От лишая уколы коту: Уколы от лишая для кошек

Ветеринарная дерматология в Минске. Лечение лишая, клеща, блох у котов и собак

Одной из наиболее частых причин обращения в ветеринарную клинику являются дерматологические (кожные) заболевания у кошки или собаки: лишай, блохи, клещ (ушной, подкожный), отит. В случае обнаружения пораженного участка на теле домашнего животного необходимо незамедлительно обратиться к ветеринарному дерматологу и ни в коем случае не заниматься самолечением!

Почему нельзя предпринимать самостоятельные попытки вылечить питомца?

Во-первых, по незнанию Вы можете элементарно навредить и усугубить проблему.

Во-вторых, наружные обработки, произведенные самостоятельно, могут затем затруднить сбор анализов и постановку правильного диагноза. Кроме этого, некоторые кожные болезни могут передаваться от собак и кошек людям (например, стригущий лишай), что создает дополнительный риск при попытках самостоятельного лечения.

К счастью, в отличие от многих других специализированных областей ветеринарии, в дерматологии не так часто встречаются опасные для жизни животного болезни. Однако, некоторые из них, к сожалению, нельзя вылечить раз и навсегда, но при помощи поддерживающей терапии можно облегчить жизнь Вам и Вашему питомцу.

В нашей ветеринарной клинике проводятся следующие диагностические исследования для выявления дерматологических заболеваний у животного:

• люминесцентная диагностика (в том числе на предмет наличия у животного стригущего лишая),
• отоскопическая исследование,
• трихоскопия (трихограмма),
• соскобы (поверхностные и глубокие),
• исследование содержимого НСП,
• цитологическое исследование,
• ТИБ (тонкоигольная биопсия),
• скотч-тест.

В каких случаях нужно привезти питомца на осмотр к ветеринарному дерматологу?

 

Показаниями к записи кошки или собаки на прием к дерматологу являются следующие симптомы:

• зуд,
• отиты,
• лишай,
• покраснения, язвы, раны, сыпь, расчёсы на коже,
• выпадение шерсти, облысение,
• выделения из наружных слуховых проходов,
• гиперпигментация кожи и изменение цвета шерсти,
• неприятный запах от питомца,
• заражение эктопаразитами (блохи, клещи, вши и т. д),
• аллергические реакции (пищевая непереносимость, атопический дерматит и т. д.),
• себорея «перхоть»,
• уплотнения, новообразования на коже.

Сейчас в интернете можно найти массу статей на темы «как вылечить ушного клеща у кота в домашних условиях», «как избавить кота от блох домашними средствами», «самостоятельное лечение стригущего лишая у собаки», «как вылечить лишай у кота» и т.п. Мы призываем Вас ни в коем случае не заниматься самостоятельным лечением любых кожных заболеваний Ваших домашних животных без предварительной консультации и осмотра у ветеринарного дерматолога. При возникновении любой из перечисленных выше проблем с кожей или шерстью у Вашего питомца необходимо сразу записаться на прием к ветеринару.

Сколько стоит осмотр кошки или собаки ветеринарным дерматологом?

Информацию по стоимости всех ветеринарных услуг клиники «ВэллВет», в том числе и по осмотру дерматолога, Вы можете найти в разделе Цены или уточнить у администратора по телефону.

Что нужно делать для профилактики кожных заболеваний у кошки или собаки?

Для профилактики некоторых дерматологических заболеваний следует:

• проводить обработку против эктопаразитов (блох, клещей, вшей) качественными инсекто-акарицидными препаратами;
• соблюдать гигиену и правильный рацион питания;
• ежегодно вакцинировать животное.

Мы рекомендуем перед началом профилактики проконсультироваться с Вашим ветеринаром.

Также настоятельно рекомендуем, если у Вашей собаки или кошки лишай, аллергия, отит, ушной клещ либо другое заболевание, не покупать самостоятельно или по рекомендации работника зоомагазина лекарства и препараты и пытаться лечить ими Вашего питомца без назначения ветеринара.

Прививки для домашних животных: вакцинация кошек и собак

29.08.2018

Прививки для домашних животных: вакцинация кошек и собак

Владельцы котов и собак часто сомневаются в целесообразности вакцинации и ее безопасности для питомцев. Но даже те питомцы, которые не выходят из квартиры, имеют риск заразиться: опасную инфекцию легко можно принести домой на уличной обуви. Поэтому своевременно сделать прививку коту от наиболее опасных болезней — единственный способ сохранить здоровье животному.

Вакцинация домашних животных: общие принципы и сроки

Прививки котам

Вакцинация, выполненная по всем правилам, несет минимальный вред здоровью кота. Тех котят, которые родились от домашней вакцинированной кошки, можно начинать прививать в возрасте от 12 недель. Если же мать не привита или вовсе неизвестна, лучше начать уже с 8 недель.

Нежелательно делать прививки, когда у котенка меняются зубы. Нельзя вакцинировать беременных кошек живыми вакцинами: это навредит котятам. 

За 10 дней до прививки нужно провести профилактику глистов. В день процедуры пушистого пациента должен осмотреть врач: прививать больных животных недопустимо. 

Прививки коту должен колоть специалист. После нее необходимо наблюдение, чтобы вовремя обратиться к врачу при появлении тревожных симптомов. 

Плановые хирургические вмешательства нужно отложить как минимум на 3 недели. Также в этот период желательно оградить зверя от стрессов: переездов, участия в выставках и так далее.

Обязательные прививки

Заболеваний, от которых кошек нужно прививать обязательно, не так уже много. 

Бешенство чрезвычайно опасно и имеет 100% летальный исход как у животных, так и у людей. Прививку коту от бешенства делают в возрасте 12-13 недель, а ревакцинацию проводят ежегодно в течение всей жизни. 

Обязательна профилактика и таких заболеваний, как панлейкопения, кальцивирусная инфекция, герпевирусный ринотрахеит и хламидиоз. Прививки делают в 8-9 недель, повторную вакцинацию — через 3-4 недели. Больше она не требуется, хотя есть отдельные случаи, когда проводится по рекомендации врача. 

Следует также иметь в виду, что кота, непривитого от бешенства и хламидиоза, запрещено перевозить в общественном транспорте и вывозить за границу. Это связано с тем, что эти инфекции опасны для человека, и лохматый компаньон может стать источником заражения.

Обычно кошкам делают прививки от инфекционных заболеваний, то есть бешенства, ринотрахеита, лишая, кальцивируса. Первую прививку делают в возрасте 45 суток и далее на протяжении жизни ежегодно. Вторая прививка повторная, это называется ревакцинацией. Обычно ее делают спустя 3-4 недели. 

• Вирусы можно принести в дом на обуви и одежде, поэтому даже если у вас кошка полностью домашняя, необходимость в прививках не отпадает. 

• Если же ваш питомец дворовой, ему необходима вакцинация от лейкоза. 

• Кошкам, которые живут в больших популяциях, то есть в приютах и питомниках, необходимо делать прививки от хламидиоза.

Вакцинация собак

У собак или даже щенков зачастую есть риск заболеть парвирозом, гепатитом, бешенством, чумкой. От этих болезней следует обезопасить питомца при помощи прививки.

Во избежание всевозможных заболеваний необходимо прививать собак в раннем возрасте. Чтобы все процедуры оказались эффективными, соблюдайте следующий график вакцинации:

• 1,5-2 месяца — прививка от бешенства, также от чумы и гепатита;
• 2,5 месяца — обязательная ревакцинация;
• 7 месяцев — вакцинация против чумы;
• 8  месяцев — прививка от бешенства.

Существует несколько простых правил, которые следует соблюдать владельцам собаки после того, как ей сделали вакцинацию.

• Непосредственно после процедуры нельзя купать щенка.
• Стоит избегать переохлаждения питомца в течение 3-4 дней после прививки. 
• Выходить на прогулку разрешается лишь через 2-3 недели после вакцинации, так как по истечении этого времени организм щенка готов противостоять инфекциям.

Следуя этим простым правилам, вы не позволите своему питомцу заболеть. Что касается интервала между прививками, то ежегодная вакцинация должна проводиться за 10 дней до окончания действия предыдущей, иначе иммунитет собаки может серьезно ослабеть.

• Если собака живет в питомнике или приюте, требуется вакцинация от короновирусного энтерита.

Вакцинировать как собак, так и кошек необходимо каждый год на протяжении всей жизни питомца. Лучше, если подбор препарата и собственно процедуру проведет ветеринар, так как в этом случае прививка точно не навредит и принесет результат.

Простой способ лечения кошек от лишая

Лишай, это не самое страшное заболевание, которым болеют кошки, поэтому если у вас есть возможность и желание вылечить животное, то делайте это. Тем более, что и лечение у вас не займет много времени и денег.

Для начала я расскажу немного о самом заболевании, чтобы вы сами могли определить его и начать лечение.

Лишай это заразное заболевание, но не смертельное. Возбудителем его являются микроскопические грибки. Споры грибка попадают под кожу и поражают луковицы шерстинок, и когда животное чешется, то образуются ранки, в которых эти самые споры прекрасно себя чувствуют. Потом кошка начинает зализывать расчесанные ранки и споры переносятся языком на другие места тела.

Лечения кошек от лишая

Лишай бывает разный. Самыми распространенными считаются четыре вида лишая:

• Стригущий
• Розовый
• Красный плоский
• Отрубевидный

Причиной болезни может быть:

• Плохое питание
• Иммунная недостаточность
• Генетическая предрасположенность (особенно у персов)
• Злокачественные процессы в организме животного
• Заражение от других животных

Переносчиками болезни чаще бывают грызуны (мыши, крысы) и бездомные животные (не обязательно кошки). Заболевание может проявиться даже через три месяца после заражения.

Сначала поражается кожа головы, лап, хвоста, а потом уже заболевание переходит на спину, живот и бока. Малейшее лысое пятнышко на голове кошки надо сразу же обработать, чтобы заболевание не распространилось дальше. А распространяется эта зараза довольно-таки быстро.

В больших городах хорошие хозяева тут же могут отвезти животное в лечебницу, где будет сделан анализ и прописано лечение. Но в маленьких городах и поселках ветеринары чаще всего либо не могут провести анализ ввиду того, что у них нет необходимого оборудования, либо просто не утруждают себя и прописывают лекарство, которое помогает от многих болезней, в том числе и от лишая.

В хороших ветеринарных клиниках должны быть специальные лампы Вуда, с помощью которых видны колонии этих грибков. Под светом такой лампы споры светятся изумрудно-зеленым цветом.

Хуже когда хозяева не хотят лечить свое животное и даже выгоняют его из дома. Мало животному физических страданий, так его еще и изгоняют на холод и голод. А потом удивляются, откуда пошла зараза по всему городу. И в первую очередь винят животных, а не таких вот нерадивых хозяев.

Все кошки когда-то были домашними, и если теперь они скитаются больные, холодные и голодные по помойкам и подвалам, то виноваты в этом только мы – люди. И как нас после этого людьми называть?

Если вовремя начать лечить кошку, то никто и не пострадает.

Начинается любой лишай с маленького лысого бледно-розового пятнышка на голове животного. Обычно такое пятнышко круглое. Красный плоский лишай отличается еще и небольшими пузырьками, которые наполнены жидкостью.

Кошка все время чешется, но такой же зуд могут вызывать и блохи, и даже аллергия на новый корм. Поэтому делать заключения только на основании лысого пятнышка и расчесов нельзя. Можно только подстраховаться, а как я напишу ниже.

Впадать в панику от того, что у вашей кошки похожие симптомы, тоже не следует. Если вы вовремя выявили пусть даже и заразное заболевание, уже можно начать лечение и избежать заражения самому.

Главное, не забывайте о том, что после того, как вы начали лечение своего питомца необходимо обязательно обработать и простерилизовать все места, где оно находилось. Подстилки, постель и все чего могла касаться кошка необходимо выстирать. Полы в доме вымыть с обеззараживающими дезинфицирующими средствами и обязательно безвредными для животных. Благо сейчас таких средств в продаже много.

Розовый лишай отличается тем, что проходит сам по себе. Его даже не надо лечить. Через полтора месяца от начала болезни все пройдет и зарастет новой шерстью. Главное не купать животное в этот период .

Отрубевидный лишай. Обычно голый участок кожи не вызывает зуда, и понять что это лишай можно только тогда, когда очаг поражения увеличивается. Отрубевидный лишай чаще появляется на спине и лапах животного.

Красный плоский лишай отличается мокнущими пузырьками. Эти места сильно чешутся. Кошка начинает расчесывать их и жидкость с этих пузырьков растекается. Шерсть вокруг становиться липкой и засыхает.

Стригущий лишай передается от больного животного здоровому. Человек тоже может заразить кошку. Споры грибов любого лишая можно принести домой на обуви и одежде. Так что не думайте, что если ваша кошка не выходит на улицу, то вы всегда будете здоровы.

Возбудители этого заболевания обладают высокой устойчивостью к внешней среде. Они могут несколько лет ждать подходящий объект.

Признаки заболевания

• Появление облысевших участков кожи на голове, ушах, хвосте, спине и боках
• Странные высыпания на голом теле
• Сыпь или жирные корочки из кожных чешуек (можно спутать с себореей)
• Розовые облысевшие очаги
• Шерсть в некоторых местах, как будто коротко подстрижена
• Кошка угнетена, отказывается от еды и не играет

Простой способ лечения кошек от лишая

В моей практике самым безопасным и лучшим лечением является Серная мазь. О свойствах этой мази можете почитать в статье о чесотке. Мазь продается в любой человеческой аптеке и стоит копейки.

Достаточно смазывать очаги болезни раз в три дня и никакая зараза не устоит перед ее действием. В отличие от уколов мазь не бьет по печени животного и ничего кроме легкого ожога на коже не будет (и то не у всех, а только у котят). Кошки могут даже слизать ее и ничего с ними не произойдет.

Серная мазь должна быть в вашей аптечке всегда.

В нашем городе ветеринары всем прописывают дорогие и не всегда безопасные средства, и диагноз обычно ставиться на глазок. (Так же и людей лечат, а там будь, что будет.)

Так же хорошо применять мазь ЯМ БК. Это противогрибковый препарат, которым можно мазать животное даже при экземе.

Есть еще хорошо зарекомендовавший себя препарат Амидель-гель. Мы постоянно им пользуемся, особенно при ушном клеще.

Все эти мази безболезненны, что не маловажно при лечении животных.

Помните, в сказке Носова про Незнайку, был такой доктор Касторкин, который всех лечил только касторкой? Вот и я буквально все кожные болезни лечу только серной мазью. Главное, результат!

Если животное не лечить, то оно может умереть от истощения в страшных муках. Не доводите его до такого состояния.

Лечите своих любимцев и будьте здоровы!

Чем лечить лишай у кошек? Народные и современные способы

Чем лечить лишай у кошек – вопрос, который задают часто те, кто владеет этими созданиями. Какие есть рекомендации по борьбе с этой болезнью?

Вообще, данная тема обширная. Владельцам кошечек важно знать не только о том, как бороться с этим недугом животных, но и также понимать, откуда он берется, как его распознать и есть ли вероятность того, что болезнь передастся человеку. Обо всем этом вы сможете узнать, прочитав статью до конца.

Симптомы лишая у кошек

Для своевременного и быстрого лечения необходимо знать симптомы лишая у кошек. Именно о них сейчас пойдет речь в этом подзаголовке.

Лишай – это болезнь, вызванная грибковой инфекцией. Обычно данный недуг поражает кошечек с длинной шерстью, еще молодых особей и тех, кто когда-то болел кожным заболеванием или же имел травмы. Есть животные, которые имеют иммунитет к этому заболеванию, а есть те, кто являются переносчиками болезней, но сами при этом не имеют видимых признаков лишая. Те же, кто заразился этой грибковой инфекцией, могут иметь лишь незначительные повреждения или же могут страдать очень сильно. Какие симптомы сопровождают лишай? Основные – это:

• округлые залысины;
• кожа воспалилась или присутствует чешуйчатость;
• может появиться, хотя и не всегда, зуд;
• иногда выскакивают прыщи, появляется перхоть.(Фото http://крысик.рф/wp-content/uploads/2013/04/Lishaj-u-koshek.jpg).

Однако в большинстве случаев симптомы лишая могут иметь и другие кожные заболевания, а значит не всегда внешний вид – это показатель того, что кошечка была поражена именно этой инфекцией. Поэтому для подтверждения или опровержения необходимо провести диагностическое исследование крови и мочи. Также нужно исследовать шерсть под микроскопом. Обратите внимание на то, что лишай – опасная болезнь, и от нее не так легко избавиться, как от вшей. Кстати, если вам интересно, то можете узнать, откуда берутся вши, прочитав эту статью.

Лишай, передающийся от кошек

Кто первый раз столкнулся с этой болезнью, часто спрашивают у других: есть ли лишай, передающийся от кошек человеку? Как оказалось, да!

Стригущий лишай признан опасной инфекционной болезнью, которая передается не только от животного к животному, но и к человеку. У зараженного грибок начинает поражать волосистую часть головы, а также его ногти и само тело. Как можно подхватить этот неприятный недуг? Все довольно просто – при прямом контакте с инфицированной кошкой: это поглаживание животного, поцелуйчики в носик и так далее. Бывали случаи, когда дети заражались лишаем, играя в песочнице. Поэтому всегда мойте руки после контакта с кошками.

Народные средства лечения лишая у кошек

Народные средства лечения лишая у кошек нужно знать всем, кто владеет этими домашними животными. Вполне возможно, что эти советы пригодятся.

Вначале стоит отметить, что лечить лишай нужно не только народными средствами, но и фармацевтическими. Об этом будет упомянуто чуть ниже. А пока давайте узнаем, какие действия нужно предпринять в первую очередь, если оказалось, что ваше любимое животное заболело этой противной болезнью.

Для начала – полная изоляция больной кошки. Если есть возможность, то унесите ее в отдельную комнату, в которую вы будете заходить крайне редко. В том же случае, когда не удается выделить кошке отдельную квадратуру в квартире, следите за тем, чтобы она не садилась на диваны, кресла и ни в коем случае не ходила и не лежала на кровати.

Во время карантина нужно состричь с животного всю шерсть. На ее коже будут появляться и сохнуть корочки, которые необходимо размягчать. Для этого можно использовать теплый мыльный раствор. Больные пятнышки надо смазывать йодом или зеленкой. Кто-то может использовать серную мазь. Также для этих целей подходят противогрибковые мази, предназначенные для людей.

Не забывайте, что важно дезинфицировать помещение, используя для этой цели 0,5% раствор натрия гипохлорита, разбавленного с водой (1:20). Сюда же включается сжигание того, что снимается с кожи во время ее обработки. Во время обработки животного, надевайте перчатки, а после протирайте руки специальным дезинфицирующим средством.

Лечение лишая у кошек

Хотя народные средства лечения лишая у кошек эффективны, для лучшего и быстрого успеха необходимо использовать фармацевтические препараты.

Сразу же стоит упомянуть о том, что существуют вакцины от лишая. И хотя они не исключают вероятность заражения, все же вакцинированное животное переносит эту инфекцию гораздо легче. При обнаружении симптомов, описанных выше, сразу же покажите кошечку ветеринару. Его квалифицированная консультация поможет правильно лечить ваше домашнее животное.

Часто при лишае назначают Гризеофульвин – препарат, который получает кошка вместе с едой. Однако в этом случае необходимо регулярно делать анализ крови, чтобы исключить возможный побочный эффект. Также назначают Кетоконазол и Итраконазол. В любом случае, точное лечение сможет назначить только ветеринар.

А вот более подробно и наглядно узнать о том, как лечить лишай у человека, вы можете из этого видео:

Эффективные способы лечения стригущего лишая у кошки: народные средства, вакцинация

Стригущий лишай у кошки или котенка считается одной из самых распространённых патологий. Ранее это заболевание практически не поддавалось лечению, больных животных ветеринары усыпляли. С развитием современных технологий разработали специальные препараты, название которых можно увидеть в этой статье. Они помогают избавиться от грибковой патологии в короткие сроки.

Общие сведения о заболевании

Лишай у сфинкса и других пород кошек — это грибковая патология, которая проявляется в виде образования зудящих язвочек на коже домашнего питомца. Недуг затрагивает также шерсть и ногти.

Лишай у кошек — головная боль многих заводчиков

Главными причинами, вызывающими лишай, считаются аллергические реакции и сниженный иммунитет. Однако болезнь может развиться на фоне неправильного ухода за животными, из-за вирусных инфекций или контакта с носителем грибка.

К сведению! Заражение происходит чаще при выгулах кошек по улицам. Инкубационный период патологии от двух дней до четырех месяцев. На лечение уходит до трех недель. В запущенных случаях может потребоваться год для полного восстановления здоровья питомца.

Симптомы заболевания

Стригущий лишай проявляется следующими признаками:

• обильное выпадение шерсти;
• сухость и шелушение кожного покрова;
• припухлость на коже, отечность;
• появление пигментации на туловище;
• сильный зуд.

По мере развития заболевания меняется также настроение кошек. Они становятся медлительными и тревожными, начинают часто облизывать шерсть, царапать проблемные места.

Важно! Симптоматика проявляется практически сразу после поражения. В отдельных случаях грибок может развиваться без отчетливых негативных признаков.

Мокнущий лишай (экзема)

Для экземы характерны красные пятна и сильный зуд. По мере прогрессирования болезни у котят появляется обильная пигментация, которая сопровождается повышенной температурой на проблемном участке. Через время сыпь превращается в небольшие пузырьки, которые лопаются, мокнут и покрываются корочками. Они доставляют сильный зуд, дискомфорт и способствуют инфицированию животного бактериальными заболеваниями. Экзема может сопровождаться лихорадкой, недомоганием и сонливостью.

Отрубевидный лишай (разноцветный)

Патология представлена в виде бледного пятна небольшого размера, которое появляется на туловище животного на ранних этапах развития. По мере прогрессирования заболевания пятно начинает разрастаться и давать негативную симптоматику: небольшой зуд, шелушение кожного покрова. Кожа на месте поражения может быть как гладкой, так и чешуйчатой. Отрубевидный лишай практически не отображается на общем состоянии кошки, он может исчезнуть без медикаментозного лечения и появиться вновь.

Отрубевидный лишай у котенка — самый безобидный из существующих видов недуга

Розовый лишай

Заболевание, лишенной выраженной симптоматики, проявляется в виде образования множества розовых пятен на туловище питомца, которые по внешнему виду напоминают аллергическую сыпь. По мере развития патологии пигментированные образования увеличиваются в размере и начинают чесаться. Хотя у некоторых кошек лишай протекает бессимптомно.

Обратите внимание! Розовый лишай опасен тем, что при несвоевременном лечении он может перерасти в сепсис или трихофитию. В таких случаях наблюдаются симптомы общей интоксикации организма, увеличение лимфатических узлов, недомогание и потеря аппетита.

Как отличить лишай от дерматита у кошки

Как определить, лишай у кошки или нет — вопрос, волнующий всех хозяев питомцев. Ведь патологию часто путают с дерматитом. Обе болезни можно отличить друг от друга, если учитывать следующие факторы:

• дерматит чаще всего образуется на коже головы, лапок или хвоста. Лишай же поражает по большей части туловище котов;
• аллергический дерматит проявляется в виде бляшек красного оттенка, не имеющих четких границ. Лишай сопровождается образованием четко очерченных пятен на коже, которые имеют желтоватую середину;
• дерматит сопровождается сильным зудом, который мешает кошкам вести привычной образ жизни. Некоторые виды лишая протекают бессимптомно и не доставляют беспокойства животному;
• дерматит может привести к необратимым последствиям и развитию астмы. Лишай исчезает самостоятельно через несколько недель и практически не оставляет осложнений.

Аллергический дерматит — это более сложное и опасное заболевание, приводящее к негативным последствиям.

Диагностика заболевания

При обнаружении неприятных симптомов у домашнего питомца необходимо в срочном порядке посетить врача для исключения серьезных заболеваний. Ветеринар должен осмотреть кошку и назначить следующие диагностические процедуры:

• соскоб проблемного участка. Более достоверный способ диагностики, он дает точный результат в тот же день после забора материала;
• определение возбудителя в питательной среде. Самый точный метод исследования. Для этого образцы пораженной кожи помещают в специальный раствор, который помогает изучить микрофлору патологии, а также степень ее тяжести.

Чтобы поставить точный диагноз, врач может в качестве дополнения взять анализ крови. По итогам обследования ветеринар назначает лечение.

Обследование очага поражения при помощи лампы Вуда

Осмотр под флуоресцентной лампой проводят практически при всех кожных патологиях у животных.

Диагностика патологии при помощи лампы

Она подсвечивает пораженные фрагменты кожи зеленым цветом, помогая врачу поставить точный диагноз. Однако этот метод исследования не всегда является точным, потому что некоторые виды грибковых заболеваний свечения не дают.

Стригущий лишай у кошек: лечение медикаментами

Ветеринар назначает терапию после изучения степени тяжести конкретного случая. Лечение может заключаться в приеме лекарственных препаратов, использовании специальных шампуней и вакцинации.

Оральные препараты — таблетки, капсулы

Препараты в таблетированной форме назначают в запущенных случаях заболевания. Подобные средства вызывают массу побочных эффектов, поэтому ветеринары не рекомендуют доводить котов до подобного состояния.

Популярные средства:

• интраконазол. Средство против грибка, предотвращающее симптомы лишая у животных. Препарат применяют в течение двух недель, затем делают перерывы;
• кетоконазол. Сильнодействующее лекарство, которое успешно снимает симптомы поражения грибком, но при этом негативно действует на работу печени. Поэтому курс лечения кетоконазолом не должен превышать более недели;
• флуконазол. Препарат применяют в течение 1-3 недель, он считается более безопасным для котов.

Важно! Во время применения таблетированных продуктов стоит с точностью соблюдать указанною в инструкции дозировку, чтобы не привести к развитию осложнений.

Средства местного применения

Лечить болезнь мазями и кремами для местного применения можно на начальном этапе развития болезни. Популярные мази и кремы от лишая для котов:

• фунгин. В состав мази входит экстракт прополиса, который успешно борется с симптомами грибкового заболевания. Фунгин в короткие сроки заживляет образовавшиеся раны, убирает зуд и шелушение;
• клотримазол. Мазь для местного применения, использующаяся для устранения симптоматики отрубевидного лишая. Препарат обладает гипоаллергенным составом, из-за чего используется в течение 2-4 недель;
• санодерм. Противогрибковое средство, которое блокирует воспалительный процесс, снимает раздражение и пигментацию кожного покрова.

Кремы для местного применения используют в течение 1-5 недель в зависимости от типа патологии.

Санодерм для лечения лишая — самая ходовая мазь среди заводчиков

Шампуни с противогрибковым действием

Специальные кошачьи шампуни помогают устранить болезнь без вреда для организма кошки. Болезнь лечится следующими средствами:

• низорал. Распространенный шампунь для лечения грибка у домашних животных. Продукт выпускают также в виде крема. Низорал используют во время купания кошки три раза в неделю;
• себозол. Бюджетный шампунь для лечения стригущего лишая. Этот продукт используют в комплексе с мазями местного применения. Без них он желаемого результата не даст.

Обратите внимание! Шампуни считаются безопасными средствами, но на поздних стадиях болезни их применение без дополнительной терапии окажется малоэффективным.

Уколы от лишая кошкам

Вакцина от лишая для кошек необходима при более запущенных стадиях заболевания. Для уколов используют такие продукты, как вакдерм, поливак ТМ, микродерм. Эти средства обладают гипоаллергенным составом, который не вызывает осложнения и побочные реакции. Чтобы избежать повторного поражения и побочной реакции, необходимо покупать прививки от стригущего лишая для кошек. Поставить укол могут в ветклинике, либо прививку можно сделать коту дома самостоятельно.

Народные методы

Если пигментация на теле кошки только начала появляться и не успела распространиться, можно воспользоваться народными способами лечения болезни.

Солидол от лишая у кошек

Солидол считается одним из самых эффективных домашних средств для лечения патологии. Однако продукт обладает неприятным запахом и может вызвать развитие аллергии. Поэтому использовать его нужно с осторожностью.

Солидол наносят на предварительно промытые пораженные участки точечным методом и оставляют на несколько часов. Лучше всего проводить процедуру на ночь, а утром убирать остатки средства при помощи влажной салфетки.

Можно ли вылечить лишай йодом

Йод допустимо применять при развитии кожной патологии на ранней ее стадии. Пошаговая инструкция:

1. Место поражения промыть, удалить с него волосы (стричь нужно только больной участок).
2. Нанести сеточкой йод.
3. Обновлять ее каждый день утром и вечером.

Курс лечения йодом не должен превышать более недели. Если препарат не дает продуктивного результата, нужно обращаться к врачу.

Йод можно заменить уксусом.

Обработка лишая йодом — дедовский метод, который работает только на начальной стадии заболевания

Цинковая мазь от лишая у кошек

Цинковая мазь также помогает блокировать воспалительный очаг на ранних стадиях патологии. Продукт применяют два раза в день, его наносят на очищенную кожу животного тонким слоем и удаляют через 3-4 ч. Курс лечения не должен превышать 10 дней. Как понять, что у кошки проходит лишай:

• пятна стали уменьшаться в размерах;
• питомец перестал чесаться;
• исчезли корочки на теле.

Важно! По мере выздоровления к животному возвращаются стабильный сон и аппетит. Узнать, сколько понадобится времени, можно у лечащего врача, который знаком с картиной заболевания.

Может ли кошка умереть от лишая

Может ли кот или котенок умереть от лишая — еще один вопрос, волнующий многих хозяев домашних питомцев. Если хозяин кошки не обратился вовремя к ветеринару, возрастает риск летального исхода у животного. Однако питомцы погибают не от самого лишая, а от последствий, которые могут появиться после него. Поэтому важно как можно раньше посетить врача и пройти комплексное обследование.

Могут ли заразиться другие животные

Некоторых людей волнует вопрос: может ли быть лишай у здорового домашнего кота, который находится в одной комнате с больным. Заболевание передается при прямых контактах с носителем инфекции, поэтому больная кошка может передать заболевание другим животным, как кошкам, так и собакам. Поэтому на время болезни рекомендуется ограничить контакты питомца со здоровыми домашними обитателями.

Обратите внимание! Лучше всего не выпускать ее на улицу, пока не наступит полное выздоровление..

Меры предосторожности для людей

Стригущий лишай также передается от больных питомцев к людям. Наиболее подвержены заражению имеющие проблемы в работе иммунной системы, а также маленькие дети в возрасте от 2 до 6 лет. Чтобы предотвратить возможность инфицирования, нужно ограничить контакты с животным, а лечение доверить человеку с сильным иммунитетом. Также для профилактики во время обработки пораженных участков рекомендуется использовать одноразовые перчатки и специальные маски.

Вакцинация от патологии обязательно должна проводиться в перчатках

Стригущий лишай — это серьезное грибковое заболевание, которое сопровождается неприятной симптоматикой. Недуг имеет несколько разновидностей, и некоторые из них приводят к серьезным последствиям. Чтобы избежать осложнений и передачи болезни здоровым членам семьи, нужно своевременно обращаться к врачу, проходить комплексное обследование и применять назначенные препараты. После терапии необходимо прививать питомцев с этих болезней.

Использование сыворотки взрослой кошки для коррекции сбоя пассивного переноса у котят

Задача: Оценить использование сыворотки взрослой кошки в качестве добавки к иммуноглобулину у котят с неэффективным пассивным переносом.

Дизайн: Рандомизированное контролируемое исследование.

Животные: 11 особей без патогенов и их 43 котенка.

Процедура: Котят отбирали от маток при рождении, до кормления грудью молозива, и случайным образом распределяли в 1 из 4 групп: лишенные молозива, получавшие молозиво, лишенные молозива и введение объединенной сыворотки взрослой кошки внутрибрюшинно, и лишенные молозива и введение объединенные взрослые сыворотки подкожно. Котят, которых кормили молозивом, возвращали королеве и позволяли нормально сосать грудь.Котят, лишенных молозива, изолировали от матки и кормили заменителем молока для котят в течение 2 дней, чтобы предотвратить всасывание IgG молозива. Всех котят, лишенных молозива, возвращали матке на 3-й день. Концентрации сывороточного IgG измеряли с помощью радиальной иммунодиффузии у котят при рождении и через 2 дня и 1, 2, 4, 6 и 8 недель после рождения.

Полученные результаты: При рождении ни у одного из котят не было обнаруживаемых сывороточных IgG.Оба i.p. и п. Введение сыворотки взрослых кошек привело к пиковым концентрациям IgG в сыворотке крови, эквивалентным таковым у котят, которые сосали нормально. Необработанные котята, лишенные молозива, не достигли сывороточных концентраций IgG, сравнимых с таковыми у котят в других группах, до 6-недельного возраста.

Выводы и клиническая значимость: Результаты показывают, что сыворотка взрослой кошки может использоваться в качестве добавки к иммуноглобулину у котят, лишенных молозива.Хотя минимальная концентрация IgG, необходимая для защиты котят от инфекции, неизвестна, достигнутые концентрации были сопоставимы с таковыми у котят, которые сосали нормально.

Побочные эффекты вакцины для кошек и собак и что вы должны знать

Все ветеринарные процедуры сопряжены с определенным риском, даже вакцинация домашних животных. В большинстве случаев польза от вакцинации вашей кошки или собаки стоит очень небольшого риска. В этом посте наши ветеринары Argyle обсуждают возможные побочные эффекты вакцин и то, что вам следует делать, если у вашего питомца они возникнут.

Следует ли мне вакцинировать моего питомца?

Прививки — важная часть защиты вашего питомца от серьезных и заразных болезней, которые могут угрожать долгосрочному здоровью и благополучию вашего пушистого компаньона. В большинстве ситуаций преимущества вакцинации вашей собаки или кошки значительно перевешивают риск возникновения у вашего питомца каких-либо побочных эффектов. Хотя время от времени у некоторых домашних животных действительно есть побочные эффекты.

У скольких домашних животных вакцины вызывают серьезные побочные эффекты?

Всегда есть риски, связанные с ветеринарными процедурами, включая вакцинацию.Однако риск того, что у вашего питомца возникнут серьезные побочные эффекты вакцины, очень мал. Хотя это может напугать владельцев домашних животных, чьи очаровательные животные-компаньоны действительно испытывают эффект.

По оценкам, 1-10 кошек из каждых 10 000 вакцинированных будут испытывать серьезные побочные эффекты вакцины, а у 13 из 10 000 собак будет реакция. Это означает, что из 10 000 кошек 9 990 — 9 999 проходят процесс вакцинации, а 9987 собак выходят без каких-либо серьезных проблем.

Какие побочные эффекты могут вызвать прививки у домашних животных?

Большинство побочных эффектов, которые собаки и кошки получают от вакцин, непродолжительны и обычно незначительны, что делает их гораздо менее опасными, чем болезни, от которых их защищают вакцины. Ниже мы перечислили некоторые из наиболее распространенных побочных эффектов, которые получают домашние животные после вакцинации:

Вялость и легкая лихорадка

• Вялость, небольшая температура и некоторый легкий дискомфорт — наиболее частые побочные эффекты, которые животные получают от вакцин.Это может характеризоваться тем, что ваш питомец ведет себя не так, как обычно. Это нормальная реакция на вакцинацию, и симптомы должны быть легкими и длиться всего один-два дня. Если через пару дней ваша собака или кошка не будут вести себя как они сами, обратитесь за советом к ветеринару.

Локальный отек

• Шишки и шишки являются обычными побочными эффектами как у кошек, так и у собак. Иногда в месте прокола кожи иглой образуется небольшая плотная шишка. Это нормальная реакция, однако владельцы домашних животных должны следить за областью, чтобы убедиться, что шишка не становится больше и не показывает признаков воспаления, просачивания или инфекции.Шишка не должна быть болезненной и должна постепенно исчезнуть примерно через неделю. Если опухоль показывает признаки инфекции или не исчезла по прошествии недели, обратитесь к ветеринару.

Симптомы, похожие на чихание и простуду

• В то время как большинство вакцин, рекомендуемых для собак и кошек, вводятся путем инъекции, некоторые вводятся в виде капель или спрея в глаза или нос животного. Побочные эффекты интраназальных вакцин очень похожи на простуду и включают такие симптомы, как насморк, кашель и чихание.Ваша кошка или собака должны избавиться от этих симптомов через день или два. Если вашему питомцу не станет лучше в течение нескольких дней или у него начнут проявляться более серьезные симптомы, обратитесь к ветеринару.

Какие серьезные побочные эффекты могут вызвать вакцины у моего питомца?

Большинство эффектов, связанных с прививками для щенков и котят, кратковременны и легки, однако в некоторых редких случаях могут возникнуть более серьезные реакции, требующие немедленной медицинской помощи.

Симптомы серьезной реакции обычно проявляются очень быстро после вакцинации, но могут проявиться в течение 48 часов.Признаки более серьезных побочных эффектов вакцинации собак и кошек включают отек лица, рвоту, крапивницу, зуд, диарею и затрудненное дыхание.

Анафилаксия — это самая тяжелая аллергическая реакция, которую домашние животные могут получить в результате вакцинации. Анафилаксия обычно возникает у собак и кошек очень скоро после вакцинации, но важно помнить, что анафилаксия может появиться в течение 48 часов после вакцинации.

Если у вашего питомца проявляются симптомы анафилаксии после прививки, немедленно обратитесь к ветеринару или позвоните в ближайшую ветеринарную клинику скорой помощи.

Как я могу предотвратить реакцию моего питомца на уколы?

Вакцины — важная часть защиты общего здоровья вашей кошки или собаки. Риск серьезной реакции вашего питомца на вакцину очень низок.

Если у вашего пушистого компаньона в прошлом была реакция на вакцины, обязательно сообщите об этом ветеринару. Ваш ветеринар может порекомендовать пропустить конкретную вакцинацию в будущем.

У небольших собак риск реакции на вакцины увеличивается при одновременном проведении нескольких вакцинаций.Если ваш щенок — собака маленькой или миниатюрной породы, ваш ветеринар может посоветовать сделать прививки вашему щенку в течение нескольких дней, а не все одновременно.

Часто задаваемые вопросы

Расширить все / Свернуть все

Предусмотрены ли для кошки рекомендации по месту вакцинации?

Целевая группа AAHA / AAFP 2020 признает и поддерживает ценность Консультативной группы по вакцинации AAFP 2013 года для вакцинации в определенные места в дистальных конечностях (FPV, FHV-1, FCV ниже правого локтя, FeLV ниже левого коленного сустава и от бешенства). ниже правого колена).Однако в обновлении 2020 года Целевая группа также признает, что практикующим врачам, возможно, потребуется действовать по своему усмотрению в отношении анатомического места введения вакцины. Практикующим настоятельно рекомендуется избегать промежутков между лопатками и вести точный учет места, типа вакцинации и пути введения вакцины.

Можно ли продолжать пользоваться сайтами вакцинации, указанными в рекомендациях Консультативной группы по вакцинации AAFP 2013 г.?

Да.

Почему кошачий лейкоз является базовой вакциной?

FeLV — это базовая вакцинация для всех котят до 1 года включительно, а также для кошек из группы риска. Настоятельно рекомендуется вакцинация всех котят, поскольку по сравнению со взрослыми кошками котята гораздо более восприимчивы к прогрессирующей инфекции, FeLV-ассоциированным заболеваниям и смерти при контакте с FeLV. ⁱ Кроме того, образ жизни котенка и риск заражения FeLV часто меняются в первый год жизни.

Когда взрослой кошке следует сделать ревакцинацию от лейкемии кошек?

Это требует оценки риска путем обсуждения с владельцем домашнего животного и понимания того, какой тип вакцины от лейкемии кошек доступен.

• FeLV (рекомбинантный [живой вектор канареечной оспы]): вакцинируйте через 12 месяцев после последней дозы в серии, затем ежегодно для отдельных кошек, которые подвергаются высокому риску регулярного заражения из-за контакта с FeLV + кошками и кошками с неизвестным статусом FeLV в помещении. или на открытом воздухе.
• FeLV (инактивированный): вакцинируйте через 12 месяцев после последней дозы в серии, затем рассмотрите следующий график ревакцинации:
  • Ежегодно для отдельных кошек, которые могут регулярно подвергаться заражению в результате проживания с FeLV + кошками или кошками с неизвестным статусом FeLV в помещении или на открытом воздухе.
  • Каждые два-три года, если это позволяет лицензия на продукт, для отдельных взрослых кошек, которые с меньшей вероятностью будут регулярно контактировать с FeLV + кошками. ^{ii, iii, *}

* Отсутствуют данные, позволяющие дать окончательные рекомендации относительно соответствующего интервала ревакцинации для кошек из группы риска.По мнению Рабочей группы, повторная вакцинация половозрелых кошек проводится каждые два-три года в ситуациях периодического воздействия. ^iv

Как определить, относится ли взрослая кошка к группе высокого или низкого риска лейкемии кошек?

• Высокий риск = регулярное заражение FeLV при контакте с FeLV + кошками в помещении или на открытом воздухе (например, проводя время или живя с другой кошкой, которая большую часть дня проводит на открытом воздухе без присмотра, в контакте с инфицированными кошками или в многократном контакте). кошачий дом, где статус всех кошек неизвестен.)
• Низкий риск = меньше вероятность регулярного контакта с FeLV + кошками (например, домохозяйства с небольшим количеством кошек, статус которых заведомо отрицательный, или кошек с ограниченным, контролируемым или отсутствующим доступом на улицу).

Каков оптимальный интервал между вакцинами и почему?

Минимальный интервал вакцинации во время первичной серии составляет 2 недели, а максимальный рекомендуемый интервал — 4 недели. Котята, рожденные через 6 или более недель после введения предыдущей дозы вакцины, должны получить не менее двух доз вакцины с интервалом в 3-4 недели.Хотя данных по кошачьим не существует, экстраполяция от мышей и людей предполагает, что 3-недельный интервал является оптимальным для индукции Т-клеток памяти после введения модифицированного живого вируса. ^{v, vi}

Относится ли этот интервал от 2 до 4 недель к разным антигенам? (Например, что, если я вакцинирую кошку от бешенства в возрасте 12 недель, но бустерная вакцина против FPV-FHV-1-FCV должна быть сделана через неделю из-за того, когда котенок впервые ее получил?)

Минимальный двухнедельный интервал применяется ко всем вакцинам.Если бешенство введено в возрасте 12 недель, подождите еще неделю, чтобы ввести бустер FPV-FHV-1-FCV. Каждое событие вакцинации (введение одного антигена вакцины или нескольких антигенов вакцины) должно быть разделено двумя неделями, чтобы избежать вмешательства вакцины.

Можно ли вводить вакцину еженедельно котятам, которые могут подвергаться высокому риску контакта с инфекционным патогеном?

Независимо от вакцины (парентерально) рекомендуется минимальный интервал между вакцинациями 2 недели. ПРИЧИНА: временное поствакцинальное подавление иммунного ответа и продукции цитокинов может поставить под угрозу эффект второй дозы вакцины, введенной в течение 10–12 дней после введения первой дозы.

Каким образом рекомендация по минимальному двухнедельному интервалу между вакцинациями применяется к кошкам в приютах?

Кошек, поступающих в приют, обычно вакцинируют против FHV-1, FCV и FPV при поступлении. Если вакцина вводится в течение 2 недель после приема, вакцина против бешенства обычно вводится во время выпуска кошкам в возрасте старше 12 недель. Целевая группа рекомендует вакцинацию против бешенства во время выпуска из-за потенциального вмешательства вакцины от предыдущих прививок, сделанных в течение предшествующих 2 недель.Однако с этим можно справиться, повторяя вакцинацию против бешенства через 2 недели после всех остальных прививок. Следует проконсультироваться с новым ветеринарным врачом о том, как лучше всего действовать.

Нужно ли продолжать вакцинацию пожилых кошек?

Да, стандартные протоколы вакцинации должны быть продолжены — реже вакцинация не рекомендуется из-за врожденного иммунного старения. Кроме того, более частая вакцинация не является оправданной для пожилых пациентов с пожизненной историей иммунизации, поскольку данные, полученные от других видов животных, показывают, что реакция памяти остается неизменной на протяжении всей жизни, и защитный иммунитет может эффективно поддерживаться между ревакцинациями.

Коррелируют ли титры антител к FHV-1, FCV, FPV и FeLV с иммунитетом к этим заболеваниям?

Большинство кошек с положительным результатом теста на титр панлейкопении у кошек невосприимчивы к этой болезни. Титры вируса герпеса-1 кошек и калицивируса кошек могут не обязательно хорошо коррелировать с защитным иммунитетом и не должны использоваться для прогнозирования защиты или необходимости вакцинации. Титры вируса лейкемии кошек не коррелируют с иммунитетом и не должны использоваться для определения необходимости вакцинации.

Как мне сделать прививку кошке, которой просрочены основные вакцины (за исключением бешенства)?

Среда с низким уровнем риска:

• Для котят младше 16 недель ревакцинируйте каждые 2–4 недели до достижения возраста 16 недель. Предполагается, что материнские антитела все еще присутствуют во время первой вакцинации из этой серии.
• Кошкам старше 16 недель введите одну ослабленную живую вакцину или две инактивированные вакцины с интервалом в 3 недели.Предполагается, что материнские антитела отсутствуют.

Окружающая среда высокого риска (например, убежище):

• Для котят младше 20 недель ревакцинируйте каждые 2 недели до достижения возраста не ранее 20 недель. Предполагается, что материнские антитела все еще присутствуют во время первой вакцинации из этой серии.
• Кошкам старше 20 недель введите две ослабленные живые вакцины с интервалом в 2–3 недели. Использование инактивированных вакцин в таких условиях не рекомендуется.Предполагается, что материнские антитела отсутствуют.

Что делать, если кошке давно пора сделать прививку?

Хотя существуют доказательства того, что даже инактивированные вакцины имеют более длительный, чем указано на этикетке, DOI, Tasks Force рекомендует ревакцинировать просроченных кошек однократной дозой ослабленной или инактивированной вакцины. Если кошке не нужно вводить инактивированную вакцину более чем на 2 года, рекомендуется сделать первоначальную вакцинацию, а затем повторную вакцинацию через 2–4 недели. Это верно для любого инактивированного или убитого продукта (включая вакцину FeLV с переносчиком канареечной оспы).

Для вакцинации против бешенства посетите сайт rabiesaware.org, чтобы получить дополнительную информацию о том, как обращаться с кошками, которым просрочено введение вакцины против бешенства.

Коррелируют ли титры антител к FHV-1, FCV, FPV и FeLV с иммунитетом к этим заболеваниям?

Большинство кошек с положительным результатом теста на титр панлейкопении у кошек невосприимчивы к этой болезни. Титры вируса герпеса-1 кошек и калицивируса кошек могут не обязательно хорошо коррелировать с защитным иммунитетом и не должны использоваться для прогнозирования защиты или необходимости вакцинации.Титры вируса лейкемии кошек не коррелируют с иммунитетом и не должны использоваться для определения необходимости вакцинации.

Расширить все / Свернуть все

Как мне сделать прививку котенку, которому просрочены основные вакцины (за исключением бешенства)?

Среда с низким уровнем риска:

• Для котят младше 16 недель ревакцинируйте каждые 2–4 недели до достижения возраста 16 недель.Предполагается, что материнские антитела все еще присутствуют во время первой вакцинации из этой серии.
• Котенку старше 16 недель введите одну ослабленную живую вакцину или две инактивированные вакцины с интервалом в 3 недели. Предполагается, что материнские антитела отсутствуют.

Окружающая среда высокого риска (например, убежище):

• Для котят младше 20 недель ревакцинируйте каждые 2 недели до достижения возраста не ранее 20 недель.Предполагается, что материнские антитела все еще присутствуют во время первой вакцинации из этой серии.
• Котятам старше 20 недель введите две ослабленные живые вакцины с интервалом в 2–3 недели. Использование инактивированных вакцин в таких условиях не рекомендуется. Предполагается, что материнские антитела отсутствуют.

Почему рабочая группа рекомендовала ревакцинировать котенка в возрасте 6 месяцев против FPV, FHV-1 и FCV?

В этом обновлении Целевая группа приняла ту же рекомендацию о ревакцинации против FPV, FHV-1 и FCV в возрасте 6 месяцев, чтобы потенциально уменьшить окно восприимчивости у котят, у которых был MDA, к концу серии котят ( От 16 до 18 недель).

Во время введения серии существует окно, когда концентрации MDA достаточно высоки, чтобы помешать иммунизации, но не достаточны для предотвращения естественной инфекции. Это окно восприимчивости можно минимизировать, уменьшив интервал между вакцинациями в серии, хотя использование интервалов <2 недель может помешать успешной иммунизации, особенно с использованием аттенуированных живых вакцин.

После того, как вакцинация была успешно проведена после снижения уровня MDA, обычно рекомендуется сделать повторную вакцинацию через 3-4 недели.Это означает, что серия должна быть продлена на 3–4 недели после периода, в котором происходит снижение уровня MDA, при этом последняя доза вакцины является бустерной. Раньше рекомендовалось проводить ревакцинацию через год после первой серии котят, а затем для большинства вакцин каждые 3 года. Однако из-за исследований, которые показывают, что до одной трети котят могут не реагировать на последнюю базовую вакцину через 16 недель и могут блокировать MDA через 20 недель, WSAVA рекомендует вакцину на 1 год (вирусный ринотрахеит-калицивирус кошек). -панлейкопения) заменить ревакцинацией в возрасте 6 месяцев. ^{ix, x, xi}

Следует ли молодым кошкам с клинически значимым дефицитом питания вводить дозу вакцины?

На практике невозможно точно предсказать поствакцинальный иммунный ответ у сильно истощенного животного. Однако польза от вакцинации может перевесить риск субоптимального иммунного ответа на фоне дефицита питательных веществ. Это особенно важно в приюте или другом месте с повышенным риском.

Если котенок не получит молозиво (материнские антитела) в течение первых 3 дней жизни, получит ли он какую-либо пассивную защиту антител от матери?

Котенок практически не получает иммунной защиты в отсутствие молозива. Было показано, что IGG абсорбируется в течение 16 часов после рождения, но не через 16 часов после рождения. ^{xv, xvi}

Каково окно восприимчивости при вакцинации котят?

Материнские антитела (MDA) представляют собой пассивный иммунитет (в основном, полученный из молозива), который естественным образом снижается в течение первых нескольких месяцев жизни.Существует точка, в которой уровень антител падает ниже порога защиты от естественного заражения, но может быть достаточным, чтобы препятствовать действию антигена вакцины. Это окно чувствительности возникает между возрастом, в котором уровень MDA падает ниже защитного уровня, и возрастом, в котором вакцинация фактически иммунизирует котенка. Несмотря на то, что котенок был «вакцинирован», он не вакцинирован и остается восприимчивым к инфекции, если подвергся заражению в течение этого периода.

Если котенок не получает молозива (материнские антитела или MDA), следует ли его вакцинировать в течение первых нескольких недель жизни?

На практике котят, лишенных молозива, не следует вакцинировать до 4-недельного возраста.В протоколах приютной медицины введение основных вакцин котятам в возрасте 4 недель является обычным явлением из-за плотности популяции и риска заражения.

Как можно защитить котят, лишенных молозива, от основных болезней?

У котят материнский иммунитет почти полностью обеспечивается приемом молозива.

Могут ли материнские антитела (MDA) влиять на активную иммунизацию вакцинами как модифицированного живого вируса (аттенуированные), так и убитых (инактивированных)?

Материнское антитело по-разному мешает иммунизации после введения как модифицированного живого вируса (аттенуированного), так и убитого (инактивированного) вакцины.Способность MDA вмешиваться и продолжительность вмешательства определяются несколькими факторами, включая иммунный статус королевы, ее готовность кормить грудью в первые три дня после родов и количество молозива, полученное отдельным котенком.

Расширить все / Свернуть все

Когда взрослой кошке следует сделать ревакцинацию от лейкемии кошек?

Это требует оценки риска путем обсуждения с владельцем домашнего животного и понимания того, какой тип вакцины от лейкемии кошек доступен.

• FeLV (рекомбинантный [живой вектор канареечной оспы]): вакцинируйте через 12 месяцев после последней дозы в серии, затем ежегодно для отдельных кошек, которые подвергаются высокому риску регулярного заражения из-за контакта с FeLV + кошками и кошками с неизвестным статусом FeLV в помещении. или на открытом воздухе.
• FeLV (инактивированный): вакцинируйте через 12 месяцев после последней дозы в серии, затем рассмотрите следующий график ревакцинации:
  • Ежегодно для отдельных кошек, которые могут регулярно подвергаться заражению в результате проживания с FeLV + кошками или кошками с неизвестным статусом FeLV в помещении или на открытом воздухе.
  • Каждые 2–3 года, если это позволяет лицензия на продукт, для отдельных взрослых кошек, которые с меньшей вероятностью будут регулярно контактировать с FeLV + кошками. ^{ii, iii, *}

* Отсутствуют данные, позволяющие дать окончательные рекомендации по подходящему интервалу ревакцинации для кошек из группы риска. По мнению Рабочей группы, повторная вакцинация половозрелых кошек проводится каждые 2–3 года в ситуациях периодического воздействия. ^iv

Как определить, относится ли взрослая кошка к группе высокого или низкого риска лейкемии кошек?

• Высокий риск = регулярное заражение FeLV при контакте с кошками FeLV + в помещении или на открытом воздухе (например,g., проводить время или жить с другой кошкой, которая большую часть дня проводит на открытом воздухе без присмотра или в контакте с инфицированными кошками, или в доме с несколькими кошками, где статус всех кошек неизвестен.)
• Низкий риск = менее вероятно, что они будут регулярно контактировать с FeLV + кошками (например, домохозяйства с небольшим количеством кошек, статус которых заведомо отрицательный, или кошек с ограниченным, контролируемым или отсутствующим доступом на улицу).

Как мне сделать прививку кошке, которой просрочены основные вакцины (за исключением бешенства)?

Среда с низким уровнем риска:

• Кошкам старше 16 недель введите одну ослабленную живую вакцину или две инактивированные вакцины с интервалом в 3 недели.Предполагается, что материнские антитела отсутствуют.

Окружающая среда высокого риска (например, убежище):

• Кошкам старше 20 недель введите две ослабленные живые вакцины с интервалом в 2–3 недели. Использование инактивированных вакцин в таких условиях не рекомендуется. Предполагается, что материнские антитела отсутствуют.

Что делать, если кошке давно пора сделать прививку?

Хотя существуют доказательства того, что даже инактивированные вакцины имеют более длительный, чем указано на этикетке, DOI, Tasks Force рекомендует ревакцинировать просроченных кошек однократной дозой ослабленной или инактивированной вакцины.Если кошке не нужно вводить инактивированную вакцину более чем на 2 года, рекомендуется сделать первоначальную вакцинацию, а затем повторную вакцинацию через 2–4 недели. Это верно для любого инактивированного или убитого продукта (включая вакцину FeLV с переносчиком канареечной оспы).

Будет ли однократная доза вакцин против FHV-1, FCV, FPV принести пользу кошке?

При отсутствии материнских антител (особенно кошек старше 20 недель) одна доза этих вакцин должна обеспечивать защитный иммунный ответ.Однако введение двух доз базовой вакцины с интервалом в 3-4 недели является приемлемой альтернативой для молодых взрослых кошек, получающих начальные дозы базовой вакцины.

В какой степени вакцины для кошек обеспечивают перекрестную защиту?

Есть некоторые свидетельства того, что вакцины с двойным штаммом калицивируса могут обеспечивать улучшенную защиту от большего разнообразия вариантов калицивируса. ^{(6), xvii} Многие различные штаммы FCV вызывают вирулентное системное калицивирусное заболевание (VSD).Современные вакцины могут не обеспечивать защиту от всех этих штаммов.

Вакцина против панлейкопении обеспечивает перекрестную защиту от штаммов парвовируса, заражающих кошек.

Расширить все / Свернуть все

Можно ли смешивать разные типы вакцин в одном шприце?

Нет. Если не указано иное на этикетке продукта (листок-вкладыш), разные вакцины никогда не следует смешивать в одном шприце перед введением.

Можно ли вводить разные вакцины (не являющиеся частью одного коммерческого продукта) одной и той же кошке в одно и то же время?

Да. Разные типы вакцин можно вводить одному и тому же пациенту в разных местах. Например, если комбинированная вакцина (например, вирусный ринотрахеит кошек (FHV-1), калицивирус кошек (FCV), вирус панлейкопении кошек (FPV)) вводится подкожно (SQ) дистально на правой передней ноге, убитый (инактивированный) вакцину против бешенства можно вводить SQ дистально на правой задней ноге.

Следует ли маленькой кошке или котенку получить такой же объем парентерально вводимой вакцины, как и большой кошке?

В отличие от фармацевтических препаратов (доза которых обычно зависит от веса), доза вакцины основана не на объеме на массу тела (размер), а на минимальной иммунизирующей дозе (инактивированная вакцина) или минимальной инфекционной дозе (аттенуированная вакцина). . Кроме того, не было показано, что произвольное уменьшение объема дозы вакцины снижает риск острой побочной реакции или повышает безопасность. ВАЖНО : Полная доза должна вводиться в соответствии с указаниями производителя. Введение меньше предписанной дозы может не вызвать защитного иммунного ответа.

Влияет ли потеря вакцины после интраназального введения вакцины (например, интраназальной вакцины

FHV-1, FCV, FPV, Bordetella ) на степень иммунитета пациента от этой дозы?

Ожидается потеря небольшого количества вакцины во время или сразу после перорального или интраназального введения.Все вакцины для слизистых оболочек содержат ослабленные (живые) вирусы / бактерии в концентрации, превышающей минимальную концентрацию, необходимую для иммунизации отдельной кошки.

Следует ли вводить вакцину, предназначенную для парентерального введения, интраназальным (IN) путем?

Нет, всегда следуйте инструкциям на этикетке по введению вакцины.

Есть ли польза от одновременного введения интраназальной вакцины FHV-1 / FCV и парентеральной вакцины FHV-1 / FCV при одном приеме?

Использование комбинации IN и SQ может обеспечить улучшенную защиту. ^xii

Можно ли вводить интраназальную вакцину пероральным путем?

Нет, всегда следуйте инструкциям на этикетке по введению вакцины.

Следует ли наносить дезинфицирующее средство (например, спирт) на место инъекции перед введением вакцины?

Обычно это не рекомендуется, потому что дезинфицирующее средство может инактивировать модифицированный живой вирус (аттенуированный) продукт и, как известно, не принесет пользы пациенту.

Как долго вакцина остается стабильной после восстановления?

Вакцины всегда следует хранить и обращаться с ними в соответствии с инструкциями производителя.В идеале вакцину следует использовать сразу после восстановления, но обязательно в течение часа.

Что такое нестерильный иммунитет?

Некоторые вакцины для кошек служат только для предотвращения клинических проявлений, а не для полной (абсолютной) профилактики инфекции. Нестерильный иммунитет — это термин, который использовался для описания качества иммунного ответа после вакцинации. Это происходит, когда вакцина уменьшает тяжесть заболевания, но не предотвращает полностью инфекцию, развитие клинических признаков или выделение после заражения (например,g., вакцины против FHV-1, FCV и FeLV).

Что такое стерильный иммунитет?

Некоторые вакцины для кошек обладают высокой иммуногенностью и обеспечивают полную защиту от инфекции. Стерильный иммунитет не предполагает риска развития клинического заболевания и выделения, если вакцинированный пациент впоследствии подвергнется воздействию патогена (например, вируса бешенства и FPV).

В какой степени вакцины для кошек обеспечивают перекрестную защиту?

Есть некоторые свидетельства того, что вакцины с двойным штаммом калицивируса могут обеспечивать улучшенную защиту от большего разнообразия вариантов калицивируса. ^{(6), xvii} Многие различные штаммы FCV вызывают вирулентное системное калицивирусное заболевание (VSD). Современные вакцины могут не обеспечивать защиту от всех этих штаммов.

Вакцина против панлейкопении обеспечивает перекрестную защиту от штаммов парвовируса, заражающих кошек.

Существует ли известный риск для людей, которые случайно подвергаются интраназальной вакцине для кошек, содержащей FHV-1, FPV, FCV или

Bordetella ?

Временное выделение аттенуированных (невирулентных живых) организмов может произойти после интраназального введения кошкам.Однако реальный риск для человека при воздействии ослабленных бактерий окончательно не установлен. Риск инфицирования лиц с ослабленным иммунитетом в результате временного выделения после вакцинации после интраназального введения или вакцинации вызывает озабоченность у врачей (онкологов, трансплантологов и т. Д.).

Расширить все / Свернуть все

Почему одна начальная доза убитой (инактивированной) вакцины против бешенства способна иммунизировать кошку, тогда как две дозы (с интервалом от 2 до 4 недель) требуются для всех других убитых вакцин?

Все вакцины против бешенства для кошек, лицензированные в США, являются либо инактивированными (убитыми), либо вакцинами рекомбинантной технологии.Обычно для иммунизации требуются две последовательные дозы инактивированной вакцины, вводимые с интервалом от 2 до 4 недель (например, FCV, FHV-1 и FPV у молодых кошек). Вакцина против вируса бешенства является исключением. Как и другие инактивированные вакцины, начальная доза вакцины против бешенства служит «затравочной» дозой. Если кошка, получив только одну дозу вакцины против бешенства, впоследствии подвергается воздействию вирулентного вируса бешенства, воздействие вирулентного вируса служит второй или иммунизирующей «дозой». Поскольку признаки бешенства проявляются медленно (от недель до месяцев) после заражения, существует достаточно времени для развития защитного гуморального иммунного ответа.По этой причине заражение бешенством вакцинированных кошек, даже среди получивших однократную дозу, встречается исключительно редко.

Как долго одна вакцина против бешенства защищает диких кошек от инфекции?

Хотя нет сообщений о долгосрочной оценке диких кошек, исследования по лицензированию вакцин продемонстрировали 3–4-летнюю дозу вакцины после однократной вакцинации лабораторных котят. Это говорит о том, что, хотя первая вакцина против бешенства может быть признана регулирующими органами действительной только в течение одного года, вакцинированные кошки, вероятно, защищены намного дольше.

В местах, где требуется вакцинация кошек от бешенства, может ли лицензированный ветеринар освободить от этого требования, если пациент болен или существует риск побочной реакции или других травм для пациента?

В большинстве штатов НЕ разрешается освобождать места оказания медицинской помощи от вакцинации против бешенства (см. Www.rabiesaware.org). В штатах и ​​юрисдикциях, где это требуется, вакцина против бешенства должна вводиться через соответствующие промежутки времени, независимо от возраста или состояния здоровья кошки, если только полномочия по освобождению от вакцинации против бешенства специально не определены законом или постановлением штата.

В настоящее время небольшое количество штатов предоставляет ветеринарам право на освобождение от вакцинации против бешенства в пунктах оказания медицинской помощи. Некоторые допускают исключения только с одобрения уполномоченного представителя общественного здравоохранения (обычно ветеринара). Исключения могут быть разрешены в случае, если определено, что конкретная кошка достаточно больна или если вакцинация против бешенства представляет потенциальную угрозу для жизни. Скорее всего, потребуется медицинский осмотр и медицинская документация о болезни. Владелец и ветеринар несут ответственность за повторную вакцинацию кошки, когда или если основное заболевание исчезнет.

ПРИМЕЧАНИЕ : Среди случаев, когда освобождение от вакцинации против бешенства было одобрено и действует, «освобожденная» кошка не будет считаться «вакцинированной в настоящее время» (иммунизированной), если интервал повторной вакцинации против бешенства (т. Е. 1 год или 3 года) превышено.

В связи с потенциальными последствиями, связанными с воздействием бешенства у кошки, которая в настоящее время не вакцинирована против бешенства, владелец должен участвовать в процессе принятия решения о вакцинации, а ветеринар должен задокументировать обсуждение в медицинском кабинете пациента. записывать.

Ветеринары, практикующие в местах, где требуется вакцинация от бешенства, но право на освобождение от вакцинации специально не определено, должны связаться с ветеринаром общественного здравоохранения штата или провинциальным департаментом здравоохранения (Онтарио) для получения рекомендаций по этому вопросу, прежде чем вакцинировать кошку с заболеванием, которое в По мнению ветеринара, введение вакцины против бешенства не допускается.

Следует ли вакцинировать кошек от бешенства в регионах, где это не требуется по закону?

За исключением Гавайев, кошек во всех штатах США и кошек во всех странах или округах с эндемическим бешенством любого вида следует вакцинировать против бешенства, даже если это не требуется в данной юрисдикции.

Если здоровая кошка просрочена для ревакцинации (и имеет документацию о предыдущей вакцинации), каков соответствующий протокол для ревакцинации?

В большинстве штатов и округов, где требуется вакцинация кошек против бешенства, введение однократной дозы вакцины против бешенства, независимо от времени, прошедшего с момента введения предыдущей дозы, считается иммунизирующей дозой. В большинстве штатов после ревакцинации кошка считается немедленно вакцинированной против бешенства.В большинстве штатов продолжительность иммунитета от бустерной дозы определяется этикеткой продукта (т. Е. 1 год или 3 года). В некоторых штатах требуется, чтобы все кошки, просроченные для ревакцинации, даже если они прошли всего один день, получили две дозы вакцины против бешенства с интервалом в 1 год. (Информацию о вашем штате см. На сайте www.rabiesaware.org).

Коррелирует ли «положительный» результат теста на антитела к бешенству с защитным иммунитетом?

Нет. По крайней мере, не в юридическом смысле. ВАЖНО : В Соединенных Штатах и ​​Канаде «положительный» результат теста на антитела, нейтрализующие вирус бешенства (РВНК), составляет , не считается показателем защитного иммунитета и не может использоваться вместо ревакцинации .По состоянию на 2017 год РВНК (независимо от используемой методологии) обозначает только предшествующую вакцинацию и преимущественно ограничивается использованием собак / кошек, экспортируемых из США / Канады в страны / регионы мира, свободные от бешенства. Тестирование — это требование, введенное страной / регионом-импортером как средство подтверждения недавней вакцинации против бешенства, и не рассматривается как доказательство защитного иммунитета против бешенства.

Будет ли у кошки положительный результат теста на нейтрализацию вируса флуоресцентными антителами (FAVN) после получения однократной начальной дозы вакцины против бешенства в течение целого года?

Вряд ли.Можно ожидать, что результат теста на антитела (FAVN) у кошек, получивших однократную начальную дозу вакцины против бешенства, покажет «положительный» результат теста в течение ограниченного времени (примерно до 3 месяцев) после вакцинации. Возраст кошки и индивидуальная реакция пациента на вакцинный антиген влияют на амплитуду и продолжительность серологического ответа после однократной дозы вакцины против бешенства. Кошки, прошедшие тестирование на FAVN перед экспортом, с большей вероятностью будут иметь отрицательный («неуспешный») результат теста, если они получили однократную дозу вакцины по сравнению с двумя или более дозами.

Расширить все / Свернуть все

Влияет ли лечение глюкокортикоидами на иммунитет к вакцине во время первой серии вакцинации (котята) или после введения бустерной дозы вакцины (взрослые)?

Исследования на собаках и людях показывают, что краткосрочное (дневное) лечение глюкокортикоидами, даже в высоких дозах (2,5 мг / кг) до или во время вакцинации, не оказывает значительного подавляющего действия на гуморальный иммунитет после вакцинации.Сообщалось об обратимом гуморальном подавлении иммунитета у людей после длительной (многолетней) терапии глюкокортикоидами. ^{vii, viii}

ВАРИАНТ : Разумно провести ревакцинацию через 2 или более недель после окончания длительной терапии глюкокортикоидами, особенно если лечение проводилось во время введения начальной серии базовых вакцин.

Следует ли вводить вакцину домашним животным, получающим иммунодепрессанты или цитотоксическую терапию (кроме глюкокортикоидов) кошкам с системным заболеванием, таким как рак или иммуноопосредованное заболевание?

Вакцины рекомендуется вводить только здоровым кошкам.Кошки, получающие иммунодепрессанты и химиотерапию, не должны вакцинироваться. Это может привести к неоптимальному иммунному ответу. ^viii

ВАРИАНТ : Тест на антитела к FPV можно использовать для определения необходимости введения бустерной дозы; или тестирование может проводиться через 2–4 недели после вакцинации для оценки реакции отдельного пациента после вакцинации.

Рабочая группа рекомендует использовать инактивированную вакцину, если кошка положительна на ретровирус.

Следует ли вакцинировать кошек с ослабленным иммунитетом?

Пациенты с ослабленным иммунным ответом, вызванным инфицированием FeLV / FIV или применением иммуносупрессивной терапии, подвергаются повышенному риску заражения и могут быть кандидатами на вакцинацию. Несмотря на ограниченность данных по кошачьим, инактивированные вакцины обычно считаются более безопасными для пациентов с иммуносупрессией. Кошек, инфицированных ретровирусом, не следует вакцинировать против ретровируса, которым они инфицированы.

Следует ли делать прививку беременной кошке?

По возможности следует избегать вакцинации аттенуированной / живой вакциной во время беременности, чтобы снизить риск повреждения плода. Есть исключения, особенно в приютах для животных, где рекомендуется вакцинация для снижения передачи болезни.

Каковы рекомендации по вакцинации кошки, инфицированной FIV или кошачьим лейкозом?

Рабочая группа рекомендует использовать инактивированную вакцину, если кошка положительна на ретровирус.Эти кошки подвержены повышенному риску заражения и могут быть кандидатами на вакцинацию. Несмотря на ограниченность данных по кошачьим, инактивированные вакцины обычно считаются более безопасными для пациентов с иммуносупрессией. Кошек, инфицированных ретровирусом, не следует вакцинировать против ретровируса, которым они инфицированы.

Следует ли вводить вакцину пациенту под наркозом?

Обычно это НЕ рекомендуется.Существует небольшой риск того, что реакция гиперчувствительности после вакцинации может привести к рвоте и повышенному риску аспирации. Однако в случае ограниченных возможностей введения вакцины отдельной кошке (например, программы стерилизации и стерилизации), введение вакцины во время или сразу после выхода из наркоза является приемлемым.

Подлежат ли определенные чистокровные кошки уникальным протоколам вакцинации, чтобы гарантировать, что они должным образом иммунизированы?

№Специфические для породы протоколы сегодня не считаются необходимыми.

Могу ли я вакцинировать свою гибридную / экзотическую / дикую кошку?

Считается, что гибридные / экзотические / дикие кошки включают бенгальских кошек (кроссы азиатских леопардов и кошек), кошек саванны (кроссы сервала), рыси или гибриды джунглей и кошек, виды диких кошек или любую смесь диких кошек с домашними кошками. . Не рекомендуется использовать какие-либо коммерческие вакцины против FHV-1, FHV, FPV, FeLV или бешенства, предназначенные для использования у домашних кошек, для вакцинации гибридных / экзотических / диких кошек.Как правило, гибридные / экзотические / дикие кошки считаются невакцинированными от бешенства независимо от их статуса вакцинации против бешенства.

Можно ли вводить вакцину инфицированной (и клинически больной) кошке в качестве средства «лечения» клинического заболевания или сокращения курса инфекции?

Введение вакцины против FeLV клинически больным пациентам в качестве средства лечения болезни неэффективно и не рекомендуется. ^xiii

В случае патогенов верхних дыхательных путей интраназальные респираторные вакцины могут вызывать неспецифический иммунитет, который обеспечивает защиту не только от болезни, от которой вы вакцинируете, но и от других нецелевых патогенов, не включенных в вакцину. ^xiv

Что касается рекомендаций «вакцинировать при поступлении», как следует вакцинировать кошек старше 18 недель, которые были приняты, но затем возвращены обратно в приют один или несколько раз?

Нет необходимости вводить вакцину при въезде, если можно подтвердить адекватную вакцинацию в анамнезе.

Каким образом рекомендация по минимальному двухнедельному интервалу между вакцинациями применяется к кошкам в приютах?

Кошек, поступающих в приют, обычно вакцинируют против FVH-1, FCV и FPV при поступлении.Если вакцина вводится в течение 2 недель после приема, вакцина против бешенства обычно вводится во время выпуска кошкам в возрасте старше 12 недель. Вакцинация против бешенства во время выпуска часто проводится, даже если предыдущая вакцинация могла иметь место в течение последних 2 недель. Новый ветеринар и новый владелец должны будут определить, следует ли вводить еще одну вакцину против бешенства после того, как пройдет двухнедельный интервал.

Список литературы

ⁱ Little S, Levy J, et.al 2020 AAFP Feline Retrovirus Testing and Management Guidelines. Журнал кошачьей медицины и хирургии . 2020: 22, 5-30

ⁱⁱ Wilson S, Greenslade J, Saunders G, et al. Трудности демонстрации долговременного иммунитета у вакцинированных FeLV кошек из-за возрастающей резистентности к инфекции. BMC Vet Res 2012; 8: 125.

ⁱⁱⁱ Джирджис Ф.Ф., Дэвис Т., Лейн Дж., Карритт К. и др. Защита от заражения вирусом лейкемии кошек в течение как минимум двух лет после вакцинации инактивированной вакциной против вируса лейкемии кошек. Ветеринарная служба . 2010: 11 (2): E1-6.

^iv Wilson S, Greenslade J, Saunders G, et al. Трудности демонстрации долговременного иммунитета у вакцинированных FeLV кошек из-за возрастающей резистентности к инфекции. BMC Vet Res 2012; 8: 125.

^v Wherry EJ, Teichgraber V, Becker TC, Masopust D, Kaech SM, Antia R, et al. Клонирование и защитный иммунитет субпопуляций CD8 Т-клеток памяти. Nat Immunol 2003; 4: 225–234.

^vi Уэрри Э. Дж. И Ахмед Р.Дифференциация Т-клеток CD8 памяти во время вирусной инфекции. J Virol 2004; 78: 5535–5545.

^vii Lack G, Ochs HD, Gelfand EW. Гуморальный иммунитет у стероидозависимых детей с астмой и гипогаммаглобулинемией. J Pediatrics 1996; 129 (6): 898–903.

^viii Федор М.Е., Рубинштейн А. Влияние длительной терапии низкими дозами кортикостероидов на гуморальный иммунитет. Ann Allergy Asthma Immunol 2006; 97 (1): 113–6.

^ix Day MJ, Horzinek MC, Schultz RD, et al.Руководство WSAVA по вакцинации собак и кошек. J Small Anim Pract 2016; 57: E1-E45.

^x ДиГанги, Б.А., Леви, Дж. К., Гриффин, Б. и др. (2012) Распространенность сывороточных титров антител против вируса панлейкопении кошек, вируса герпеса кошек 1 и калицивируса кошек у кошек, попадающих в приют для животных Флориды. Журнал Американской ветеринарной медицинской ассоциации 241, 1320-1325

^xi Якель, В., Касслер, К., Ханшманн, К.M. et al. (2012) Вакцинация против панлейкопении кошек: результаты полевого исследования на котятах. BMC Veterinary Research 8, 62

^xii Reagan, KL, Hawley, JR, Lappin, MR. Одновременное введение интраназальной вакцины, содержащей кошачий герпесвирус-1 (FHV-1), с парентеральной вакциной, содержащей FHV-1, превосходит парентеральную вакцинацию при острой FHV- 1 Модель вызова. Ветеринарный журнал 201, 2014: 202-206.

^xiii Хельфер-Хунгербюлер, К., Видмер, С., Кесслер, Ю., Рионд, Б., Боретти, Ф.С., Грест, П., Лутц, Х., Хофманн-Леманн, Р. Долгосрочное наблюдение за инфекцией, вызванной вирусом лейкемии кошек, и характеристика вируса Нагрузки РНК с использованием молекулярных методов в тканях кошек с различными исходами инфекции. Исследование вирусов, февраль 2015 г .: Том 197: 137-150.

^xiv Bradley, A., Kinyon, J., Frana, T., Bolte, D., Hyatt, DR, and Lappin, MR. Эффективность интраназального введения модифицированного живого кошачьего герпесвируса 1 и кошачьей калицивирусной вакцины против заболеваний, вызываемых от Bordetella bronchiseptica после экспериментального испытания. J Vet Intern Med 2012: 26: 1121-1125.

^xv Клаус, М.А., Леви, Дж. К., Макдональд, К., Такер, С. Дж., Кроуфорд, С. Концентрации иммуноглобулинов в молозиве и молоке кошек, а также потребность в молозиве для пассивной передачи иммунитета новорожденным котятам. J Fel Med Surg 2006: Том 8: Выпуск 3.

^xvi Casal, M.L., Jezyk, P.F, Giger, U. Передача колостральных антител от маток их котятам. Американский журнал ветеринарных исследований 1996: 57 (11), 1653-1658.

^xvii Huang, C., Hess, J., Gill, M., Hustead, D. Вакцина против калицивируса кошек с двумя штаммами стимулирует более широкие антитела кросс-нейтрализации, чем вакцина с одним штаммом, и снижает клинические симптомы у вакцинированных кошек, когда Испытание вызвано гомологичным штаммом калицивируса кошек, ассоциированным с вирулентным системным заболеванием. J Feline Med Surg февраль 2010 г .; 12 (2): 129-137.

Прививки для кошек — все, что вы должны знать

Невозможно недооценить важность прививок для общего здоровья и долголетия вашей кошки.Вакцины для кошек с медицинской и научной точки зрения доказали свою эффективность в борьбе с инкубацией и передачей паразитов и смертельных болезней кошек. Наш ветеринарный персонал занимается обучением людей важности вакцинации кошек, в том числе о том, какие вакцины для кошек необходимы и когда их следует назначать.

Важно отметить, что наши врачи не следуют универсальному протоколу иммунизации, а относятся к каждой кошке как к индивидууму и рекомендуют наилучшие возможные протоколы, учитывая их факторы риска, такие как возраст, общее состояние здоровья и образ жизни.

За прошедшие годы мы ответили на множество вопросов о вакцинации кошек от заинтересованных владельцев котят и кошек. Здесь мы собрали некоторые из наиболее часто задаваемых вопросов, чтобы помочь вам лучше понять проблемы, связанные с вакцинацией кошек. Это предназначено только для общего введения в вакцинацию кошек, поэтому, пожалуйста, проконсультируйтесь с одним из наших ветеринаров во время вашего следующего визита для получения конкретной информации о вакцинации котят или вакцинации кошек, если это касается вашего животного из семейства кошачьих.

Нужны ли вакцины котятам и кошкам?

Ответ — да. Владелец котенка или кошки несет ответственность за благополучие своего кошачьего друга — в том числе за счастье и долголетие. Прививки кошек являются неотъемлемой частью уравнения долголетия. Научно и с медицинской точки зрения доказано, что вакцинация котят и кошек предотвращает различные коварные заболевания.

Требуются ли прививки от кошек по закону?

Бешенство — единственная вакцинация кошек, требуемая законом в штате Иллинойс.Это связано в первую очередь с угрозой, которую бешенство представляет для людей, и скоростью, с которой бешенство может распространяться. Хотя другие прививки для кошек и котят не требуются по закону, они важны, потому что защищают вашу кошку от серьезных заболеваний.

Какие вакцины для кошек рекомендуются?

Американская ассоциация практикующих кошек определила, какие прививки следует делать кошкам. Обсудите, какие прививки необходимы вашей кошке при следующем посещении.Однако обычно рекомендуются следующие прививки:

Вакцины для кошек

• Панлейкопения
• Ринотрахеит
• Калицивирус
• Бешенство
• Кошачий лейкоз

Каковы рекомендуемые графики вакцинации котят и кошек?

Прививки котят и кошек зависят от нескольких факторов, включая уже существующие медицинские условия и условия проживания в помещении или на открытом воздухе. Вы всегда должны обсуждать эти факторы с ветеринаром, чтобы определить, каким должен быть график вакцинации вашей кошки.Тем не менее, мы перечислили здесь приблизительный график вакцинации кошек для «средней» домашней кошки, чтобы дать вам представление о сроках вакцинации кошек:

Прививки для котят

• 6-10 недель: FVRCP (кошачья чума)
• 11-14 недель: FVRCP (кошачья чумка), FeLV (кошачий лейкоз)
• 15+ недель: FVRCP (кошачья чумка), FeLV (кошачий лейкоз), вакцина против бешенства

Прививки взрослых кошек

Вакцины вводят вашей кошке через год после окончания серии котят.Комбинированная вакцина FVRCP или кошачьей чумы, FeLV для кошачьих, подверженных риску заражения вирусом кошачьей лейкемии (кошки, которые не находятся под наблюдением на открытом воздухе) и бешенства ежегодно в соответствии с требованиями закона.

* Комбинированная вакцина включает вакцину против чумы кошек, ринотрахеита и калицивируса.

** По данным Американской ветеринарной медицинской ассоциации и Американской ассоциации практикующих кошек, кошкам с низким риском заражения может не потребоваться повторная вакцинация от большинства болезней ежегодно.При следующем посещении проконсультируйтесь с ветеринаром, чтобы определить подходящий график вакцинации для вашей кошки. Помните, что рекомендации различаются в зависимости от возраста, породы и состояния здоровья кошки, потенциальной возможности кошки быть подверженной заболеванию, типа вакцины, использования кошки для разведения и географической области, в которой она обитает. живет или может посетить.

Есть ли риски, связанные с вакцинацией кошек?

Прививки для кошек стимулируют иммунную систему вашего котенка или кошки, чтобы обеспечить защиту от определенных инфекционных заболеваний.Это может вызвать появление легких симптомов, начиная от болезненности в месте инъекции и заканчивая лихорадкой и аллергическими реакциями. Вакцинация кошек может вызвать другие риски, такие как опухоли в месте инъекции и иммунные заболевания, однако такие случаи крайне редки и могут быть связаны с уже существующими генетическими и медицинскими состояниями. Из-за возможности реакции в месте инъекции мы вводим каждую вакцину в определенном месте, которое указано в медицинской карте кошки.

Дело в том, что польза от вакцинации кошек намного перевешивает любые риски.Вакцины для кошек спасли бесчисленное количество жизней и играют жизненно важную роль в борьбе с инфекционными болезнями кошек. Как и при любой другой медицинской процедуре, существует небольшая вероятность возникновения негативных побочных эффектов. В большинстве случаев риски намного меньше, чем риски самого заболевания.

Есть ли побочные эффекты, за которыми я должен следить после вакцинации кошек?

Большинство кошек не проявляют побочных эффектов вакцины для кошек. Если у вашей кошки есть реакция, она обычно незначительна и непродолжительна.Тем не менее, вы все равно должны следить за следующими симптомами, которые могут указывать на отрицательные побочные эффекты вакцины для кошек:

• Лихорадка
• Сильная летаргия
• Потеря аппетита
• Рвота
• Диарея
• Отек и покраснение вокруг места укола
• Хромота
• Ульи

Если вы подозреваете, что ваша кошка испытывает какие-либо побочные эффекты от вакцины для кошек, немедленно позвоните нам, чтобы мы могли помочь вам определить, нужен ли какой-либо особый уход.

Когда мне следует планировать вакцинацию котят и кошек?

Вам следует запланировать вакцинацию котенка, как только вы родите нового котенка. Независимо от возраста вашего нового котенка следует как можно скорее осмотреть ветеринар. Важно разработать план профилактического медицинского обслуживания, включая вакцинацию, дегельминтизацию и борьбу с блохами. Кроме того, мы уделим время обсуждению обучения поведению, чтобы убедиться, что ваш котенок разовьет хорошее поведение и станет отличным домашним животным.

Планируйте, что при первом посещении вам потребуется не менее тридцати минут. Это прекрасное время, чтобы получить ответы на все свои вопросы по уходу за котятами и обсудить рекомендованную профилактическую программу с нашей ветеринарной бригадой.

График вакцинации взрослых кошек, который включает периодические ревакцинации, будет составлен через год после завершения графика вакцинации котят.

Как и в случае с любым другим протоколом иммунизации, необходимо без отклонений придерживаться графика вакцинации кошек, чтобы ваша кошка оставалась здоровой и здоровой на протяжении всей своей жизни.Мы не можем контролировать все проблемы со здоровьем, но мы можем предотвратить большинство инфекционных заболеваний с помощью надлежащего графика вакцинации.

Регулярная вакцинация вашей кошки направит вашего любимого пушистого кота на путь счастливой и здоровой жизни, поэтому свяжитесь с одним из наших ветеринаров, чтобы записаться на нее сегодня.

админ | Ветеринарная клиника Альпенлофтс

от admin | 23 апр.2019 г. | Кошки

Состояние шерсти и кожи вашей кошки является важным показателем здоровья кошки.Здоровая шерсть блестящая и гладкая, а здоровая кожа будет гладкой и чистой. В то время как питание и состояние здоровья влияют на внешний вид кошки, регулярный уход также имеет значение. Уход в домашних условиях, включая ежедневную чистку зубов, является важной частью ухода за кошками.

Хотя большинство кошек привередливы и редко нуждаются в ванне, регулярный домашний уход, в том числе ежедневная чистка, по-прежнему важен. Расчесывание особенно важно для длинношерстных кошек, которые более подвержены спутыванию и спутыванию шерсти.Ежедневная чистка — лучший способ удалить распущенные волоски. Ежедневная чистка также поможет владельцам, страдающим аллергией, поскольку регулярный уход уменьшает количество шерсти и шерсти домашних животных в доме. Для людей с легкой аллергией на кошек ежедневная чистка зубов может в достаточной мере снизить количество переносимых по воздуху кошачьих аллергенов, что позволит им комфортно жить вместе с кошками в одном доме.

Регулярное расчесывание также помогает уменьшить количество шерсти, которое кошки естественным образом проглатывают в результате самостоятельного ухода. Это может уменьшить количество и тяжесть комков шерсти.Если владельцы домашних животных предпочитают купать своих кошек, выбирайте шампуни, специально разработанные для кошачьих. Старым или тучным домашним животным с ограничениями в передвижении может потребоваться дополнительная помощь по уходу, в том числе домашние ванны, если они не могут полностью ухаживать за собой.

Ногти следует проверять во время еженедельных сеансов ухода и при необходимости подстригать. Когти у кошек растут иначе, чем у собак или людей. Кошки сбрасывают ногти, как рептилии сбрасывают кожу. По мере того как кошки стареют, они все реже используют когтеточки, а шляпки ногтей могут накапливаться до такой степени, что ногти закручиваются и проникают в подушечки лап.Кусачки для ногтей Cat можно использовать для стрижки ногтей и предотвращения этого.

Во время ухода в домашних условиях владельцы домашних животных должны также провести мини-осмотр кошки, оценив состояние кожи и шерсти кошки, ощупывая комочки и неровности или отмечая болезненные участки. Потирая кошку голову или почесывая подбородок, осторожно приподнимите верхние губы указательными пальцами, проверяя, нет ли ненормальных зубов или красных десен. Помимо того, что для кошек и их владельцев это особое время общения, оценка состояния здоровья кошек во время ухода имеет решающее значение для пожилых кошек, которые умеют скрывать симптомы болезни.Ранняя диагностика проблем со здоровьем начинается с активного ухода на дому.

Источник:

Центр здоровья кошек Cornell, «Особые потребности пожилых кошек».

от admin | 23 апр.2019 г. | Кошки

Острая почечная недостаточность и хроническая почечная недостаточность — две проблемы со здоровьем, от которых обычно страдают кошки. Острая почечная недостаточность может возникнуть у кошек в любом возрасте; Неотложная помощь необходима для лечения этого состояния и спасения жизни кошки. Хроническая почечная недостаточность обычно возникает у пожилых кошек.По данным Американской ассоциации практикующих кошек, 49% всех кошек старше 15 лет страдают хроническим заболеванием почек. Поскольку диагноз «проблемы с почками и почечная недостаточность» у кошек становится все более распространенным явлением, важно, чтобы владельцы кошек узнали о симптомах этого заболевания и о том, как лучше всего справиться с этим заболеванием.

Почки играют важную роль в повседневных функциях. Почки удаляют метаболические отходы из кровотока и вырабатывают жизненно важные гормоны, которые помогают контролировать кровяное давление и стимулируют выработку красных кровяных телец.Почки следуют сложной системе управления отходами и их регулирования; Когда эта система выходит из строя, могут возникнуть серьезные осложнения со стороны других органов кошки, которые в конечном итоге могут привести к смерти.

Острая почечная недостаточность

Острая почечная недостаточность вызывается блокировкой кровотока к почкам или отводом мочи от почек, либо повреждением самой почечной ткани. Наиболее частой причиной острой почечной недостаточности является прием токсичных веществ, таких как антифриз, противовоспалительные препараты или лилии.При раннем обнаружении и лечении острой почечной недостаточности возможно полное выздоровление. Хотя во многих случаях кошка будет частично оправляться от острого криза и в конечном итоге перейдет к хронической почечной недостаточности,

Хроническая почечная недостаточность

Хроническая почечная недостаточность — неизлечимое заболевание, поражающее в первую очередь пожилых кошек. Это часто является конечной стадией для других проблем со здоровьем, таких как запущенное стоматологическое заболевание или воспаление / непроходимость почек. Однако благодаря достижениям в области ветеринарной помощи при ранней диагностике и правильном лечении часто удается обеспечить кошке хорошее качество жизни на долгие годы.

Лечение почечной недостаточности зависит от причины и тяжести состояния. В случае острой почечной недостаточности, если почка заблокирована непроходимостью, возможно, удастся удалить закупорку хирургическим путем и устранить проблему. При хронической почечной недостаточности лечение сосредоточено на диете, питье и лекарствах для контроля вторичных проблем, таких как высокое кровяное давление и анемия, которые могут возникнуть.

Существует много брендов диет, предназначенных для лечения проблем с почками у кошек; все имеют пониженное количество белка и фосфора и, возможно, содержат добавленный калий.Перед изменением рациона кошки посоветуйтесь со своим ветеринаром.

Основное лечение обоих видов почечной недостаточности — это жидкости. Госпитализация с интенсивной инфузионной терапией требуется при острой почечной недостаточности, а также часто используется при более тяжелой стадии хронической. Когда состояние кошки стабилизируется, многие ветеринары рекомендуют вам подкожно вводить жидкость дома. Они научат вас вводить специальную жидкость под кожу. Кошки к этому на удивление терпимы.

Другие лекарства могут включать стимуляторы аппетита, препараты, снижающие кислотность желудка, такие как пепцид, фосфат-связывающие вещества, добавки калия и инъекционный эритропоэтин, который используется для стимуляции выработки красных кровяных телец у анемичных кошек.Кошки с проблемами почек часто имеют высокое кровяное давление и поэтому нуждаются в лекарствах от гипертонии.
Хотя у кошек очень часто встречаются проблемы с почками, с этой болезнью часто можно хорошо справиться в течение многих лет.

Источники:

Американская ассоциация практикующих кошек, «Хроническое заболевание почек у кошек».

Колледж ветеринарной медицины Корнельского университета, «Диагноз: болезнь почек».

от admin | 23 апр.2019 г. | Кошки

от admin | 23 апр.2019 г. | Кошки

Ваши любимые кошачьи оставляют вам комочки шерсти в качестве подарков? Если да, то вы не одиноки.Хотя мы любим кошек за то, что они скрупулезно ухаживают за ними, можно с уверенностью сказать, что мы не любим искать волосатые подарки по дому. Давайте разберемся, что вызывает появление комков шерсти и как их предотвратить.

Что вызывает комок шерсти?

Шарики шерсти — это скопления меха или волос, которые кошка непреднамеренно проглатывает, ухаживая за собой. Когда достаточно шерсти проглатывается и собирается в пищеварительном тракте вашей кошки, она образует «комок шерсти». Кошки с длинными волосами, чрезмерно линяющими или постоянно ухаживающими за собой склонны к образованию комков шерсти.

Вредно ли это для здоровья моей кошки?

Большинство комков шерсти безвредно кашляет ваша кошка и не представляет угрозы для ее здоровья. Шарики обычно выводятся через рвоту или через фекалии. Однако частые комки шерсти могут быть симптомом нарушения моторики желудочно-кишечного тракта, воспаления кишечной ткани или рака.

Обратитесь к ветеринару для осмотра, если ваша кошка:

• Рвота продолжается более суток
• Кажется, запор
• Страдает хронической диареей

Способы предотвращения комков шерсти

Вы можете уменьшить количество меха, которое ваша кошка глотает во время ухода за собой, регулярно расчесывая кошку.Это должно помочь предотвратить образование комков шерсти. Если у вашей кошки длинная шерсть, рекомендуется чистить ее ежедневно. (В некоторых случаях кошки с длинными волосами, которых не расчесывают достаточно часто, могут страдать от чрезмерно спутанной шерсти, с которой трудно справиться. Если волосы спутаны, их часто становится слишком трудно расчесывать, и может потребоваться бритье.)

Вы можете уменьшить количество меха, которое ваша кошка глотает во время ухода за собой, регулярно расчесывая кошку. Это должно помочь предотвратить образование комков шерсти.Если у вашей кошки длинная шерсть, рекомендуется чистить ее ежедневно. (В некоторых случаях кошки с длинными волосами, которых не расчесывают достаточно часто, могут страдать от чрезмерно спутанной шерсти, с которой трудно справиться. Если волосы спутаны, их часто становится слишком трудно расчесывать, и может потребоваться бритье.)

Есть варианты диеты для вашей кошки, которые также могут помочь снизить риск образования комков шерсти. Многие бренды коммерческого корма для кошек теперь включают формулы, которые помогают уменьшить образование комков шерсти и улучшить здоровье шерсти и кожи кошек.Кормление вашей кошки этими продуктами также может уменьшить линьку и увеличить потребление клетчатки вашей кошкой. Если вы не хотите менять рацион своей кошки, вы можете выбрать средство для волосяного комка или лубрикант, чтобы помочь кошке проводить шерстяной комок через пищеварительный тракт.

Еще одно простое и интересное решение — купить кошке новую игрушку. Это переключит внимание вашей кошки с ухода за ней на игру с новой игрушкой и даст возможность приятно провести время со своим питомцем.

Если ваша кошка страдает от частых комков шерсти, обратитесь к ветеринару, чтобы обсудить возможные варианты лечения, включая изменение рациона кошки.

от admin | 23 апр.2019 г. | Кошки

Не перекармливайте

«Ожирение — это наиболее распространенное заболевание, связанное с питанием кошек», — говорит Джо Бартжес, доктор медицинских наук, доктор философии Колледжа ветеринарной медицины Университета Теннесси. Владельцы кошек — обычная дурная привычка — слишком много кормить своих кошек. Кошкам нужно всего от 24 до 35 калорий на фунт массы тела каждый день. Это руководство является общей мерой и будет варьироваться в зависимости от уровня активности вашей кошки, состояния здоровья и общих потребностей в питании.Умные владельцы по душам поговорили со своим ветеринаром о диетических потребностях Fluffy и вместе предложили лучший выбор продуктов.

Необходимые аминокислоты

Если вы владелец кошки, придерживающийся своего вегетарианского режима здоровья, и хотите включить сюда своего пушистого друга, подумайте еще раз. Кошкам необходимы некоторые аминокислоты, которые содержатся только в мясе. Лишение домашней кошки мяса и мясных продуктов может свести к минимуму хорошее здоровье и создать условия или проблемы с последствиями на всю жизнь.Даже корм для собак не содержит всех аминокислот, которые необходимы кошкам. Длительное кормление кошек собачьим кормом может даже вызвать слепоту.

Домашняя еда

В качестве альтернативы коммерческому корму для кошек можно приготовить домашнюю диету для кошки, когда вы находитесь на кухне. Имейте в виду, что необходимо будет заранее обсудить с ветеринаром рекомендации по питанию и добавкам. Важно придерживаться сбалансированной по питательной ценности диеты, и для этого необходимо использовать рецепт, разработанный ветеринарным диетологом.Не добавляйте добавки, не входящие в рецепт. Интернет — это источник хороших рецептов на сайтах www.balanceit.com или www.petdiets.com. За символическую плату ветеринарный диетолог предоставит вам рецепт с использованием мяса и углеводов по вашему выбору. Для оптимального здоровья вашей кошке необходимо соблюдать рекомендуемые нормы питания. Любое обсуждение диеты вашей кошки должно также касаться ее возраста, состояния здоровья, уровня активности и прошлых предпочтений в еде.

Рациональная диета

«Самая большая ошибка людей — кормление кошек сухим кормом», — говорит Лиза А.Пирсон, DVM. Производители должны включать много ненужных углеводов, чтобы сделать корм для кошек сухим, что может способствовать увеличению веса и ожирению. Кошкам нужна диета с низким содержанием углеводов и высоким содержанием белка, чего можно добиться, если кормить кошку консервами. Если вы решили кормить кошку сухим кормом, добавляйте и влажный корм.

Старшие кошки

Проверяйте продукты, которыми вы кормите кошку, во время каждого визита к ветеринару. По мере того как ваш любимый питомец стареет и становится более или менее активным, его потребности в питании могут измениться.Чтобы поддерживать общее состояние здоровья и хорошего самочувствия, вашей кошке могут потребоваться изменения в ее рационе, например, ежедневное потребление большего или меньшего количества калорий или переключение питания. Кошкам также может потребоваться большее или меньшее количество определенных питательных веществ. Например, у кошек часто встречается заболевание почек, и исследования показали, что диета с низким содержанием фосфора и белка увеличивает время до обострения симптомов заболевания почек. В некоторых случаях ваш ветеринар может посоветовать добавки к продуктам, которые вы в настоящее время предоставляете.Работа вместе с вашим ветеринаром для долгосрочного здоровья и благополучия вашего питомца имеет решающее значение.

Всегда не забывайте обсуждать с ветеринаром уровень активности вашего питомца, его состояние здоровья и потребности в питании во время регулярных визитов в офис. Если у вас есть какие-либо вопросы о диете или самочувствии вашей кошки, или если вы хотите записаться на прием к одному из наших ветеринаров, не стесняйтесь звонить нам сегодня!

Введение

Введение

У всех млекопитающих одностороннее поражение периферической вестибулярной системы вызывает пост-пораженный вестибулярный синдром, состоящий из статических и динамических признаков.Статические признаки включают глазодвигательный дефицит (спонтанный горизонтальный нистагм) и постуральный дефицит (наклон головы, увеличение опорной поверхности тела), которые компенсируются в течение нескольких дней или недель, в то время как динамические признаки (асимметрия вестибуло-глазного рефлекса, нарушение функции равновесия) компенсируются. гораздо менее полно или в течение более длительного времени [1], [2], [3]. Сразу после односторонней вестибулярной потери ипсилатеральные вестибулярные ядра (VN) заглушаются, тогда как контралатеральные VN сохраняют активность в состоянии покоя.Со временем поведенческий дефицит улучшается и компенсируется во временном окне, которое приблизительно совпадает с восстановлением сбалансированной электрической активности между двумя сторонами [4]. Эта перебалансированная активность в ВН объясняется различными механизмами клеточной нейропластичности: молекулярными, нейрохимическими и нейрогормональными изменениями на пре- и постсинаптическом уровнях, изменениями чувствительности рецепторов, высвобождением нейромедиатора, прорастанием коллатералей аксонов, а также астроглиальными и микроглиальными реакциями [1]. ], [3], [5], [6], [7], [8].

В дополнение к этим механизмам пластичности мы продемонстрировали, что односторонняя вестибулярная нейрэктомия (УВН) у взрослой кошки индуцировала интенсивную пролиферацию клеток в деафферентированной ВН. Большинство реактивных новорожденных клеток выжили до одного месяца, дифференцировались в астроцитарные, микроглиальные клетки и ГАМКергические нейроны [9] и активно способствовали успешному восстановлению постуролокомоторных функций [10]. Такой механизм структурной пластичности после вестибулярной потери представляет особый интерес для понимания процесса вестибулярной компенсации и факторов, способствующих выражению реактивного нейрогенеза в поврежденном мозге взрослого человека.

Нейрогенез взрослых — это продолжающийся процесс, ограниченный двумя зонами в мозге здорового млекопитающего: субвентрикулярной зоной (SVZ) боковых желудочков и субгранулярной зоной (SGZ) зубчатой ​​извилины в гиппокампе. Патологические состояния, такие как болезнь Альцгеймера [11], болезнь Хантингтона [12], болезнь Паркинсона [13], судороги [14], инсульты [15], модулируют скорость нейрогенеза в SVZ и SGV. Более того, специфические поражения центральной нервной системы могут приводить к реактивному нейрогенезу даже в ненейрогенных зонах — в дорсальном блуждающем комплексе [16], в кортикоспинальном пути [17], в гипоталамусе [18], в коре головного мозга [19]. ], в полосатом теле [20].Детерминанты такого перехода от ненейрогенной к нейрогенной области все еще плохо известны [21], [22].

В этом исследовании мы сначала спросили, зависят ли механизмы пластичности, участвующие в восстановлении после вестибулярной потери, включая реакцию астронейрогенеза, от природы вестибулярного повреждения. Чтобы ответить на этот вопрос, мы создали три экспериментальные группы взрослых кошек, перенесших различные вестибулярные поражения: одна группа подверглась односторонней и обратимой блокаде вестибулярного входа интратимпанальной инъекцией тетродротоксина (ТТХ), вторая группа получила одностороннюю лабиринтэктомию (UL ) путем разрушения вестибулярных периферических рецепторов во внутреннем ухе, а у третьей группы была постганглионарная односторонняя вестибулярная нейрэктомия (УВН).Эти три модели вестибулярного поражения вызывают различные типы деафферентации ВН, которые должны вызывать разные реакции нейробиологической пластичности: внезапная и полная структурная и функциональная деафферентация после УФН (как при вестибулярном неврите и хирургии болезни Меньера), более прогрессивная и в основном функциональная деафферентация после УЛ (как в прием ототоксических препаратов, старение), преходящая и обратимая деафферентация после ТТХ (модель, более или менее близкая к доброкачественному пароксизмальному позиционному головокружению, ДППГ).Мы использовали бромдезоксиуридин (BrdU) в качестве маркера новорожденных клеток, глиальный фибриллярный кислый белок (GFAP) в качестве маркера астроцитов и глутаматдекарбоксилазу 67 (GAD67) в качестве индикатора ГАМКергического фенотипа. Наша рабочая гипотеза заключалась в том, что реакция нейрогенеза должна выражаться в основном после внезапной и острой вестибулярной потери (УВН). Методы иммуногистохимии служили для выявления как изменений экспрессии маркеров пластичности из существующих клеток, так и присутствия вновь образованных астроцитов и ГАМКергических нейронов.Вторая цель исследования состояла в том, чтобы определить, приводят ли эти три модели вестибулярной деафферентации к разным временным курсам восстановления поведения. С этой целью мы проанализировали компенсацию спонтанного вестибулярного нистагма и постуро-локомоторного синдрома (опорная поверхность, локомоторное равновесие) в зависимости от времени после вестибулярного повреждения. Наконец, это экспериментальное исследование широко открывает вопрос: выздоравливают ли пациенты с вестибулярной патологией разной этиологии с использованием разных механизмов пластичности?

Результаты Анализ пролиферации клеток

Как недавно было продемонстрировано [9], [10] контрольные животные не выявляли BrdU-положительные (BrdU ⁺ ) клетки во всем VN и вокруг субэпендимарного слоя четвертого желудочка, тогда как UVN индуцировал сильные и заметные клетки. распространение ограничено глухими VN.Количественная оценка клеток BrdU ⁺ в VN животных UVN воспроизводила паттерн экспрессии, аналогичный таковому в предыдущих исследованиях, с более сильной пролиферацией клеток в LVN и IVN, чем в MVN и SVN [9] (Рисунки 1A и 1B). Клеточная пролиферация началась через 1 день после UVN, достигла пика через 3 дня (+ 5671,14% в MVN, + 5605,88% в IVN, + 10536,36% в LVN и + 6454,62% ​​в SVN по сравнению с контролем), а затем снизилась. для достижения контрольных значений через 30 дней после УВН. Большинство новорожденных клеток, достигших пика в D3, выживали до 2 месяцев после UVN (рис. 1C) и интеграции функциональных сетей [10].Напротив, в группах односторонней лабиринтэктомии (UL) и TTX очень небольшое и незначительное количество клеток BrdU ⁺ было обнаружено в VN независимо от задержки после поражения (D1, D3, D7, D30 и D60) и рассматриваемая сторона (ипси- или контр-латеральная). Статистический анализ не выявил значительной разницы между этими тремя группами (TTX по сравнению с UL по сравнению с контролем).

10.1371 / journal.pone.0022262.g001 Рисунок 1 Реактивная пролиферация клеток зависит от характера вестибулярной деафферентации.

(A) Репрезентативные иллюстрации иммуноокрашивания 5-бром-2′-дезоксиуридином (BrdU) в деафференцированном MVN у контрольных кошек и у кошек, обследованных через 1, 3 и 30 дней после односторонней инъекции тетродотоксина (TTX), односторонней лабиринтэктомии (UL) , и односторонняя вестибулярная неврэктомия (УВН). Масштабная линейка: 100 мкм. (B) Количественная оценка. Кривые, иллюстрирующие средние значения (± SEM, вертикальные полосы) в деафференцированном VN у контрольных кошек и у кошек, подвергнутых TTX, UL и UVN и наблюдаемых через 1, 3, 7 и 30 дней после различных вестибулярных деафферентаций.* Обозначает значительные различия, оцененные с помощью ANOVA с последующим тестом Шеффе для всех VN (p <0,0001). (C) Выживание вновь сгенерированных клеток через 30 и 60 дней после UVN. Гистограммы, сравнивающие средние значения (± SEM) количества BrdU-иммунопозитивных клеток в деафферентированном VN через 3, 30 и 60 дней после UVN. BrdU вводили через 3 дня после УВН. * Значимые различия оценивались с помощью ANOVA с последующим тестом Шеффе (p <0,0001). Это сравнение служило для установления коэффициента выживаемости, специфичного для каждого VN.Показаны только значения, зарегистрированные на пораженной стороне. BrdU: 5-бром-2'деоксиуридин; D: день; IVN: нижнее вестибулярное ядро; LVN: латеральное вестибулярное ядро; MVN: медиальное вестибулярное ядро; СВН: верхнее вестибулярное ядро; ТТХ: тетродоксин; UL: односторонняя лабиринтэктомия, UVN: односторонняя вестибулярная неврэктомия. n = 4 животных в группе.

Экспрессия GAD67 в деафференцированных вестибулярных ядрах

Независимо от природы вестибулярной деафферентации, SVN не обнаруживает GAD67-иммунореактивных изменений.После UVN паттерн экспрессии GAD67 ⁺ усиливался в деафферентированных MVN, IVN и LVN для всех послеоперационных задержек. По сравнению с контролем количество клеток GAD67 ⁺ увеличилось на D1, достигло пика на D3 в LVN (+ 301,58% по сравнению с контрольной группой) и на D7 в MVN и IVN (+ 328,57% и + 458,26% соответственно. по сравнению с контрольной группой), а затем немного снизился, но все еще оставался значительно выше, чем в контрольной группе и группе ТТХ. На D60 после UVN количество клеток GAD67 ⁺ оставалось значительно высоким (p <0.0001). Для сравнения, UL привел к более незначительному увеличению количества клеток GAD67 ⁺ в D1 с пиком экспрессии в D3 (+ 295,91% в MVN, + 256,09% в IVN, + 215,09% в LVN по сравнению с контролем). На D7 количество клеток GAD67 ⁺ немного уменьшилось и осталось значительно высоким на D60 (Рисунок 2). После инъекции ТТХ количество GAD67-иммунореактивных клеток немного увеличилось в D1, достигло пика в D3 (+ 161,63% в MVN, + 142% в IVN и + 115,62% в LVN по сравнению с контролем) и постепенно снижалось в D7 до достичь контрольных значений в D30 для всех VN (рисунок 2B).Двойной иммуногистохимический анализ против BrdU и GAD67 выявил многочисленные клетки, совместно локализующие эти два маркера в группах UVN. Таким образом, большая часть новорожденных клеток, которые включали BrdU через 3 дня после УФН, дифференцировались в ГАМКергические нейроны и выжили до 2 месяцев, как было подтверждено с помощью конфокальной микроскопии (рис. 3 a, b, c). Напротив, совместная локализация иммуноокрашивателей BrdU и GAD67 не была обнаружена в VN групп кошек как TTX, так и UL при выбранной послеоперационной задержке, что свидетельствует об отсутствии новорожденных нейронов GAD67 в этих группах.

10.1371 / journal.pone.0022262.g002 Рисунок 2 Иммунореактивность декарбоксилазы глутаминовой кислоты (GAD67) по-разному выражается в зависимости от вестибулярного повреждения.

(A) Схематическое изображение, иллюстрирующее локализацию переднезадней (AP) оси, адаптировано из Атласа стреотаксиса Бермана (1968), где были сделаны микрофотографии медиальных вестибулярных ядер. PH: praepositus hypoglossi; SA: акустическая полоса; V4: четвертый желудочек. GAD67-иммунореактивные нейроны экспрессируются во всех вестибулярных ядрах.Иллюстрация иммунореактивности GAD67 в медиальном вестибулярном ядре (MVN) у репрезентативной контрольной кошки и у трех экспериментальных животных, обследованных через 3 и 30 дней после инъекции ТТХ, односторонней лабиринтэктомии (UL) или односторонней неврэктомии (UVN). (B) Количественная оценка эффектов природы вестибулярной деафферентации (TTX, UL или UVN) на GAD67-иммунореактивные нейроны в деафферентированных вестибулярных ядрах. Данные представляют собой средние значения (± SEM) количества GAD67-иммунореактивных нейронов в деафферентированных вестибулярных ядрах контрольных кошек и кошек в экспериментальных группах.Показаны только значения, зарегистрированные на пораженной стороне. Данные от обеих сторон контрольных кошек были объединены для прямого сравнения с подгруппами кошек с вестибулярной деафференцией. GAD67: декарбоксилаза глутаминовой кислоты, фермент синтеза ГАМК; D: день; IVN: нижнее вестибулярное ядро; LVN: латеральное вестибулярное ядро; MVN: медиальное вестибулярное ядро; СВН: верхнее вестибулярное ядро; ТТХ: тетродоксин; UL: односторонняя лабиринтэктомия, UVN: односторонняя вестибулярная неврэктомия. * р <0,0001; + р <0.01 по сравнению с контролем. Шкала: 90 мкм, n = 4 животных в группе.

10.1371 / journal.pone.0022262.g003 Рисунок 3 Вновь образованные клетки выживают и дифференцируются в ГАМКергические нейроны и астроциты исключительно после вестибулярной нейрэктомии.

Конфокальный анализ вновь образованных глутаматдекарбоксилазы (GAD) -67-иммунореактивных (Ir) нейронов (a, b, c) и вновь образованных глиальных фибриллярных кислых белков (GFAP) -иммунореактивных (Ir) клеток (d, e, f) в глухой MVN через 60 дней после УВН.BrdU вводили через 3 дня после перерезки нерва, и через 57 дней животных умерщвляли. BrdU-иммунореактивные клетки выделены красным цветом (b, c, e, f), а другие маркеры дифференцировки клеток — зеленым: GAD67 (a, c) и GFAP (d, f). Масштабные линейки представляют 50 мкм (a) и 10 мкм (e).

Экспрессия GFAP в деафферентированных вестибулярных ядрах

Мы обнаружили, что UVN обеспечивает самую сильную местную астроглиальную реакцию. Во всех деафферентированных VN количество клеток GFAP ⁺ сильно увеличилось с D1 до D30.Данные, зарегистрированные на 30-й день, были значительно выше, чем в контрольной группе (+ 443,15% в MVN; + 360,29% в IVN; + 287,66% в LVN; +381,07 в SVN; p <0,0001). Однако в D60 количество ячеек GFAP ⁺ вернулось к контрольным значениям. Обратите внимание, что среди VN деафферентированный SVN показал наибольшее количество ячеек GFAP ⁺ независимо от задержек после UVN. По сравнению с контрольной группой мы наблюдали, что после UL количество клеток GFAP ⁺ значительно увеличилось во всех деафференцированных VN с первого послеоперационного дня (D1), достигнув пика на D30 (+216.66% в MVN, + 341,28% в IVN, + 213,5% в LVN и + 187,14% в SVN по сравнению с контролем; p <0,0001), а затем достигли контрольных значений на D60 (рис. 4). Тем не менее инъекция ТТХ во внутреннее ухо привела к незначительному увеличению количества клеток GFAP ⁺ в ВН. Кроме того, поскольку вновь созданные клетки группы UVN были нейрохимически охарактеризованы двойным иммунофлуоресцентным окрашиванием, мы обнаружили, что среди множества новорожденных клеток, которые включали BrdU на D3, подмножество дифференцировалось в астроциты на D60, колокализируя маркеры BrdU и GFAP (рис. г, д, е).Напротив, не наблюдалось двойного иммуноокрашивания BrdU / GFAP в VN при выбранной послеоперационной задержке в группах TTX и UL, что свидетельствует об отсутствии вновь образованных астроцитов после этих двух видов вестибулярной деафферентации.

10.1371 / journal.pone.0022262.g004 Рисунок 4 Чем сильнее деафферентация, тем сильнее астроглиальная реакция.

(A) Астроглиальная реакция в области поражения была сильнее после перерезки вестибулярного нерва, чем после односторонней лабиринтэктомии или односторонней инъекции ТТХ.Иллюстрация иммунореактивности GFAP в деафферентированном медиальном вестибулярном ядре (MVN) у репрезентативной контрольной кошки и у трех экспериментальных кошек, подвергнутых TTX, UL и UVN и проанализированных через 30 дней после этих различных видов вестибулярной деафферентации. (B) Количественная оценка эффектов различных видов вестибулярной потери на GFAP-иммунореактивные клетки в деафферентированных вестибулярных ядрах (VN). Данные представляют собой средние значения (± SEM) количества GFAP-иммунореактивных клеток в деафферентированных вестибулярных ядрах контрольной и экспериментальной групп.Показаны только значения, зарегистрированные на пораженной стороне. Данные от обеих сторон контрольных кошек были объединены для прямого сравнения с подгруппами кошек с вестибулярной деафференцией. GFAP: глиальный фибриллярный кислый белок; D: день; IVN: нижнее вестибулярное ядро; LVN: латеральное вестибулярное ядро; MVN: медиальное вестибулярное ядро; СВН: верхнее вестибулярное ядро; ТТХ: тетродоксин; UL: односторонняя лабиринтэктомия, UVN: односторонняя вестибулярная неврэктомия. * p <0,0001 по сравнению с контролем. Шкала: 20 мкм, n = 4 животных в группе.

Поведенческий дефицит после вестибулярной деафферентации

У млекопитающих ведущим глазодвигательным эффектом вестибулярной деафферентации является высокочастотный, в основном горизонтальный, спонтанный нистагм с быстрой фазой, направленной в интактную сторону [23]. Пораженные животные также демонстрируют дисбаланс позы, искривление позвоночника по рысканью со средней точкой лопаточной кости и крестцом, направленным на пораженную сторону, кружение и перекатывание к пораженной стороне, разгибание контралатеральной передней конечности и головной нистагм [23].После деафферентации они принимают значительно увеличенную опорную поверхность, которая со временем уменьшается. Затем, когда они пытаются двигаться, они падают на пораженную сторону. Дефицит, наблюдаемый после односторонней вестибулярной деафферентации, был таким же после инъекции TTX, UL или UVN, но время восстановления различается в зависимости от тяжести повреждения.

Спонтанный нистагм

У животных наблюдался горизонтальный спонтанный нистагм независимо от характера вестибулярной деафферентации: инъекции ТТХ, UL или UVN (рис. 5А).Профиль компенсации глазного нистагма для групп TTX и UL достоверно не отличался: в первые сутки после деафферентации (D1) частота спонтанного нистагма составляла 9,5 и 10 ударов / 10 с соответственно. Оно постепенно уменьшалось с течением времени и достигло 1,5 и 3 ударов / 10 сек на третий день после деафферентации, а затем полностью исчезло на четвертый день. Напротив, после UVN временная динамика компенсации вестибулярного нистагма была отложена по сравнению с группами TTX и UL (p <0.0001). Частота нистагма составляла 15 ударов в секунду в первый день после УФН и линейно снижалась до полного исчезновения на восьмой день после УФН.

10.1371 / journal.pone.0022262.g005 Рисунок 5 Время восстановления поведения зависит от характера вестибулярного повреждения.

(A) Кривые, иллюстрирующие динамику (по оси абсцисс) исчезновения частоты горизонтального спонтанного нистагма (HSN) (по оси ординат) для каждой группы кошек с вестибулярной деафференцией в разные послеоперационные дни.Каждая точка данных представляет собой среднее количество быстрых фазовых движений HSN за 10 с для 4 животных (пять повторных измерений на животное на выборку). Планки погрешностей представляют SEM. (B) Кривые, показывающие среднее послеоперационное восстановление опорной поверхности в трех экспериментальных группах кошек (TTX, UL и UVN). Данные, записанные после вестибулярной деафферентации, были связаны с индивидуальными рекомендациями и нормализованы по отношению к дооперационным значениям, отнесенным к единице (одна близка к 50 см ² ).Стандартные ошибки среднего значения представлены вертикальными линиями. Обратите внимание на задержку во времени восстановления после UVN по сравнению с другими группами: 46 дней вместо 6 для TTX и 16 для UL групп. (C) Максимальная производительность (Max P) определяется как максимальная скорость вращения балки, которая не приводила к падению на четырех последовательных переходах. Кривые выражены в процентах от предоперационной максимальной производительности (по ординатам) как функция послеоперационного времени в днях (по абсциссе). Стандартные ошибки среднего значения представлены вертикальными линиями.

Восстановление функции осанки

У четвероногих животных, стоящих прямо, вестибулярный синдром приводит к увеличению опорной поверхности, ограниченной четырьмя подушечками лап. Этот параметр дает хорошую оценку устойчивости и восстановления позы. Он отображает тоническую асимметрию мышц-разгибателей и сгибателей передней и задней лап, вызванную вестибулярной деафферентацией [10], [24], [25]. Возврат к контрольным значениям, зарегистрированным до операции, был быстрее для группы TTX (6 дней), чем для группы UL (16 дней) или группы UVN (46 дней) (p <0.0001) (Рисунок 5B). Дисперсионный анализ (ANOVA) установил значимые эффекты в зависимости от групп (p <0,0001), послеоперационного времени (p <0,0001) и взаимодействия между этими двумя факторами.

Восстановление двигательного баланса

Как и в случае функции позы, животные из группы ТТХ показали наиболее быстрое восстановление динамического двигательного баланса. Они смогли пересечь вращающийся луч с максимальной производительностью (Max P) на 6-й день после деафферентации, тогда как кошки из группы UL достигли своего Max P через 14 дней после деафферентации (рис. 5C).В группе UVN кошкам удавалось ходить на вращающейся балке через 12–14 дней после операции, и они достигли своего максимального значения P только через 47 дней. Дисперсионный анализ восстановления функции локомоторного баланса (ANOVA) продемонстрировал значительные эффекты в зависимости от групп (p <0,0001), послеоперационного времени (p <0,0001) и взаимодействия между этими двумя факторами (p <0,0001).

Обсуждение Ответы нейрогенеза и астрогенеза в вестибулярных ядрах: структурный процесс, специфичный для модели вестибулярной деафферентации UVN

Мы впервые показываем, что VN становится нейрогенной зоной в ответ на специфическое вестибулярное повреждение: UVN привело к появлению большого количества новорожденных клеток в глухой ВН, как описано ранее в той же модели [9].Эти вновь созданные клетки выживали до двух месяцев, дифференцировались в ГАМКергические нейроны, астроциты или микроглиальные клетки и в дальнейшем способствовали тонкой вестибулярной компенсации [10]. Напротив, модель UL вызвала функциональную потерю вестибулярного входа и не показала никаких клеток BrdU ⁺ в комплексе VN. Односторонняя инъекция ТТХ во внутреннее ухо, которая вызывает временную и функциональную блокаду электрической активности ипсилатерального вестибулярного нерва, не приводила к какой-либо пролиферации клеток в ВН в разное проанализированное послеоперационное время.Одна из возможных гипотез, объясняющих реактивную пролиферацию клеток в VN после UVN, может заключаться в том, что новые клетки будут вносить вклад в нейрональный баланс между апоптозом и нейрогенезом, как в субгранулярной зоне. Тем не менее, похоже, что апоптотические клетки не были обнаружены в VN после UVN (метод TUNEL и иммуностимулирование каспазы 3, результаты не показаны). Кроме того, после перерезки вестибулярного нерва введение BrdU через 3 дня после UVN пометило новорожденные клетки, которые выжили до 2 месяцев и дифференцировались в ГАМКергические нейроны, астроциты или микроглиальные клетки.Соответственно, такие долгоживущие клетки нельзя рассматривать как умирающие клетки, и, следовательно, мечение BrdU не будет надежным для репарации ДНК или повторного входа в прерванный клеточный цикл умирающих клеток. Наконец, присутствие нестин-Ir клеток (маркер нервных стволовых клеток) в деафферентированном VN после UVN [9] и полная блокада пролиферации клеток в VN у кошек, которым вводили антимитотический препарат [10], убедительно свидетельствует о том, что BrdU Иммуномечение связано с митотической активностью, а не с событиями репарации ДНК или апоптоза.

Несколько исследований изучали существование реактивной пролиферации клеток в вестибулярных ядрах после вестибулярного поражения. Кампос-Торрес обнаружил увеличение клеток BrdU ⁺ после односторонней инъекции TTX или UL у крыс. Тем не менее, все эти клетки дифференцировались в глиальные клетки [6]. Совсем недавно Zheng et al. наблюдали также увеличение пролиферации клеток в комплексе вестибулярного ядра после двусторонней вестибулярной деафферентации у взрослых крыс [26]. Примерно половина вновь созданной популяции клеток выжила до 1 месяца в экспериментальной группе.Интересно, что они также обнаружили увеличение клеток BrdU ⁺ со значительной выживаемостью в группе ложной операции, предполагая, что это реактивное пластическое событие может не иметь функционального значения у крыс. Однако в этом исследовании природа клеток BrdU ⁺ не изучалась: выжившие новорожденные клетки могли дифференцироваться в глиальные клетки или, как предполагают авторы, быть частью микроглиальной реакции, уже описанной после вестибулярных поражений, и не обязательно. нейроны [6].Расхождение с нашими предыдущими данными [10] могло быть связано с видовыми различиями и / или характером операций: Zheng et al. практиковали двустороннюю аспирацию содержимого ампулы канала, а также матки и мешочка у крыс, тогда как у кошек мы односторонне перерезали черепной нерв VIII ^th .

В модели кошек UVN тяжесть деафферентации — общая и быстрая, структурная и функциональная — может вызывать модификации тканей, позволяющие клеточному микросреде переключаться из ненейрогенной области в нейрогенную.Это согласуется с идеей, что функция стволовых клеток модулируется в соответствии с физиологическими изменениями и потребностями [27]. Соответственно, реактивная пролиферация клеток, наблюдаемая в нашей модели кошек UVN, может быть частично связана с высокими концентрациями про- и / или противовоспалительных молекул, высвобождаемых быстрой дегенерацией вестибулярного нерва. Эта гипотеза подтверждается недавним исследованием, проведенным на крысиной модели полной односторонней вестибулярной потери, которое явно показало сильный воспалительный ответ [28].Известно, что в зависимости от патологических состояний воспалительные реакции могут участвовать в пролиферации, миграции, дифференцировке, выживании и включении новорожденных клеток в нейронные сети [29]. Мы полагаем, что, поскольку противовоспалительные цитокины имеют в основном прогенные эффекты [30], они могут быть основными игроками, влияющими на нейрогенную среду в нашей животной модели UVN. Из представленных данных можно сделать вывод, что природа и тяжесть вестибулярного повреждения могут способствовать специфическим модификациям ткани, что в то же время способствует нейрогенному потенциалу в деафференцированных ВН, что приводит к реактивному нейрогенезу и последующей функциональной интеграции новорожденных нейронов [31].

Экспрессия GAD67 в VN: обычная реакция, интенсивность которой зависит от характера вестибулярного повреждения.

Результаты показали, во-первых, что количество клеток GAD67 ⁺ увеличилось в деафферентированном VN после вестибулярных повреждений, а во-вторых, повышенная экспрессия GAD67 зависела от характер вестибулярного поражения. Независимо от дней после поражения, мы обнаружили, что UVN индуцировал более сильную и длительную экспрессию GAD67, чем UL. Инъекция ТТХ запускала самую слабую и самую временную экспрессию GAD67.Интенсивная экспрессия GAD67, наблюдаемая после UVN, частично обусловлена ​​дифференцировкой вновь сгенерированных клеток в ГАМКергические нейроны и из уже существующих ГАМКергических нейронов, повышая уровень их синтезирующего фермента. Интересно, что сильное увеличение варикозного расширения вен, окрашенного ГАМК, также наблюдалось в деафферентированной ВН после УФН. Этот результат предполагает трофический эффект ГАМК через активацию рецепторов ГАМК _А , наделенных возможными нервными стволовыми клетками [32]. Действительно, известно, что ГАМК обеспечивает дифференцировку новорожденных клеток в нейронную линию и способствует разрастанию нейритов во время развития и нейрогенеза взрослых [33].

Различные паттерны экспрессии GAD67, наблюдаемые в трех экспериментальных группах, имели профили продолжительность-время, которые совпадали с временными курсами восстановления поведения, наблюдаемыми в каждой модели вестибулярного поражения. ГАМК и два ее рецептора ГАМК _А и ГАМК _В , как известно, координируют вестибулярные пути и восстанавливают вестибулярные функции [34]. Инъекции или инфузии антагонистов GABA _A ускоряют восстановление осанки у животных с вестибулярной деафференцией, в то время как агонисты GABA _A имеют противоположные эффекты [35], [36].Интересно, что в соответствии с результатами Tighilet и Lacour [37], которые наблюдали двустороннее усиление экспрессии GAD67 в VN через год после UVN, мы также наблюдали двустороннее усиление экспрессии GAD67 в VN уже через два месяца после UVN. На поведенческом уровне вестибулярная компенсация в это время завершилась для большинства вестибулярных симптомов. Поскольку восстановление глазодвигательной функции происходит быстрее, чем восстановление постуро-локомоторного движения, и зависит от различных механизмов пластичности, мы предполагаем, что эта двусторонняя повышенная экспрессия GAD67 будет пластическим нейрохимическим механизмом, участвующим в постуро-локомоторном восстановлении и его долгосрочном поддержании.В соответствии с этим, хроническая инфузия антагонистов рецептора GABA _A в деафферентированную VN вестибуло-поврежденных морских свинок изменяла выражение постуральных симптомов без изменения глазодвигательного дефицита [36]. Более того, антимитотические препараты, которые блокируют реактивную пролиферацию клеток после УФН, резко задерживают только постуролокоморные функции и не влияют на горизонтальный нистагм [10]. Восстановление баланса разряда в покое в ВН, вероятно, включает снижение эффективности рецепторов GABA _A и GABA _B на интактной стороне и увеличение возбудимости нейронов на стороне повреждения [38], [39], [40].Эти механизмы согласуются с электрофизиологическими данными, показывающими спонтанный дисбаланс активности покоя между гомологичным VN на острой стадии после вестибулярного повреждения, который восстанавливается на компенсаторной стадии у тревожной морской свинки [41] и кошки [42]. Различные нейрохимические и электрофизиологические события могли иметь место в VN групп TTX и UL, которые выражали разные скорости экспрессии GAD67 и более быстрое восстановление вестибулярной функции, чем группа UVN. Можно предложить другие гипотезы, объясняющие вклад ГАМКергической системы в восстановление вестибулярных функций.Как описано ранее [9], [10], новорожденные ГАМКергические нейроны VN могут интегрировать нейронные сети и контактировать с разными мишенями нейронов в VN, чтобы восстановить баланс активности покоя между гомологичными VN. Альтернативная гипотеза состоит в том, что вестибулярное повреждение повторяет процессы развития, приводя к изменению экспрессии катион-хлорид-котранспортеров в деафферентированном VN. Поскольку экспрессия котранспортеров хлорида катионов регулирует внутриклеточную концентрацию Cl ^–, когда ГАМК нацелена на свой рецептор GABA _A , это может привести к деполяризующему эффекту в незрелых нейронах за счет экструзии Cl ^– в клетку [43], [44] .Оба механизма восстановят активность покоя глухой VN, способствуя вестибулярной компенсации.

Экспрессия GFAP в VN: необычный ответ на вестибулярное повреждение.

UVN обеспечивает интенсивную астроглиальную реакцию в деафферентированной VN от D1; впоследствии повышенная экспрессия GFAP достигла пика на D30 и вернулась к контрольному уровню на D60. Наши результаты также показали, что UL обеспечивает более слабую астроглиальную реакцию, достигающую максимума на 30-й день в глухой VN. Кроме того, односторонняя инъекция ТТХ не изменяла экспрессию GFAP в VN независимо от наблюдаемой временной задержки.Эти данные согласуются с результатами, полученными на крысах, которые показали отсутствие астроглиальной реакции в ВН после транстимпанической инъекции ТТХ и астроглиальной реакции после УЛ [6]. Авторы предположили, что в отличие от инъекции TTX, индуцированная UL астроглиальная реакция будет способствовать экспрессии про- и / или противовоспалительных молекул, таких как цитокины, которые, как известно, регулируют различные стадии глиоза после центральных или периферических повреждений [45]. Следовательно, UVN вызывает более острую и более быструю дегенерацию нервов, чем UL, что может объяснить более интенсивную экспрессию GFAP.В соответствии с гипотезой Campos-Torres (2005), мы предполагаем, что UVN и, следовательно, острый нервный участок будут задействовать астроциты и микроглию, чтобы управлять воспалительной реакцией. Через два месяца после UL и UVN GFAP ⁺ в ВН вернулся на контрольный уровень, вероятно, потому, что воспалительный процесс прекратился. Согласно обзору Робеля [46], наши результаты согласуются с динамикой астроглиальной реакции, наблюдаемой после различного рода повреждений центральной нервной системы. После повреждения астроциты начинают проявлять гистологические и ферментативные изменения, такие как повышенный синтез промежуточных филаментов GFAP и соматическая гипертрофия, которые зависят от характеристик и интенсивности повреждения [47].Поскольку известно, что астроциты регулируют ионный гомеостаз для оптимальной нервной среды, они приспосабливаются к тяжести поражения. Кроме того, Робель описал, что при тяжелых травмах некоторые реактивные астроциты могут пролиферировать и включать BrdU, как мы наблюдали в деафферентированной VN после UVN [46]. Аналогичным образом, авторы также указывают, что в месте повреждения реактивные астроциты могут быть источником клеток с потенциалом стволовых клеток. Таким образом, после UVN астроциты, расположенные в VN, могут быть проинструктированы специфическими острыми сигналами, чтобы активировать нейрогенные особенности, позволяющие впоследствии пролиферацию клеток, выживание нейронов и дифференцировку вновь образованных клеток.

Поведенческие корреляты и клинические последствия

Тот же самый острый поведенческий синдром был обнаружен у трех групп кошек после односторонней вестибулярной деафферентации либо инъекцией ТТХ во внутреннее ухо, либо UL, либо UVN. Тем не менее, паттерны восстановления глазодвигательных и постуро-локомоторных функций различались в зависимости от группы, причем быстрее всего в группе TTX (1 неделя), чем в группе UL (2 недели) или группе UVN (6 недель). Это означает, что природа вестибулярной деафферентации вызывает разное время функционального восстановления; чем тяжелее и острее деафферентация, тем больше продолжительность вестибулярной компенсации.Действительно, ВН на пораженной стороне после УФН подвергаются быстрой, внезапной и полной деафферентации, как структурной, так и функциональной (как хирургия болезни Меньера, вестибулярного неврита) [3], [48]. Напротив, когда сенсорные волосковые клетки в периферическом лабиринте разрушаются (UL), VN не показывает столь быструю и полную структурную деафферентацию, потому что первичные вестибулярные нейроны в ганглии Скарпы все еще живы. ВН имеют только функциональную глухоту, и этот процесс может быть очень прогрессивным и медленным или более быстрым, в зависимости от этиологии.В этом случае для выздоровления не требуется сложных структурных механизмов, таких как нейрогенез. Повышенной экспрессии нейротрансмиттеров, нейрогормонов и / или нейротрофических факторов достаточно, чтобы избежать апоптоза вестибулярных клеток и ускорить функциональное восстановление [3]. Наконец, блокада ТТХ потенциалов действия вестибулярного нерва обратимым образом и на короткое время сопровождается очень быстрым восстановлением. Соответственно, наблюдалась только слабая и временная повышенная экспрессия GAD67.Мы предполагаем, что центральной нервной системе нет необходимости выражать надежные механизмы пластичности при таких преходящих и / или обратимых нарушениях.

В заключение мы впервые показываем in vivo, что вестибулярные ядра могут стать нейрогенной зоной в определенных условиях. В зависимости от природы вестибулярного повреждения в процессе восстановления участвуют разные и более или менее специфические механизмы клеточной пластичности, и эти механизмы восстановления лежат в основе различных периодов времени восстановления.Эти новые данные представляют интерес для подходов к восстановлению мозга для понимания факторов, способствующих выражению функционального нейрогенеза у взрослых млекопитающих. Более того, они имеют клиническое значение при вестибулярной патологии как для медикаментозного лечения, так и для реабилитации пациентов с вестибулярной потерей различной этиологии.

Материалы и методы Этическое заявление

Все эксперименты проводились в строгом соответствии с Руководством Национального института здравоохранения по уходу и использованию лабораторных животных (Публикация NIH № 80–23), пересмотренным в 1996 г. для Закона Великобритании о животных (научные процедуры) 1986 г. и связанным с ним. руководящие принципы или Политика этики, одобренная Обществом нейробиологии в ноябре 1989 г. с поправками, внесенными в ноябре 72 г. 1993 г.От институционального наблюдательного совета или этического комитета не требуется одобрять исследования на животных во Франции. Люди, проводящие эксперименты на животных, имеют лицензии (ML: A13055-25,01.1914; BT: A13055-75 25,13.363). Были предприняты все попытки свести к минимуму количество и страдания животных, использованных в этом эксперименте. Кошек содержали в большом замкнутом пространстве с нормальным дневным светом и свободным доступом к воде и пище.

Операции Односторонняя вестибулярная неврэктомия

Животных анестезировали кетамином (20 мг / кг, т.м .; Rhône Poulenc, Mérieux, Франция), получавших анальгетик (толфедин, 0,5 мл, в / м; Vetoquinol, Lure, Франция), и их поддерживали при физиологической температуре тела с использованием одеяла. Вестибулярный нерв был разрезан слева на постганглиозном уровне, чтобы оставить слуховой отдел интактным после мастоидэктомии, частичного разрушения костного лабиринта и хирургического воздействия на внутренний слуховой проход [49]. Животных содержали под антибиотиками в течение 7 дней и анальгетиками в течение 3 дней.Классический постуральный, локомоторный и глазодвигательный дефициты, проявляющиеся у животных в дни после перерезки нерва, использовали в качестве критериев, указывающих на эффективность поражения вестибулярного нерва. Полнота перерезки вестибулярного нерва оценивалась гистологическими методами в предыдущих исследованиях [50].

Односторонняя лабиринтэктомия

Целью односторонней лабиринтэктомии (UL) было удаление всех вестибулярных сенсорных областей. Хирургическая лабиринтэктомия выполнялась с тем же подходом, что и при УВН.После удаления косточек и снятия их напрягающих мышц все вестибулярные рецепторы в полости внутреннего уха были разрушены алмазным сверлом. Затем полость закрыли губкой и зашили кожу.

Односторонняя инъекция тетродотоксина (TXX)

TTX использовалась для временной блокировки потенциалов действия и отключения вестибулярного нерва [6], [51]. Операцию проводили с использованием операционного микроскопа в соответствии с описанным выше подходом. Когда в левом барабанном пузыре животных были круглые и овальные окна, вестибулярные афференты блокировались инъекцией в окна 150 мкл 3 мМ ТТХ (Tocris, Cookson Ltd, Бристоль, Великобритания), разведенного в фосфатном буфере (PB 0.1 М, pH 7,4). Эта доза ТТХ вызвала блокировку нервной деятельности на 3 дня.

Дизайн исследования

Чтобы определить влияние различных моделей вестибулярной деафферентации как на механизмы пластичности на клеточном уровне в ВН, так и на динамику восстановления кошек на поведенческом уровне, мы изучили восемь групп животных. Основываясь на наших предварительных данных, для изучения динамики реактивной пролиферации клеток в ВН после УФН мы выбрали пять периодов выживания после деафферентации: 1, 3, 7, 30 и 60 дней (D1, D3, D7, D30 и D60) (Рисунок 6).i) Группу ложнооперированных животных (n = 4) использовали в качестве контрольной группы; они были подвергнуты анестезии и хирургическому вмешательству с различными вестибулярными деафферентациями без перерезки нерва или разрушения рецепторов. Эти ложные животные были убиты в разные периоды выживания: двое через три дня и двое через один месяц. Все они получили внутрибрюшинную инъекцию BrdU за 3 часа до умерщвления. ii) животные, перенесшие одностороннюю вестибулярную нейрэктомию (группа UVN: всего n = 20), умерщвленные в D1 (n = 4), D3 (n = 4), D7 (n = 4), D30 (n = 4) и D60 (n = 4 эти кошки также использовались для поведенческого исследования, поскольку мы показали, что курс обучения на вращающейся балке не вызвал изменений пролиферации клеток в ВН [10]).iii) животные, перенесшие одностороннюю лабиринтэктомию (UL) (группа UL: всего n = 20), были умерщвлены в следующие послеоперационные дни: D1 (n = 4), D3 (n = 4), D7 (n = 4), D30. (n = 4) и D60 (n = 4 как для клеточных, так и для поведенческих исследований). iv) животные, которым вводили одностороннюю инъекцию тетродротоксина (ТТХ) во внутреннее ухо (группа ТТХ: всего n = 20), были умерщвлены в разные послеоперационные дни для клеточного исследования: D1 (n = 4), D3 (n = 4), D7 (n = 4), D30 (n = 4) и D60 (n = 4 как для клеточных, так и для поведенческих исследований).Для изучения динамики реактивной пролиферации клеток, независимо от экспериментальных групп, животные, принадлежащие к D1, D3, D7, D30 и D60 послеоперационным дням, получали 5-бром-2′-дезоксиуридин (BrdU) за 3 часа до смерти, чтобы исследуют наличие клеток взрослого новорожденного в ВН. Чтобы изучить выживаемость и дифференцировку пролиферирующих клеток в VN, две дополнительные группы кошек были подвергнуты UVN, которым инъецировали BrdU (ip) в D3, когда пролиферация клеток достигла своего пика, и убили через 30 дней (n = 4). и 60 дней (n = 4) после УВН (рис. 6).

10.1371 / journal.pone.0022262.g006 Рисунок 6 Дизайн исследования.

Экспериментальный протокол, разработанный для изучения влияния трех видов вестибулярной деафферентации (инъекция тетродотоксина, односторонняя лабиринтэктомия или односторонняя вестибулярная неврэктомия) на пролиферацию клеток (маркер BrdU), астрогенез (маркер GFAP) и иммуноокрашивание ГАМК (маркер GAD67) в вестибулярные ядра в разные послеоперационные дни. Влияние этих трех видов вестибулярной деафферентации на функциональное восстановление было проанализировано во всех группах с помощью глазодвигательных и постуро-локомоторных тестов.Модели UL, UVN и TTX воспроизводят постепенную, внезапную и временную одностороннюю потерю вестибулярной функции, соответственно, и предназначены для имитации различных вестибулярных патологий или заболеваний (см. Текст). ТТХ: тетродоксин; UL: односторонняя лабиринтэктомия, UVN: односторонняя вестибулярная неврэктомия; GAD67: декарбоксилаза глутаминовой кислоты, фермент синтеза ГАМК; GFAP: глиальный кислый фибриллярный белок; BrdU: 5-бром-2’деоксиуридин; внутрибрюшинно: внутрибрюшинно.

Поведенческие исследования Спонтанное восстановление нистагма

Для регистрации нистагма через день после операции кошку поместили на аппарат с фиксированной головой, таким образом поддерживая горизонтальные полукруглые каналы в горизонтальной плоскости.Частоту HSN измеряли на свету как количество быстрых фазовых ударов в сторону контралатеральной стороны относительно UVN за 10 секунд (пять повторных измерений на животное за время выборки) с помощью видеокамеры (Sony HDV) [25].

Восстановление осанки

Измерение опорной поверхности служит для оценки устойчивости осанки животного. Дефицит осанки и восстановление оценивали путем измерения поверхности, ограниченной четырьмя лапами кошки, стоя прямо в состоянии покоя, без ходьбы.Опорная поверхность может рассматриваться как хорошая оценка контроля позы, поскольку она отражает поведенческую адаптацию кошки, компенсирующую статический вестибулоспинальный дефицит, вызванный вестибулярным поражением [ср. 24]. Как правило, поверхность у нормальной кошки была очень маленькой (около 50–100 см ² ) и значительно увеличивалась в первые дни после одностороннего вестибулярного поражения. Для количественной оценки опорной поверхности кошек помещали в устройство с градуированным прозрачным полом, которое позволяло фотографировать снизу.Для каждой тестируемой кошки в каждый послеоперационный период проводилось пять повторных измерений, и для каждой экспериментальной сессии рассчитывалось среднее значение. Опорную поверхность измеряли как поверхность, ограниченную четырьмя опорами, с помощью системы анализа изображений (холст, 9 ™, программное обеспечение Deneba, Майами, Флорида). Данные, записанные после вестибулярного поражения, сравнивали со значениями до повреждения с использованием индивидуальных эталонов, то есть каждое животное действовало как собственный контроль.

Восстановление функции равновесия

Функция равновесия опорно-двигательного аппарата была определена количественно с использованием экспериментального устройства с вращающейся балкой [49].Два отсека (0,5 × 0,6 × 0,5 м) были соединены горизонтальной балкой (длина: 2 м; диаметр: 0,12 м). Балка, размещенная на высоте 1,2 м от земли, могла вращаться вдоль своей продольной оси с постоянной угловой скоростью в диапазоне от 0 ° до 588,4 ° / с (около 1,5 об / с). Поведенческая тренировка на вращающейся балке заключалась в лишении животных пищи за 12 ч до первой тренировки. Животные были подготовлены к переходу через луч и были вознаграждены небольшим кусочком рыбы (или мяса), помещенным в небольшую миску в целевом отсеке.Первые пересечения были сделаны на неподвижной балке, а затем и на вращающейся балке. Как правило, скорость вращения балки постепенно увеличивалась после четырех последовательных испытаний без падения. Таким образом, функция равновесия была определена количественно путем измерения максимальной скорости вращения луча, которая не приводила к падению. Эта максимальная скорость вращения определяет максимальную эффективность баланса опорно-двигательного аппарата (Max. P.). Предоперационная тренировка на вращающейся балке требовала от 6 до 10 тренировочных периодов по 1 час в день, в зависимости от кошек.Тренировки были остановлены, когда коты Макс. P. был достигнут и стабилизирован на самом высоком уровне, который оказался удивительно похожим для разных кошек.

Статистический анализ

Статистический анализ состоял из дисперсионного анализа (ANOVA) для проверки изменений в спонтанном нистагме, опорной поверхности и максимальном равновесии кошек при различных задержках после повреждения. Результаты считались достоверными при p <0,05. (Таблица 1).

10.1371 / journal.pone.0022262.t001 Таблица 1 Статистический анализ влияния трех вестибулярных деафферентаций на вестибулярную компенсацию на поведенческом уровне.

Источник изменения	df	F	-П
Горизонтальный нистагм
Группа (УВН / УЛ / ТТХ)	2	372.93	0,0001 *
Послеоперационный период	9	982,15	0,0001 *
Группа × послеоперационный период	18	74,05	0,0001 *
Осанка
Группа (УВН / УЛ / ТТХ)	2	1197.83	0,0001 *
Послеоперационный период	24	720,20	0,0001 *
Группа × послеоперационный период	48	145,99	0,0001 *
Функция равновесия
Группа (УВН / УЛ / ТТХ)	2	262.50	0,0001 *
Послеоперационный период	21	203,04	0,0001 *
Группа × послеоперационный период	42	43,59	0,0001 *

Многократный дисперсионный анализ горизонтального спонтанного нистагма, восстановления осанки и восстановления функции равновесия.Группа (кошки с односторонней вестибулярной нейрэктомией по сравнению с кошками с односторонней вестибулярной лабиринтэктомией по сравнению с кошками с тетродотоксином) и период выживания являются основными фиксированными эффектами, обеспечивающими источники различий между кошками, что также иллюстрируется значительным взаимодействием между этими двумя переменными (*).

df: степень свободы; F: тест Шеффе; П: Уровень вероятности.

Клеточные исследования Препарат ткани

BrdU (10 мг / мл, Sigma, Saint Quentin Fallavier, Франция) растворяли в растворе хлорида натрия (NaCl) 0.9% нагревают до 56 ° C и вводят животным (200 мг / кг). Cameron и McKay (2001) показали на зубчатой ​​извилине взрослых крыс, что однократная доза BrdU 100, 50 или 25 мг / кг (масса тела, внутрибрюшинно) пометила 60%, 45% и 8% клеток S-фазы соответственно [52] . В дозе 300 мг / кг BrdU метил большинство клеток в S-фазе и не имел физиологических побочных эффектов. Итак, в соответствии с выводами Taupin (2007), 200 мг / кг — это насыщающая концентрация BrdU для изучения нейрогенеза у взрослых [53]. Дозы BrdU вряд ли вызвали побочные эффекты, но были достаточными для маркировки клеток в S-фазе, синтезирующей ДНК.Кошек каждой группы подвергали глубокой анестезии дигидрохоридом кетамина (20 мг / кг, внутримышечно, Мериаль, Лион, Франция) и умерщвляли перфузией параформальдегида через 3 часа, 27 дней или 57 дней после инъекции BrdU в соответствии с их экспериментальной группой. После извлечения из черепа мозг был разрезан на несколько блоков, содержащих ВН. Блоки быстро замораживали газом CO ₂ и хранили при -80 ° C. Коронковые срезы (толщиной 40 мкм) вырезали в криостате (Leica, Reuil-Malmaison, Франция) для иммунохимии.

Иммунохимия

Иммунохимическое мечение BrdU-иммунореативных (Ir) клеток проводили в соответствии с ранее утвержденными протоколами [9], [54]. Для иммуноокрашивания BrdU свободно плавающие срезы сначала промывали в 0,1 M PBS и инкубировали с 2 н. HCl и 0,5% Triton-X100 в PBS (30 мин, 37 ° C) для гидролиза ДНК. Затем срезы промывали в 0,1 М буфере тетрабората натрия, pH 8,5 перед инкубацией в течение ночи с первичным антителом при 4 ° C, с последующей инкубацией со вторичным антителом в течение 1.5 ч при комнатной температуре и визуализировали с использованием пероксидазы хрена авидин-D (Vector). Анализы иммунореактивности GFAP и GAD67 проводили согласно Tighilet, Brezun et al. [9]. После нескольких промывок срезы помещали на покрытые желатином предметные стекла, обезвоживали и покрывали покровной средой Depex для окрашивания пероксидазой. Срезы, окрашенные двойной иммунофлуоресценцией, инкубировали с GFAP или GAD67 в сочетании с протоколом BrdU ⁺ . Оптимальные разведения антител и процедуры окрашивания описаны в таблице 2.Дифференциацию вновь образованных клеток анализировали с помощью анализа двойной метки, выполненного с использованием конфокальной визуализации с помощью лазерного сканирующего микроскопа Leica TCS SP2, оснащенного масляной иммерсионной линзой с числовой апертурой 63x / 1,32. Затем поля зрения исследовали с помощью конфокальной микроскопии и получали Z-серии с шагом 1 мкм.

10.1371 / journal.pone.0022262.t002 Таблица 2 Антитела и методы обнаружения.

Маркер	Первичное антитело	Вторичное антитело	Техника — окраска
Брду	Мышь 1/100, Dako	Лошадь антимышь 1/200, Вектор	DAB — коричневый
GFAP	Кролик 1/200, Дако	Козий антикроличий 1/200, Вектор	DAB — коричневый
GAD67	Мышь 1/10000, Chemicon	Лошадь антимышь 1/200, Вектор	DAB — коричневый
БрдУ	Крыса 1/100, Оксфорд Биот	Кролик антикрысиный 1/200, Интерхим	Alexa Fluor 594 — красный
GFAP	Кролик 1/200, Дако	Козья антикроличья 1/200, Интерхим	AlexaFluor 488 — зеленый
GAD67	Мышь 1/100, Chemicon	Кролик антимышь 1/200, Interchim	Alexa Fluor 488 — зеленый

Комбинация и последовательная обработка первичных и вторичных антител, используемых для иммуногистохимического и двойного иммунофлуоресцентного окрашивания на BrdU, GFAP или GAD67.

Подсчет клеток и статистический анализ

Подсчет клеток выполняли в соответствии с ранее утвержденным протоколом [10]. Большое внимание уделялось тому, чтобы клетки крови не считались клетками BrdU ⁺ . ВН были идентифицированы с помощью стереотаксического атласа Бермана. BrdU ⁺ , GFAP ⁺ и GAD67 ⁺ были количественно определены для каждого VN (медиального, нижнего, верхнего и латерального вестибулярных ядер: MVN, IVN, SVN и LVN соответственно) из выбранных серийных фронтальных срезов, собранных из спинной (5.2) к каудальной (12.1) части ствола мозга и в зависимости от размера и от рострокаудальной длины каждой VN. Клетки GFAP ⁺ и BrdU ⁺ и нейроны GAD67 ⁺ были проанализированы в каждой VN с обеих сторон (слева / справа: кошки с ложной операцией; ипсилатеральные / контралатеральные: кошки с поражением UVN, см. Дополнительную информацию). Мы решили проанализировать подразделения VN вместо анализа всего набора ядер, потому что i) эти маркеры по-разному экспрессируются в VN после UVN.ii) ВН по-разному вовлечены в процессы вестибулярной компенсации. SVN, структура, в основном участвующая в глазодвигательной функции, не проявляет нейрогенеза. Напротив, большое количество новорожденных нейронов наблюдалось в MVN, LVN и IVN, которые в основном связаны со статическими и динамическими постуральными функциями.

Поскольку астроциты иммуноокрашивают ГАМК-синтезирующий фермент GAD67 [55], мы следовали строгим морфологическим критериям, чтобы отличить GAD-положительные нейроны от астроцитов.Хотя обычно легко отличить нейроны большого и среднего размера от глиальных клеток, различие между маленькими нейронами и большими глиальными клетками может быть сложной задачей. Следующие критерии были использованы в качестве характерных для нейронов: центрально расположенное ядрышко, отчетливое ядро, видимая цитоплазма, наличие дендритных отростков и больший размер тела клетки. Глиальные клетки идентифицировали по следующим критериям: разреженная цитоплазма и меньший размер клеточного тела [56].

Подсчет клеток производился с помощью микроскопа Nikon (Eclipse 80 i), оснащенного моторизованным чувствительным предметным столиком X-Y-Z и видеокамерой, подключенной к компьютеризированной системе анализа изображений (Mercator; Explora Nova, Ла-Рошель, Франция).Общее количество иммуномеченых клеток оценивали с помощью метода оптического фракционирования [57]. BrdU ⁺ , GFAP ⁺ и GAD67 ⁺ были подсчитаны в оптических дефектоскопах и взяты образцы в соответствии с так называемыми принципами фракционирующего устройства. Оптический фракционатор представляет собой комбинацию оптического дисектора, трехмерного зонда, используемого для подсчета, и фракционирующего устройства для отбора проб, схемы, включающей зондирование известной фракции ткани [57]. В методе оптического фракционирования используются три фракции отбора проб.Во-первых, фракция выборки срезов (ssf) представляет собой долю микроскопических срезов всей структуры мозга, подвергнутой последовательным сечениям, которые отбираются для оценки. Доля площади выборки (asf) соответствует доле площади сечения, которая исследуется в пределах отобранных сечений. И, наконец, фракция выборки толщины (tsf) захватывает часть исследуемой площади поперечного сечения выбранных сечений. Расчетное общее количество частиц (N) в структуре мозга животного получается путем умножения обратных величин фракций на общее количество частиц (∑Q ^— ) на структуру мозга, полученное с помощью оптических дисекторов [58]: N = ∑Q ^— (1 / тсф) (1 / тсф) (1 / тсф).Размер области интереса (ROI) неявно определяется из комбинации этих фракций. Это означает, что при использовании метода оптического фракционирования не требуется никакой информации о размере ROI или увеличении микроскопа. Это также означает, что этот метод подсчета не зависит, например, от набухание и / или усадка ткани во время обработки [59], [60]. Для каждой маркировки систематически отбирали количественно определенные срезы с шагом размера 480 мкм вдоль переднезадней оси.Мы считали только Ir-клетки в фокусе в пределах высоты диссектора (10 мкм) и в пределах рамки счета, не касаясь запрещенных линий [10]. Соответственно, статистические анализы были оценены с помощью ANOVA для проверки эффектов группы (контроль, TTX, UL или UVN), стороны (деафферентированная или интактная) и структуры (MVN, IVN, LVN, SVN) на BrdU-, GFAP- и GAD67-положительные клетки и определить, были ли какие-либо взаимодействия между этими переменными. После ANOVA был проведен апостериорный анализ с тестом Шеффе (StatView II, SAS Software Inc., Кэри, Северная Каролина) (Таблица 3). Коэффициент ошибки (CE) расчетного количества клеток BrdU ⁺ , GAD67 ⁺ и GFAP ⁺ в ипсилатеральном и контралатеральном VN имитации и экспериментальных групп для каждого протестированного периода выживания приведен в таблицах. S1, S2 и S3 во вспомогательной информации. Значения CE были в допустимых пределах, как описано в более раннем исследовании [57].

10.1371 / journal.pone.0022262.t003 Таблица 3 Статистический анализ эффектов трех вестибулярных деафферентаций на иммунные метки BrdU, GFAP и GAD на клеточном уровне.

Источник изменения	df	F	-П
BrdU-положительные клетки
Группа (Controls / UVN / UL / TTX)	3	394.67	0,0001 *
Вестибулярные ядра	3	5,87	0,0005 *
Группа × Вестибулярные ядра	9	8,08	0,0001 *
Сторона	1	247.13	0,0001 *
Группа × Сторона	3	400,71	0,0001 *
Боковые × Вестибулярные ядра	3	5,04	0,001 *
Группа × Боковые × Вестибулярные ядра	9	8.10	0,0001 *
GAD67 положительные клетки
Группа (Controls / UVN / UL / TTX)	3	2214,97	0,0001 *
Вестибулярные ядра	3	1707.44	0,0001 *
Группа × Вестибулярные ядра	9	242,43	0,0001 *
Сторона	1	10827,04	0,0001 *
Группа × Сторона	3	2375.57	0,0001 *
Боковые × Вестибулярные ядра	3	1296.03	0,0001 *
Группа × Боковые × Вестибулярные ядра	9	289,97	0,0001 *
GFAP-положительные клетки
Группа (Controls / UVN / UL / TTX)	3	1689.38	0,0001 *
Вестибулярные ядра	3	432,71	0,0001 *
Группа × Вестибулярные ядра	9	94,03	0,0001 *
Сторона	1	2285.80	0,0001 *
Группа × Сторона	3	1637,98	0,0001 *
Боковые × Вестибулярные ядра	3	70,48	0,0001 *
Группа × Боковые × Вестибулярные ядра	9	89.48	0,0001 *

Многократный дисперсионный анализ количества BrdU-, GFAP- и GAD67-положительных клеток в вестибулярных ядрах. Группа (кошки с односторонней вестибулярной нейрэктомией по сравнению с кошками с односторонней вестибулярной лабиринтэктомией по сравнению с кошками с тетродотоксином), вестибулярные ядра (MVN, медиальные вестибулярные ядра; IVN, нижние вестибулярные ядра; LVN, латеральные вестибулярные ядра и SVN, верхнее вестибулярное интактное ядро) являются основными фиксированными эффектами, обеспечивающими источники изменчивости среди кошек (*).

df: степень свободы; F: тест Шеффе; П: Уровень вероятности.

Домашние кошки против уличных кошек — American Humane

Как и многие любители кошек, вы, возможно, думали о том, чтобы позволить своей кошке выйти на улицу. Многие владельцы кошек чувствуют себя виноватыми из-за того, что держат свою кошку внутри, и беспокоятся, что они лишают свою кошку естественных инстинктов, свежего воздуха и солнечного света. Если вы испытали некоторые из этих чувств, компания American Humane ценит вашу заботу о своем кошачьем друге и хотела бы помочь вам принять обоснованное решение.Давайте посмотрим на проблемы, связанные с домашними кошками и уличными кошками:

Проблемы со здоровьем

Болезнь:

По оценкам Американской коалиции диких кошек, в США проживает около 60 миллионов диких и бездомных бездомных кошек. Многие из этих кошек могут быть переносчиками болезней, которые могут передаваться вашей кошке, если она или она вступит с ними в контакт. Некоторые из этих заболеваний могут быть серьезными или потенциально смертельными. Общие примеры включают:

• Лейкоз кошек (FeLV)
• Кошачий СПИД (FIV)
• FIP (инфекционный перитонит кошек)
• Чума кошачья (панлейкопения)
• инфекции верхних дыхательных путей (или URI).

Паразиты:

Хотя обычно кошки не опасны для жизни, ваш котенок может подцепить несколько распространенных паразитов, выйдя на улицу, в том числе:

• блох
• тиков
• ушные клещи
• Кишечные глисты
• стригущий лишай (грибковая инфекция)

Эти паразиты могут вызывать различные симптомы от умеренной до тяжелой, такие как расчесывание, кожные инфекции, рвота и диарея. Кроме того, эти жуткие ползания могут подъехать к вам домой и заразить вашу семью.Паразитов бывает очень сложно уничтожить у вашего питомца, людей и в вашем доме.

Если вы решили выпустить кошку на улицу:

• Защитите своего котенка от других кошек. Держите ее на поводке, в клетке или другом замкнутом пространстве, откуда она не может выбраться (и другие кошки не могут попасть внутрь).
• Убедитесь, что взрослый следит за тем, чтобы котенок проводил время на свежем воздухе, чтобы бродячие животные не могли с ним контактировать.
• Отвозите ее к ветеринару не реже одного раза в год для получения жизненно важных вакцин, а также для обследования и лечения паразитов.

Проблемы безопасности

Важным фактором для любителей кошек, думающих о том, чтобы позволить своей кошке выходить на улицу, является безопасность. Помимо рисков, исходящих от других кошек, существуют другие потенциальные опасности, которые могут серьезно угрожать благополучию вашей кошки — и даже ее жизни — включают:

Автомобили:

Вопреки распространенному мнению, кошки не обладают врожденным инстинктом избегать оживленных улиц, и их часто сбивают машины.

Жестокое обращение с животными:

Бродячие кошки могут подвергаться риску жестокого обращения с животными.К сожалению, некоторые люди, как известно, стреляют в кошек из пулеметов BB или стрелами, в то время как некоторые кошки попадают в ловушку, подвергаются жестокому обращению и убиваются во имя «спорта» или «ради развлечения».

Свободные собаки и дикие животные:

Мы можем думать о наших смелых представителях семейства кошачьих как о хороших охотниках, которые могут позаботиться о себе острыми зубами и когтями. К сожалению, кошки могут быть хорошими охотниками, но они также часто оказываются на охоте. На кошек обычно нападают свободные собаки и дикие животные, такие как койоты, еноты, лисы и даже аллигаторы (в зависимости от того, где они живут).Травмы от нападений диких животных и бездомных собак очень серьезны и часто приводят к летальному исходу.

Токсины и яды: Кошки, находящиеся вне дома, также сталкиваются с опасностью контакта с токсинами, такими как антифриз, которые часто попадают в организм из-за их приятного вкуса. Кошки также могут случайно подвергнуться воздействию яда для грызунов, когда они охотятся и поедают грызунов, которые недавно проглотили ядовитую приманку.

Деревья: Деревья могут быть источником некоторой опасности для кошек, которые забираются туда, где они боятся или не могут спуститься.В некоторых случаях они могут находиться на дереве в течение нескольких дней, пока не станут настолько обезвоженными и слабыми, что упадут и получат тяжелые, серьезные или смертельные травмы.

Заботы об окружающей среде

Убийство птиц и мелких животных:

Охотничий инстинкт кошки настолько силен, что даже сытые кошки могут, естественно, получать удовольствие от охоты на птиц или других мелких животных. Хотя воздействие одной кошки может показаться не таким уж большим, важно подумать об общем воздействии всех кошек, которым разрешено выходить на улицу.По оценкам, бездомные кошки ежегодно убивают сотни миллионов птиц, однако считается, что птицы убивают только 20 процентов бродячих кошек в дикой природе. ¹ Птицы особенно подвержены риску в домах с кормушками и ванночками для птиц. ¹

Как сделать домашних кошек счастливыми

Вот несколько отличных способов обеспечить вашей кошке счастливую и здоровую жизнь в вашем доме:

Напарник для вашей кошки

Многим кошкам нравится общество других кошек или, в некоторых случаях, собак! Игры, погоня, взаимный уход и объятия могут удовлетворить потребность вашей домашней кошки в упражнениях, общении и привязанности, пока вы на работе или вдали от дома.

Интерактивные игрушки

Предоставьте своей домашней кошке множество различных интерактивных игрушек, чтобы поддерживать ее физически и умственно.

• Хотя у кошек есть индивидуальные предпочтения к любимым типам игрушек, большинство из них получают удовольствие от получения любой новой игрушки. Однако, как и детям, через несколько дней это может наскучить. Это не означает, что вам нужно постоянно покупать кошке новые игрушки. Попробуйте убрать одни игрушки, а другие оставить, а затем менять их каждые несколько дней, чтобы дать вашему котенку «новую игрушку» без лишних затрат.
• Отличный способ стимулировать охотничий инстинкт кошки — это дать ей игрушку, похожую на добычу, например, лазерную игрушку или удочку котенка. Наслаждение этими типами игрушек с вашей кошкой в ​​течение нескольких минут каждый день — идеальный способ взаимодействия с вашей кошкой и обеспечения столь необходимых упражнений и игр, в то же время позволяя соответствующий выход для ее естественного влечения к добыче.

когтеточки

Домашние кошки должны быть обеспечены подходящими поверхностями, на которых они могут проявлять естественный инстинкт царапания.У кошек есть индивидуальные предпочтения, и многие предпочитают иметь различные когтеточки и поверхности, поэтому обязательно предлагайте своей кошке несколько типов в разных местах по всему дому.

Создание мурлыканья в помещении

• Места для лазанья: Возможно, ваш дом уже предоставляет возможности для лазанья по мебели, полкам или шкафам, но вы также можете захотеть иметь места для лазанья, специально предназначенные для вашей кошки, например, кошачье дерево. Вы можете купить кошачьи елки в большинстве зоомагазинов или узнать в Интернете, как сделать сами.
• Насесты для кошек: Кошки — прирожденные поклонники солнца. Предоставив кошке доступ к нескольким окнам, она сможет загорать и наблюдать за миром, не выходя из дома. Если у вас узкие подоконники, подумайте о том, чтобы установить кошачьи окуни на нескольких окнах, чтобы у вашего котенка было место, где можно растянуться и наслаждаться видом. Полки, сделанные специально для этой цели, можно купить в большинстве зоомагазинов или узнать в Интернете, как построить свои собственные.
• «Cat TV»: Развлеките свою кошку, поставив кормушку для птиц или ванночку для птиц во дворе в пределах видимости из окон.Если вы решите предоставить кормушки и ванны, пожалуйста, держите наших крылатых друзей в безопасности, постоянно держите своих кошек внутри. Закрытая веранда также может быть безопасным и приятным местом для вашей кошки, чтобы наслаждаться солнцем и любоваться природой; просто убедитесь, что экраны надежно закреплены, чтобы предотвратить побег.