагглютининов меньший 1:20 не является специфическим (нормальные сыворотки крови собак содержат неспецифические антигемагглютинины), а титр 1:20 — 1:40 недостаточен для надежной защиты.

В нашем эксперименте все животные до вакцинации имели антитела к парвовирусу собак в титре 1:20-1:40. После первой иммунизации уровень антигемагглютининов к парвовирусу собак у 64,3,3% щенков стал 1:80 -1:640, а у 35,7% превысил 1:1280. После повторное введение вакцины приблизительно половина экспериментальных щенков имело титры антигемагглютининов к парвовирусу превышающие 1:1280 (Рис.5). 

Анализ результатов исследования уровня антирабических антител у вакцинированных щенков (Рис.6) показал, что все животные были защищены от бешенства уже после однократной вакцинации: 42,9% животных имели антитела в титре 1,5- 2,62 МЕ/см³, у 57,1% щенков уровень антител превысил 3,46 МЕ/см³. После бустер-иммунизации у всех животных титр антирабических антител превысил 3,46 МЕ/см³.

Применение серологических методов исследования служит надежным средством контроля эффективности вакцин для специфической профилактики инфекционных болезней собак.

Показана положительная корреляция между титром выявляемых в реакциях нейтрализации (РН) или (и) торможения гемагглютинации (РТГА) антител к вирусам чумы плотоядных, аденовирусу собак 1-го типа, парвовирусу собак и защитой животных при контрольном заражении вирулентными вирусами. Величина защитного титра антител в работах различных авторов в связи с использованием разных методов оценки отличается и колеблется в пределах: 1:4-1:16 для вируса чумы плотоядных (РН), 1:2-1:8 для аденовируса собак 1-го типа (РН), 1:10-1:40 для парвовируса собак (РТГА). При этом некоторые иммунизированные животные проявляли устойчивость к контрольному заражению даже при более низком уровне антител [10,11,16,20, 22, 23].

Выявление антирабических антител методом FAVN является «золотым стандартом» по определению протективного уровня вируснейтрализующих антител к вирусу бешенства. Установлено, что животные с уровнем антител в крови 0,5 МЕ и выше надежно защищены при контакте с вирусом бешенства [12,24].

При защите от коронавирусной инфекции собак ведущая роль принадлежит секреторным иммуноглобулинам слизистых. Наличие гуморальных антител к коронавирусу не всегда коррелирует с защитой при контрольном заражении, однако, сероконверсия после вакцинации свидетельствует о системном иммунном ответе на вакцинацию, что в свою очередь позволит избежать клинических признаков коронавирусной инфекции и значительно сократит время выделения коронавируса с фекалиями у таких животных [14,17,21].

Исследование превентивной активности сывороток крови вакцинированных собак для золотистых хомяков является наиболее информативным, в связи отсутствии четкой корреляции между наличием специфических антител к лептоспирам и защитой при контрольном заражении [18,19].

Заключение. Результаты проведенного эксперимента свидетельствуют о безвредности и высокой антигенной активности вакцины Мультикан-8 с адъювантом на основе карбомера. Препарат был безвреден для животных вызывал у всех иммунизированных им щенков образование специфических антител к возбудителям чумы плотоядных, парво- и коронавирусного энтеритов, аденовирусных инфекций и бешенства. Сыворотки крови вакцинированных песцов обладали превентивной активностью в отношении лептоспир серогрупп Icterohaemorrhagiae, Gryppotyphosa и Canicola.

Литература

1. Белоусова Р. В., Троценко Н. И., Преображенская Э. А. Практикум по ветеринарной вирусологии. Москва, 2006.
2. Диагностика и профилактика инфекционных болезней кошек и собак: Руководство для практикующих ветеринарных врачей под редакцией Т. И. Алипера. Москва, 2017; 207 – 212.
3. Дьяконов Л. П. Животная клетка в культуре (Методы и применение в биотехнологии). Москва, 2009.
4. Львов Д. К. Руководство по вирусологии. Вирусы и вирусные инфекции человека и животных. Медицинское информационное агентство. Москва, 2013.
5. Малахов Ю. А. и др. Метод оценки напряженности противолептоспирозного иммунитета у сельскохозяйственных животных, Материалы 6-й Всесоюзной научной конференции по лептоспирозу. Баку, 1975; 208-210.
6. Мухин А. Н. и др. Антигенная активность усовершенствованной инактивированной вакцины «Мультикан-8» для песцов. Ветеринария и кормление. 2019. № 6. С. 48-51.
7. Мухин А. Н. и др. Антигенная активность усовершенствованной инактивированной вакцины «Мультифел-4» против панлейкопении, инфекционного ринотрахеита, калицивирусной инфекции и хламидиоза кошек. Ветеринария. 2018. № 9. С. 22-27.
8. Мухин А. Н. и др. «Леоминор» – новая вакцина против вирусной лейкемии кошек, Труды Московского Международного ветеринарного конгресса. 2009; 6, 7.
9. Раев С. А. и др. Разработка и применение вакцины «ВЕРРЕС-ЦИРКО». Ветеринария сегодня. 2013; 3 (6):54 – 59.
10. Abdelmagid O. Y. et al. Evaluation of the efficacy and duration of immunity of a canine combination vaccine against virulent parvovirus, infectious canine hepatitis virus and distemper virus experimental challenges. Veterinary Therapeutics. 2004; 5, 173-186.
11. Bohm M. et al. Serum antibody titres to canine parvovirus, adenovirus and distemper virus in dogs in the UK which had not been vaccinated for at least three years. Veterinary Record. 2004; 154, 457–463.
12. Cliquet F. et al. Development of a fluorescent antibody virusneutralizing test (FAVN test) for the quantitation of rabies-neutralising antibody. J. Immunol. Meth. 1998; 212, 79-87.
13. Day M. J. et al. Guidelines for the vaccination of dogs and cats. Compiled by the vaccination guidelines group (VGG) of the World small animal veterinary association (WSAVA). Journal of Small Animal Practice. 2016; 57:E1 –
14. Decaro N. et al. Fecal immunoglobulin A antibodies in dogs infected or vaccinated with canine coronavirus. Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2004; 11:102-105.
15. EUROPEAN PHARMACOPOEIA — 8th EDITION. 2013; 1766 – 1768.
16. Gray L. K. et al. Comparison of two assays for detection of antibodies against canine parvovirus and canine distemper virus in dogs admitted to a Florida animal shelter. Journal of the American Veterinary Medical Association. 2012; 240, 1084–1087.
17. Greene C. E. et al. Canine viral enteritis // In: Infectious diseases of the dog and cat, 4th ed., Elsevier, 2012; p. 67-80.
18. Klaasen H. L. et al. Duration of immunity in dogs vaccinated against leptospirosis with a bivalent inactivated vaccine. Veterinary Microbiology. 2003; 95, 121–132.
19. Martin L. E.R. et al. Vaccine-associated Leptospira antibodies in client-owned dogs. Journal of Veterinary Internal Medicine. 2014; 28, 789–792.
20. Mouzin D. E. et al. Duration of serologic response to five viral antigens in dogs. J. of the Am. Vet. Med. Ass. 2004; 224, 55 –60.
21. Pratelli A. et al. Safety and efficacy of a modified-live canine coronavirus vaccine in dogs. Vet. Microbiol. 2004; 99, 43–49.
22. Schultz R. D. Duration of immunity for canine and feline vaccines: A review. Veterinary Microbiology. 2006; 117:75 – 79.
23. Schultz D. et al. Age and Long-term Protective Immunity in Dogs and Cats. J. Comp. Path. 2010; 142:102 – 108.
24. World Organization of Animal Health (OIE). Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals. 2018; ttp://www.oie.int/

ВАкцина Мультикан- 8 вакцина для собак в Алматы. вакцины для животных от компании «ТОО Вет-Фарм»

Описание

Вакцина Мультикан — 8.

 «Нарвак», Россия.
Перед применением лекарственных препаратов проконсультируйтесь с ветеринарным врачом!

Вакцина МУЛЬТИКАН-8 является безопасным и высокоэффективным средством специфической профилактики чумы, аденовирусных инфекций,  энтеритов, а также лептоспироза и бешенства собак. Вакцина состоит из двух компонентов:

· лиофилизированного (сухая однородная мелкопористая масса желто-розового цвета), изготовленного из аттенуированных штаммов вируса чумы собак, аденовируса собак типа 2,  собак;

· жидкого (гомогенная суспензия розового цвета с осадком), изготовленного из инактивированных производственных штаммов лептоспир серогрупп Сanicola и Icterohaemorrhagiae, инактивированного штамма вируса бешенства и адъюванта.

Жидкая вакцина является растворителем сухой лиофилизированной вакцины.

Иммунитет:

Вакцина вызывает формирование иммунного ответа у собак к чуме, аденовирусным инфекциям, энтеритам и лептоспирозу через 2-3 недели после иммунизации, продолжительностью у молодняка 6-8 месяцев, у взрослых — 12-15 месяцев.

 

• Вакцина безвредна и ареактогенна, лечебными свойствами не обладает.

• Вакцину не применяют в одном шприце с другими биопрепаратами и лекарственными средствами, а также в течение 7 дней после дегельминтизации и 14 дней после обработки хлор- и фосфорсодержащими препаратами.  
• Сыворотку крови вакцинированных животных не исследуют в реакции микроагглютинации (РМА) на наличие антител к лептоспирам в течение 2-х месяцев после введения вакцины.
• Запрещено вакцинировать клинически больных и/или ослабленных животных, собак в последний месяц беременности и в первый месяц после родов.

Вакцинации подлежат клинически здоровые щенки и взрослые собаки.
Перед применением лиофилизированную вакцину растворяют во флаконе (ампуле) с жидким компонентом, встряхивают до получения однородной взвеси.
Шприцы и иглы перед использованием стерилизуют кипячением в течение 10 минут. Для каждого животного используют отдельную иглу.

Вакцину вводят внутримышечно в области бедра в дозе 2 см³ сразу же после растворения.

• Собак мелких и декоративных пород прививают в дозе 1 см³.
  Первичная вакцинация включает в себя две инъекции: 1-я – в возрасте 8-10 недель, 2-я – через 21-28 дней после первой вакцинации.
  Ревакцинируют щенков в возрасте 10-12 месяцев, а взрослых животных вакцинируют один раз в год.

Следует избегать нарушений схемы (сроков) вакцинации, поскольку это может привести к снижению эффективности иммунопрофилактики чумы, аденовирусных инфекций, от энтеритов, лептоспироза и бешенства у собак. В случае пропуска очередного введения вакцины необходимо провести иммунизацию как можно скорее.

Вакцину хранят и транспортируют в сухом темном месте при температуре от 2°С до 8°С.

Информация для заказа

Фосфорилированные полипренолы как универсальные средства подавления репродукции вирусов

1. Антипина А.А., Попов В.С. ад Балабаньян В.Ю. Полипренолы как оригинальный класс природных соединений с широким спектром фармакологической активности. Фармация. 2021;70:15–21. doi: 10.29296/25419218-2021-05-02. [CrossRef] [Google Scholar]

2. Асадуллина И.И. Влияние противовирусного препарата фоспренил на рост и мясную продуктивность кроликов при инфекционном стоматите. Вестн. Башкирского гос. Аграр. ун-т 2008; 11:8–9. [Google Scholar]

3. Ассела Т., Лурейро Д., Тоут И. Будущие методы лечения инфекции, вызванной вирусом гепатита дельта. Ливер Интернэшнл. 2020;40:54–60. doi: 10.1111/liv.14356. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

4. Авакянц Б.М., Белоусова Р.В., Родин А.Н. и др. Опыт лечения ротавирусной инфекции // Ветеринарный консультант. 14, с. 8.

5. Батуев Ю.М., Березина Л.К., Наровлянский А.Н. и др. Активность фоспренила на модели медоносной пчелы, Ветеринария, 2003, вып. 5, стр. 26–28.

6. Беспалова Т.А., Сидоров Г.Н., Хитрова Е.А. Коррекция иммунного статуса здоровых норок и норок, инфицированных вирусом алеутской болезни // Ветеринарная патология. 3 (22), стр. 250–253.

7. Калверт К.А. Инфекционные болезни собак и кошек . Филадельфия: В. Б. Сондерс; 1990. [Google Scholar]

8. Данилов Л.Л., Мальцев С.Д., Деева А.В. Фоспренил: новый препарат с противовирусной и иммуномодулирующей активностью. Арка Иммунол. тер. Эксп. 1997;44:395–400. [PubMed] [Google Scholar]

9. Деева А.В., Ожерельков С.В., Жукова С.Л. и др. Фоспренил — противовирусный препарат широкого спектра действия // Ветеринарная практика. 1 (4), с . 12–22.

10. Деева А.В., Мищенко Н.К., Лобова Т.П. и др. Применение фоспренила для профилактики и лечения трансмиссивных гастроэнтеритов у свиней // Ветеринария. 2, стр. 12–15.

11. Деева А.В., Ракова Т.Н., Лобова Т.П. и др. Эффективность фоспренила для повышения неспецифической резистентности организма и лечения острых вирусных инфекций у молодняка крупного рогатого скота, Ветеринарная патология, 2005, вып. 1, стр. 96–98.

12. Дементьева В.А., Мехдиханов Г.Г., Деева А.В. и др. Неспецифическая профилактика респираторных заболеваний птиц аэрозольным применением Фоспренила // Ветеринария. 12, стр. 16–17.

13. Дмитришин О.П. Применение иммуномодуляторов при вирусных инфекциях собак, Научный вестник Львовского национального университета ветеринарной медицины та биотехнологии имени С. З. Гжицкого, 2012, том. 14, вып. 2–1 (52), стр. 102–108.

14. Ершов Ф.И., Пронин А.В., Санин А.В., Наровлянский А.Н. Сочетание традиционной терапии генитального герпеса с иммунотерапией: опыт применения отечественных иммунотерапевтических препаратов. Усп. соврем. биол. 2020; 140: 263–277. [Google Scholar]

15. Ершов Ф.И., Наровлянский А.Н., Пронин А.В., Санин А.В. Достижения в области медицины и биологии. Нью-Йорк: Nova Science Publishers, Inc.; 2017. [Google Scholar]

16. Фурман И.М., Васильев И.К., Наровлянский А.Н. и др. Фосфорилированные полипрениловые соединения растений, вероятно, способны контролировать сухую форму FIP у кошек, Российский ветеринарный журнал. МДЖ, 2010, вып. 3, стр. 42–43.

17. Ганшина И.В., Судьина Г.Ф., Санина В.Ю. Фосфорилированные полипренолы — новый класс соединений с противовоспалительной и бронхоспазмолитической активностью. Инфекции и иммунитет. 2011;1:355–360. [Google Scholar]

18. Глазунов Ю. В., Корнева В.С. Эффективность «Фоспренила» при лечении кишечной формы чумы плотоядных. Молодой ученый. 2016;26:225–227. [Академия Google]

19. Гленн Дж.С., Марстерс Дж.К., Гринберг Х.Б. Использование ингибитора пренилирования в качестве нового противовирусного агента. Дж. Вирол. 1998;72:9303–9306. doi: 10.1128/ОВИ.72.11.9303-9306.1998. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

20. Глотов А.Г., Глотова Т.И., Сергеев А.А. и др. Противовирусная активность различных препаратов in vitro в отношении вирусов инфекционного ринотрахеита и ринотрахеита крупного рогатого скота. диарея, Вопр. Вирусол., 2004, вып. 5, стр. 43–45. [PubMed]

21. Глотова Т.И., Глотов А.Г., Белкина Т.В. и др. Активность препаратов против ВД КРС, Ветеринария, 2005, вып. 8, стр. 26–28.

22. Глотова Т.И., Глотов А.Г., Русских В.В., Тугунова Т.Б. Противовирусная активность нового препарата Гамапрен в отношении вируса ринотрахеита кошек, Сиб. Вестн. С-х. науки, 2008, вып. 10, стр. 63–68.

23. Годунов Р.С. Иммуномодулирующая и противовирусная активность полипренолов природного происхождения: Автореф. науч. мед. наук, Москва: НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Н.Ф. Гамалеи РАМН, 2006.

24. Головещенко А.А., Деева А.В., Головещенко К.А. и др. Применение фоспренила при откорме цыплят-бройлеров // Ветеринария. 12, стр. 14–16.

25. Гордеева Е.В., Васильев И.К., Наровлянский А.Н. и др. Папилломатоз ротовой полости собак — новый подход к лечению // Российский ветеринарный журнал. МДЖ, 2008, вып. 2, стр. 15–17.

26. Григорьева Е.А. Иммуномодулирующее действие противовирусного препарата фоспренил в норме и при экспериментальной гриппозной инфекции, Автореферат канд. науч. биол. наук , Москва: НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Н.Ф. Гамалеи РАМН, 2004.

27. Гулюкин А.М., Хисматуллина Н.А., Гафарова А.З. и др. Оценка иммунного статуса собак, вакцинированных различными антирабическими вакцинами в сочетании с иммуностимуляторами // Ветеринарная медицина. . 97, стр. 266–268.

28. Чжон А., Суазо К.Ф., Вуд В.Г. Изопреноиды и пренилирование белков: значение в патогенезе и терапевтическом вмешательстве при болезни Альцгеймера. крит. Преподобный Биохим. Мол. биол. 2018;53:279–310. doi: 10.1080/10409238.2018.1458070. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

29. Карал-оглы Д.Д., Мезенцева М.В., Агрба В.З. и др. Эффективность применения новых отечественных препаратов фоспренил и гамавит при обезьян, зараженных цитомегаловирусом, в Интерферону – 50 лет. Юбилейный сборник, посвященный открытию интерферонов, 100-летию академика АМН СССР В.Д. Соловьева и 45-летию отдела интерферонов ГУ НИИЭМ им. Н.Ф. Гамалеи РАМН (Интерферону 50 лет. Юбилейный сборник, посвященный открытию интерферонов, 100-летию академика АМН СССР В.Д. Соловьева и 45-летию отдела интерферонов НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Н.Ф. Гамалеи РАМН), Москва, 2007, с. 204–213.

30. Конюшко О.И., Ожерельков С.В., Ворович М.Ф. Линии диплоидных фибробластов человека — тест-система для изучения иммуномодулирующих свойств современных иммунобиологических препаратов, Бюллетень Экспериментальной . Биологии и Медицины. 2020;170:188–191. [Google Scholar]

31. Кошляк В.В. Канкалова А.В. Породная предрасположенность собак к парвовирусному энтериту, лечебная и экономическая эффективность методов лечения // Междунар. Науч.–исслед. Ж., 2022, №№ 1–2 (115), стр. 42–46.

32. Кожевникова Т.Н., Ворович М.Ф., Козлов В.Г. и др. Применение фоспренила в качестве адъюванта для вакцин и стимулятора продукции специфических антител при изготовлении гипериммунных сывороток // Российский ветеринарный журнал. МДЖ, 2006, вып. 2, стр. 8–10.

33. Кожевникова Т.Н., Викторова Е.Г., Козлов В.Г. и др. Морапренилфосфаты ингибируют репликацию вируса энцефаломиелита Тейлера и накопление вирусного белка VP3 в чувствительных культурах клеток BHK-21 и P388D1, Ж. микробиол., эпидемиол. Иммунобиол., 2007, вып. 3, стр. 26–30. [PubMed]

34. Кожевникова Т.Н., Ожерельков С.В., Изместьева А.В. и др. Влияние препаратов Гамапрен и Фоспренил, созданных на основе растительных полипренолов, на продукцию некоторых регуляторных цитокинов в норме и экспериментальный клещевой энцефалит у мышей, Российский иммунологический журнал, 2008, т. 1, с. 2, нет. 11, вып. 2–3, pp. 250.

35. Красота А.Ю., Алексеева Н.Ю., Курбанбекова З.Д. и др. Новые подходы к лечению респираторных и кишечных вирусных инфекций крупного рогатого скота с применением препарата «Фоспренил», Ветеринария Сельскохозяйственных Животных, 2011, вып. 5, стр. 24–25.

36. Крузе Б.Д., Унтерер С., Хорлахер К. Прогностические факторы у кошек с панлейкопенией кошек. Дж. Вет. Стажер Мед. 2010; 24:1271–1276. doi: 10.1111/j.1939-1676.2010.0604.x. [PubMed][CrossRef][Google Scholar]

37. Кушнирук Т.Н., Сегал И.Н., Яковлева Е.Г. Влияние фоспренила и эхинацеи на выраженность иммунитета к болезни Ньюкасла у цыплят-бройлеров. Белгород: Белгород. Гос. сельскохоз. академик, 2005, вып. 4, стр. 55–58.

38. Лежандр А.М., Куриц Т., Галион Г. Полипрениловое иммуностимуляторное лечение кошек с предполагаемым невыпотным кошачьим инфекционным перитонитом в полевых исследованиях. Границы ветеринарии. 2017;4:7–20. doi: 10.3389/fvets.2017. 00007. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

39. Масалова О.В., Леснова Е.И., Онищук А.А. Полипренилфосфаты вызывают высокий гуморальный и клеточный ответ на иммунизацию рекомбинантными белками репликативного комплекса вируса гепатита С. Доклады биохим. Биофиз. 2018; 482: 261–263. дои: 10.1134/S1607672918050083. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

40. Мурзалиев И.Дж. Зайцева О.О. Оценка иммунологической активности противовирусных препаратов фоспренил и форвет. Уч. Зап. УО ВГАВМ. 2017; 53:104–106. [Google Scholar]

41. Наровлянский А.Н., Березина Л.К., Веткова Л.Г. и др. Лечение герпесвирусных инфекций полипренолами. Ветерин. Клин., 2005, вып. 2, стр. 11–15.

42. Наровлянский А.Н., Васильев А.Н., Савойская С.Л. и др. Изопреноидная система: роль в противовирусном иммунитете, Ведомости научн. Центр Эксперт. Средства Мед. примен., 2007, вып. 3, стр. 66–78.

43. Наровлянский А.Н., Парфенова Т.М., Васильев А.Н. и др. Фортепрен – новый перспективный противогерпесный препарат на основе полипренилфосфатов // Российский иммунологический журнал. 2, нет. 11, вып. 2–3, с. 256.

44. Наровлянский А.Н., Дерябин П.Г., Седов А.М. и др. Противовирусная активность полипренилфосфатов при экспериментальной инфекции, вызванной вирусом гепатита С in vitro , Ж. микробиол. Эпидемиол. Иммунол., 2012, вып. 5, стр. 80–84. [PubMed]

45. Наровлянский А.Н., Ожерельков С.В., Санин А.В. и др. Противовирусная активность и возможные механизмы действия морапренилфосфатов при экспериментальной инфекции, вызванной вирусом простого герпеса 1 типа, Журн. микробиол. Эпидемиол. Иммунол., 2014, вып. 5, стр. 54–60. [PubMed]

46. Наровлянский А.Н., Иванова А.М., Шевлягина Н.В. Эффективность полипренилфосфатов на экспериментальной модели генитального герпеса. Вопр. вирусол. 2015;60:9–13. [PubMed] [Google Scholar]

47. Наровлянский А.Н., Седов А.М., Пронин А.В. и др. Лечение больных хронической рецидивирующей герпесвирусной инфекцией генитальной локализации: клиническое исследование препарата фортепрен. микробиол. Эпидемиол. Иммунол., 2015а, вып. 4, стр. 112–118. [PubMed]

48. Наровлянский А.Н., Пронин А.В., Санин А.В. Изопреноиды: полипренолы и полипренилфосфаты как физиологически важные регуляторы метаболизма . Нью-Йорк: Новая наука. Издатели. Инк .; 2018. [Google Академия]

49. Околелова А.И. и Бобина Е.А. Определение наиболее эффективной схемы лечения вирусного папилломатоза у собак. 2–2 (54), стр. 34–35.

50. Онищук А.А., Масалова О.В., Леснова Е.И. и др. Сравнительный анализ гуморального и клеточного иммунного ответа мышей на нуклеотидные и аминокислотные последовательности вируса гепатита С, введенные с новым адъювантом на основе полипренилфосфаты, Актуальная Биотехнология ., 2017, вып. 2 (21), стр. 235–237.

51. Ожерельков С.В. Роль естественных иммуномодулирующих факторов в патогенезе экспериментальных вирусных инфекций. Автореф. науч. биол. наук, Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов им. член парламента Чумакова РАМН, 2003.

52. Ожерельков С.В. Фоспренил в качестве адъюванта для инокулята вакцины против бешенства, Тр. Всес. Научно-Исслед. Инст. Эксп. Вет. Я.Р. Коваленко. 2018; 80: 277–282. [Академия Google]

53. Ожерельков С.В. и Кожевникова Т.Н. Изучение адъювантного действия фоспренила на иммуногенность вакцин против парвовирусного энтерита и бешенства в эксперименте // Ветеринария Кубани. 1, стр. 33–35.

54. Ожерельков С.В., Тимофеев А.В., Новикова Г.П. Протективное действие нового противовирусного препарата фоспренила при экспериментальном клещевом энцефалите. Вопр. вирусол. 2000;45:33–37. [PubMed] [Google Scholar]

55. Ожерельков С.В., Белоусова Р.В., Данилов Л.Л. Препарат Фоспренил подавляет размножение вируса диареи и инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота в чувствительных культурах клеток. Вопр. вирусол. 2001; 5:43–45. [PubMed] [Академия Google]

56. Ожерельков С.В., Санин А.В., Деева А.В. и др. Фоспренил стимулирует продукцию ИЛ-4, ИЛ-5 и ИЛ-12 in vivo у мышей BALB/c, J. Interferon Cytokine Res. ., 2002, т. 1, с. 22, нет. С, с. 183.

57. Ожерельков С.В., Калинина Е.С., Кожевникова Т.Н. Экспериментальное изучение феномена антителозависимого повышения инфекционности вируса клещевого энцефалита in vitro , Журн. микробиол., эпидемиол. Иммунобиол., 2008, вып. 6, стр. 39–43. [PubMed]

58. Ожерельков С.В., Деева А.В., Санин А.В. Полипренилфосфаты как адъюванты, поляризующие иммунный ответ на Th2. Инфекция и Иммунитет. 2012;2:645–650. [Google Scholar]

59. Ожерельков С.В., Кожевникова Т.Н., Наровлянский А.Н. и др. Противовирусное действие фоспренила и гамапрена в отношении флавивирусов // Ветеринария и кормление. 3, стр. 78–80.

60. Ожерельков С.В., Кожевникова Т.Н., Наровлянский А.Н. и др. Фоспренил стимулирует иммуногенность вакцин против бешенства и клещевого энцефалита, Ветеринария и кормление, 2017б, вып. 3, стр. 80–81.

61. Переслегина И.О. и Жавнис С.Е. Достижение ремиссии в комплексной терапии инфекционного перитонита кошек: клинический случай, Ветеринария, 2019, №2. 6, стр. 48–52.

62. Переслегина И.О., Виденина А.А., Наровлянский А.Н. Новый подход к терапии FIP, Российский ветеринарный журнал. МДЖ, 2013, вып. 1, стр. 6–10.

63. Переслегина И.О., Дубровина Т.С., Клинцова Т.Ю. и др. Сравнение двух протоколов лечения панлейкопении кошек, Российский ветеринарный журнал. МДЖ, 2017, вып. 5, стр. 24–28.

64. Петракова А.О. Обзор основных принципов этиопатогенетической терапии парвовирусного энтерита собак // Аллея науки . 2018. № . 2, нет. 1 (17), стр. 388–393.

65. Полозюк О.Н., Сергеев А.А. Клык плоскостопие и способ его лечения // Аграрная наука в условиях становления цифровой экономики и производства экологически чистой продукции в Российской Федерации. Мат. Междунар. Науч.-Практ. Конф. Персидский (Сельскохозяйственная наука в контексте формирования цифровой экономики и производства экологически чистой продукции в Российской Федерации. Материалы междунар. науч. конф. Персидский пос. ), 2021. С. 77–80.

66. Пронин А.В. Иммуномодуляция и вакцинопрофилактика: опыт применения фоспренила, Российский ветеринарный журнал. СХЖ, 2005, вып. 1, стр. 42–44.

67. Пронин А.В., Ожерельков С.В., Наровлянский А.Н. Роль цитокинов в иммуномодулирующих эффектах полипренилфосфата: противовирусные препараты нового поколения. Российский иммунологический журнал. 2000; 5: 155–164. [PubMed] [Академия Google]

68. Пронин А.В., Григорьева Е.А., Санин А.В. Полипренолы как возможные факторы, определяющие инструктивную роль врожденного иммунитета в приобретенном иммунном ответе. Российский иммунологический журнал. 2002; 7: 135–142. [PubMed] [Google Scholar]

69. Пронин А.В., Наровлянский А.Н., Дерябин П.Г. и др. Противовирусное действие фоспренила при гриппозной инфекции // Ветеринария и кормление . 2005. № . Вып. 6, с. 25.

70. Пронин А.В., Наровлянский А.Н., Дерябин П.Г. и др., Фоспренил и профилактика птичьего гриппа, Ветеринария Кубани, 2006, вып. 2, стр. 27–28.

71. Пронин А.В., Ожерельков С.В., Деева А.В. Полипренилфосфаты как адъюванты, поляризующие иммунный ответ на Th2. Мед. Иммунол. 2011;13:529. [Google Scholar]

72. Пронин А.В., Данилов Л.Л., Наровлянский А.Н. и др. Полиизопреноиды растений и контроль уровня холестерина. Arch. Иммунол. тер. Эксп., т. 2014, нет. 62 (1), стр. 31–39. [PMC free article] [PubMed]

73. Пронин А.В., Наровлянский А.Н., Шульженко А.Е. и др. Новый препарат на основе полипренилфосфата фортепрен как перспективное цитокинорегулирующее противовирусное средство, Cytokine Growth Factor Rev., 2016, стр. 119–126. [PubMed]

74. Пронин А.В., Наровлянский А.Н., Санин А.В. Новые подходы к профилактике и лечению вирусных заболеваний. Арка Иммунол. тер. Эксп. (Варш) 2021;69:10. doi: 10.1007/s00005-021-00613-w. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

75. Ростроса П.А., Санин А.В., Наровлянский А.Н. и др. Повышение естественной резистентности и выживаемости норок при алеутской болезни. Российский ветеринарный журнал, 2019, вып. 6, стр. 14–19.

76. Руднева С.Ю., Наровлянский А.Н., Пронин А.В. и др. Лечение папилломатоза полости рта у собак фоспренилом // Российский ветеринарный журнал. МДЖ, 2016, вып. 3, стр. 9–11.

77. Сагами Х., Свизевска Е., Сидоджи Ю. История и последние достижения в исследованиях полипренола и его производных. Биологические науки, биотехнологии, биохимия. 2018; 82: 947–955. doi: 10.1080/09168451.2017.1411775. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

78. Санин А.В., Веселовский В.В., Данилов Л.Л. и др. Повышение мобилизации гемопоэтических стволовых клеток фосфорилированными полиизопреноидами // Российский иммунологический журнал. 2 (11), вып. 2–3, с. 113.

79. Санин А.В., Савойская С.Л., Васильев И.К. и др. Эффективность гамапрена при респираторных вирусных инфекциях у кошек // Ветеринария Кубани. 6, стр. 29–30.

80. Санин А.В., Суслов А.П., Третьяков О.Ю. и др. Разнонаправленное действие МИФ и полипренилфосфата натрия на течение экспериментальной флавивирусной инфекции у мышей, Ж. микробиол. Эпидемиол. Иммунол., 2011а, вып. 5, стр. 56–61. [PubMed]

81. Санин А.В., Наровлянский А.Н., Пронин А.В. Иммуномодуляторы в сельском хозяйстве — прихоть или необходимость // Российский ветеринарный журнал. СХЖ., 2011б, вып. 1, стр. 37–40.

82. Санин А.В., Виденина А.А., Наровлянский А.Н., Пронин А.В. Об использовании иммуномодуляторов в птицеводстве // Птица и птицепродукты. 6, стр. 34–36.

83. Санин А.В., Пронин А.В., Наровлянский А.Н. и др. Экспериментальное изучение противовирусной эффективности фосфорилированных полипренолов против вируса кошачьего ринотрахеита in vitro и in vivo, Ветеринария, 2015, вып. 11, стр. 17–21.

84. Санин А.В., Наровлянский А.Н., Пронин А.В. и др. Изучение антиоксидантной активности фоспренила в различных биологических тест-системах. Российский ветеринарный журнал. МДЖ, 2017а, вып. 10, стр. 28–31.

85. Санин А.В., Дерябин П.Г., Наровлянский А.Н. Противовирусная активность Фоспренила и Гамапрена в отношении инфекции, вызванной вирусом гриппа А (H5N1) в культуре клеток. Вопр. вирусол. 2017;62:168–173. doi: 10.18821/0507-4088-2017-62-4-168-173. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

86. Санин А.В., Наровлянский А.Н., Пронин А.В. и др. Экспериментальное изучение противовирусной активности Гамапрена в отношении вируса простого герпеса in vitro // Российский ветеринарный журнал. МДЖ, 2018а, вып. 3, стр. 28–33.

87. Санин А.В., Ожерельков С.В., Наровлянский А.Н. и др. Противовирусная активность гамапрена в отношении вируса диареи крупного рогатого скота в экспериментах in vitro // Российский ветеринарный журнал. СХЖ, 2018б, вып. 2, стр. 12–16.

88. Санин А.В., Анников В.В., Анникова Л.В. и др. Клиническая эффективность Гамапрена® при панлейкопении кошек: контролируемое исследование, Ветеринария и кормление, 2018c, вып. 5, стр. 45–48.

89. Санин А.В., Наровлянский А.Н., Пронин А.В. и др. Клиническая эффективность Гамапрена® при калицивирусной инфекции кошек // Ветеринария. 5, стр. 25–31.

90. Санин А.В., Наровлянский А.Н., Пронин А.В. и др. Влияние гамапрена на продукцию регуляторных цитокинов у мышей после экспериментальной флавивирусной инфекции // Российский ветеринарный журнал. МДЖ, 2018э, № 1, с. 4, стр. 18–24.

91. Санин А.В., Наровлянский А.Н., Пронин А.В. и др. Лечебно-профилактическая эффективность Гамапрена при экспериментальном заражении мышей, вызванном вирусом простого герпеса 1 типа, Ветеринария Кубани, 2018ф, № 1, с. 3, стр. 15–19.

92. Савойская С.Л., Клицунова Н.В., Наровлянский А.Н. и др. Эффективность препарата Гамапрен при получении аденовирусов и парагриппа собак // Ветврач. 11, стр. 15–16.

93. Савойская С.Л. и Кожевникова Т.Н. Эффективность фоспренила при лечении парвовирусного энтерита собак, Ветеринария и кормление, 2019, вып. 7, стр. 22–24.

94. Савойская С.Л., Огородникова И.В., Кожевникова Т.Н. Борьба с хронической коронавирусной инфекцией у кошек с применением Фоспренила и Гамавита // Ветеринария и кормление. 3, стр. 46–48.

95. Шульц, Р., Продолжительность иммунитета к собачьим и кошачьим вакцинам: обзор, Vet. микробиол., 2006, том. 117, нет. 1, стр. 75–79. [PubMed]

96. Седов А.М., Наровлянский А.Н., Пронин А.В. и др. Механизм противовирусного действия и оценка эффективности нового препарата Фортепрен® в комплексной терапии хронической рецидивирующей герпесвирусной инфекции генитальной локализации , Ж. микробиол., эпидемиол. Иммунобиол., 2018, вып. 5, стр. 81–87.

97. Seo, D.J., Jeon, S.B., Oh, H.L., et al., Сравнение противовирусной активности флавоноидов против мышиного норовируса и кошачьего калицивируса, Food Control, 2016, vol. 60, нет. 6, стр. 25–30.

98. Сергеев А.Н., Белкина Т.В., Глотов А.Г. и др. Противовирусная активность различных препаратов in vitro в отношении вирусов инфекционного ринотрахеита и диареи крупного рогатого скота. Вопр. Вирусол., 2004, вып. 5, стр. 43–46. [PubMed]

99. Шуляк Б.Ф. Вирусные инфекции собак . М.: Олита, 2004. https://fermer.ru/forum/veterinariya-krs/164503.

100. Simons K., Ehehalt R. Холестерин, липидные рафты и болезни. Дж. Клин. Вкладывать деньги. 2002; 110: 597–603. doi: 10.1172/JCI0216390. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

101. Стюарт А.Д., Браун Т.К. Проникновение кошачьего калицивируса зависит от опосредованного клатрином эндоцитоза и закисления эндосом. Дж. Вирол. 2006; 80:7500–7509. doi: 10.1128/ОВИ.02452-05. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

102. Takano T., Katada Y., Moritoh S. Анализ механизма антителозависимого усиления вирусной инфекции инфекционного перитонита кошек: аминопептидаза N не важен и необходим процесс подкисления эндосомы. Дж. Генерал Вирол. 2008; 89: 1025–1029. doi: 10.1099/vir.0.83558-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

103. Tani K., Ogushi F., Huang L. CD13/аминопептидаза N, новый хемоаттрактант для Т-лимфоцитов при легочном саркоидозе. Являюсь. Дж. Дыхание. крит. Уход Мед. 2000; 161:1636–1642. doi: 10.1164/ajrccm.161.5.9

8. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

104. Тюрина О. Л., Деева А. В., Мехдиханов Г. Г. и др. Повышение сохранности и продуктивности бройлеров с помощью фоспренила // Ветеринария . 2006. № . 12, стр. 13–14.

105. Усикова Т.И. Питомниковый кашлевой синдром у собак, Рачихина С.С. // Экология Южной Сибири и сопредельных территорий. Мат. XXIII Междунар. науч. школа-конф. студентов и молодых ученых (Экология Южной Сибири и сопредельных территорий. Материалы XXIII Междунар. науч. школы-конференции студентов и молодых ученых), Под ред. В.В. Анюшина, 2019, стр. 39–41.

106. Узал Ф.А., Платтнер Б.Л., Хостеттер Дж.М. Джубб . 2016. [Google Scholar]

107. Васильев А.Н., Ожерельков С.В., Козлов В.В. Противовирусная и иммуномодулирующая активность полипренилфосфатов при вирусных инфекциях. Антибиот. Химиотер. 2008; 53:3–8. [PubMed] [Google Scholar]

108. Кинг А.М.К., Адамс М.Дж., Карстенс Э.Б. и Лефковиц Э.Дж., редакторы. Таксономия вирусов: классификация и номенклатура вирусов. Девятый отчет Международного комитета по таксономии вирусов . Амстердам: Elsevier, Academic Press; 2012. [Google Scholar]

109. Зайцева М.Л., Деева А.В., Андреева М.В. Опыт применения Фоспренила при лечении инфекционных болезней лошадей, Мат. конф. по науч.-практ. работа МГАВМиБ им. 2006. [Google Scholar]

110. Жавнис С.Е., Переслегина И.О., Санина А.А. Комплексное лечение коронавирусного гастроэнтерита у котят: клинический случай // Изв. Оренбургского гос. Аграр. ун-т, 2019, нет. 5 (79), стр. 205–207.

Россельхознадзор: информация о дефиците ветеринарных препаратов недостоверна

AK&M 13 сентября 2022 16:44

Представленная в прессе информация о нехватке ветеринарных препаратов неверна. По народным названиям препаратов для ветеринарного применения существуют аналоги отечественного производства. Об этом заявил Россельхознадзор.

В ходе встреч Россельхознадзора с представителями крупных иностранных компаний, занимающихся производством и поставками лекарственных средств для ветеринарии на территорию России, они заявили о готовности продолжить поставки всего перечня лекарственных средств, имеющихся в портфелях экспортеров.

В целях оперативного решения вопросов, связанных с оборотом лекарственных средств для ветеринарного применения на территории Российской Федерации, Министерством сельского хозяйства Российской Федерации в марте 2022 года сформирован оперативный штаб по развитию рынка лекарственных средств для ветеринарного применения, а также создали рабочую группу по ситуации на рынке лекарственных средств для ветеринарного применения.

По данным ФГИС «Ветис», объем ввоза на территорию РФ лекарственных средств для ветеринарного применения с начала 2022 года не только не упал, но имеет тенденцию к увеличению. За 8 месяцев 2022 года в Российскую Федерацию было ввезено на 16% больше антибиотиков, чем за аналогичный период 2021 года, и на 25% больше вакцин для ветеринарного применения.

Что касается отечественного производства лекарственных средств для ветеринарии, то здесь наблюдается тенденция к увеличению производства. В период с 1 января по 1 июля произведено 107 млн ​​упаковок ветеринарных препаратов, в том числе 7,2 млрд доз вакцин. Для сравнения, за аналогичный период 2021 года было произведено 81 млн упаковок, то есть производство выросло на 30%.

В 2022 году Россельхознадзор не вводил никаких ограничений на ввоз в РФ и оборот иностранных лекарственных средств на своей территории, поэтому любой дефицит иностранных препаратов на российском рынке искусственно создается иностранными производителями.

Стоит отметить, что ситуация на рынке препаратов для общей анестезии животных стабилизировалась. Так, в июле 2022 года в Россию было ввезено более 30 тысяч упаковок препарата «Телазол», в августе – почти 5 тысяч упаковок препарата «Золетил».

Кроме того, в апреле 2022 года зарегистрирован сильнодействующий обезболивающий препарат российского производства «Трамвет®», который можно применять в качестве обезболивающего, в том числе при хирургических операциях. Препарат в количестве более 58 тысяч упаковок уже вышел на рынок и доступен для применения.

В настоящее время поставки импортных ветеринарных препаратов, в том числе производства США и стран Европы, корректируются, снижение поставок отмечено только в марте-апреле 2022 года.

Ежегодно Минсельхоз России закупает и поставляет в субъекты Российской Федерации около 75 наименований лекарственных средств для ветеринарного применения и диагностических средств для диагностических исследований и профилактической вакцинации животных против инфекционных болезней животных, в том числе вакцину Рабикан для профилактики бешенства собак и кошек.

Вакцинация животных против особо опасных болезней — ящура, сибирской язвы, бруцеллеза, бешенства, классической чумы свиней, лептоспироза — проводимая, в том числе за счет средств федерального бюджета, осуществляется исключительно иммунобиологическими препаратами отечественного производства.

Для сезонной вакцинации собак и кошек в России имеется широкий ассортимент вакцин отечественного производства.