В Китае впервые за 20 лет замечен «волшебный кролик»
Китайский эколог Ли Вэйдун сообщил, что ему удалось обнаружить илийскую пищуху, прозванную «волшебным кроликом», которая не показывалась людям с 1990-х годов.
Специально для поиска исчезающего подвида Вэйдун организовал поиски в ареале обитания зверя. Группа состояла из 20 добровольцев, но повезло самому организатору: пищуха вдруг выпрыгнула и перескочила через его ноги.
Примечательно, что именно Ли Вэйдун является первооткрывателем подвида илийская пищуха — он заметил этих зверей в 1983 году в горах Тянь-Шань в провинции Синьцзян и придумал им название в честь родного города Или.
«Я обнаружил этот вид, и я наблюдал, как он перешел в категорию находящихся под угрозой исчезновения. Если он вымрет у меня на глазах, я буду чувствовать себя виноватым», — рассказал Ли Вэйдун в интервью CNN. По мнению эколога, в вымирании подвида виновно глобальное потепление: 20-сантиметровое млекопитающее живет на голых скалах высоко в горах и из-за таяния ледников вынуждено подниматься все выше.
Илийская пищуха относится к семейству пищуховых отряда зайцеообразных. За необычную внешность и редкость китайцы прозвали зверька «волшебным кроликом». Подвид является эндемиком Китая и обитает в основном в горах Тянь-Шань. Он считается еще более редким, чем панды: с момента обнаружения популяция илийских пищух сократилась на 70%. Если в начале 1990-х годов насчитывалось около 2000 особей, то сейчас, по самым оптимистичным прогнозам, в дикой природе живет около 1000 этих существ. В двух районах из шести подвид вымер. В 2008 году Международный союз охраны природы внес илийскую пищуху в список животных, находящихся под угрозой исчезновения. «Эти маленькие существа могут исчезнуть в любой момент», — цитирует Ли Вэйдуна издание The Mirror.
Напомним, что недавно ученые назвали 15 видов животных, имеющих самые низкие шансы на выживание.
О видах, которые исчезли совсем недавно, читайте в обзоре «Вымершие в XX веке».
На сайте могут быть использованы материалы интернет-ресурсов Facebook и Instagram, владельцем которых является компания Meta Platforms Inc., запрещённая на территории Российской Федерации.
пищуха
илийская пищуха
китай
эндемик
исчезающие виды животных
Странное в небе: топ-10 необычных атмосферных явлений
Странное в небе: топ-10 необычных атмосферных явлений
Рассказываем и показываем самые редкие явления природы, от ложного солнца до небесных дыр
Евгения Шмелева
4 октября 2022
118128
Вопрос: что это?
Подсказка: назначение — бытовое, время — с XV века до наших дней
4 октября 2022
Почему осенью нам грустно?
Почему осенью нам грустно?
Где искать лекарство от плохого настроения.
Юлия Скопич
3 октября 2022
Выяснилось, почему знаменитый дворец Альгамбра меняет свой цвет
Умер последний носитель алеутского языка в России
5 октября 2022
На Аляске выбирают лучшего жирного медведя
5 октября 2022
Исследование: погубивший динозавров астероид вызвал цунами высотой в 1,5 км
5 октября 2022
Бессмертная медуза
10 самых больших самолетов в мире
Почему кошки любят коробки и пакеты
Самые большие города мира
Самые густонаселенные страны мира
Самые редкие животные: топ-15
Что едят бегемоты?
Мы используем cookie-файлы
ОАО «Моя Планета» использует cookie-файлы для улучшения работы и пользования сайта https://moya-planeta.
Миксоматоз кроликов — ГБУ КО «Боровская районная станция по борьбе с болезнями животных»
- Памятка населению
- Миксоматоз кроликов
Миксоматозом называется очень серьёзное воспалительное заболевание, распространителем которого является вирус. Оно способно поразить абсолютно всех кроликов, будь то домашние или дикие. Сопровождается недуг возникновением образований в виде шишек и сложной формой конъюнктивита с гнойными выделениями.
До проявления начальных признаков болезни (инкубационный период) может пройти несколько дней. Обычно минимальный срок составляет 6 суток. Через 11 дней симптомы становятся совершенно явными. Миксоматоз на первых порах своего развития выказывает себя почти незаметными признаками. Только при внимательном осмотре кролика можно увидеть красные отметины, что вышли на кожном покрове, особенно в виде красных пятен на внутренней поверхности уха.
Отёки студенистого характера проявляются в разных зонах головы животного.
В большинстве случаев все симптомы длятся максимум 11 суток. Затем кролик становится равнодушен к пище, воде, никак не реагирует на голоса, звуки, прикосновения. Если животное не отличалось хорошим иммунитетом, оно умирает. Если же кролик достаточно силён, при должном лечении он идёт на поправку. После окончательного выздоровления никаких признаков тяжёлого недуга не остаётся.
1. Отёчная форма.
Первый вид представляет собой динамично развивающуюся болезнь, которая заканчивается практически всегда смертью кролика.
Проявляется недуг воспалением слизистой оболочки глаз, которое перерастает в конъюнктивит.
При этом можно наблюдать образование корок. Отекает также носовая полость, животному трудно дышать, из горла вырываются хрипы и выходят гнойные сгустки. Опухоли покрывают всё тело кролика. Заполнены они жидкостью. Сам зверёк чувствует себя очень плохо – смотрит понуро, во взгляде боль и тоска, к пище животное не притрагивается. Ушки отвисают. Буквально через десять суток кролик умирает. Признаками являются следующие: узелки (маленькие шишечки) могут возникнуть например только на ушах, или на носу, в паху, веках или бывает комбинированно.Они имеют свойство исчезать, а позже снова возвращаться.
Вторая стадия заболевания характеризуется конъюнктивитом с выделениями гноя, веки животного закрываются, и кролик не в силах их открыть, вследствие чего он на какое-то время ничего не видит.
Зачастую другие заболевания возникают на фоне миксоматоза. Это может быть, например, стоматит. В данных случаях течение болезни проходит намного тяжелее.
Почему заражаются кролики, и грозит ли опасность заболеть человеку?
Миксоматоз заработать нетрудно. Обычно кролики заражаются этим недугом от насекомых, являющихся его переносчиками. Инфицировать животное в состоянии блохи и вши, нередко обитающие на шёрстке кролика, многочисленные мошки, которых всегда много в месте содержания зверей, комары, даже мухи, которые кусают кролика. Особенно сильное заражение происходит когда идет большой выплод комаров в конце июня -август.
Лечение кроликов от миксоматоза, эффективно ли оно?
Лечение не эффективно и трудозатратно, если проводить симптоматическое лечение, то можно заметить, что даже открытые раны трудно заживляются, конъюнктивит так же плохо поддается лечению. Согласно ветеринарного законодательства больные животные должны уничтожаться.
Всегда ли помогает вакцина от миксоматоза?
Вакцинация при миксоматозе кроликов не всегда даёт положительные результаты. Иногда причиной этому служит тот факт, что владелец животных не поддерживает иммунитет своих питомцев на достаточно высоком уровне. Так же из причини является неправильная перевозка и хранение вакцины в домашних условиях.
В домашних условиях приобретённую вакцину надо держать только в холодильнике – в комнате же и под светом лампы её хранить нельзя.
Если флакон с вакциной вскрыт, а также в случаях, если истёк срок годности вакцины, следует немедленно избавиться от неё.
Вакцина может не принести ожидаемых успехов и тогда, когда им воспользовались без предварительной профилактики животного от глистов и кокцидий. На упаковке каждой вакцины содержится информация, рассказывающая, как правильно прививать кролика: данной инструкции нужно следовать неукоснительно, иначе можно не только не облегчить страдания кролика, но и вовсе погубить его.
Профилактически мероприятия, направленные на предупреждение миксоматоза кроликов
Самое главное, что нужно проделать в целях профилактики кроликов от заболевания миксоматозом, – каждый год проводить плановую вакцинацию всех особей, согласно инструкции на вакцину, а также схемы, если первая вакцинация делается в 45 дней, то нужно не упустить момент в ревакцинации в 6 — ти месячном возрасте, иначе иммунитет ослабевает и возможно произойдет заражение.
Еще небольшой совет- как только увидели в хозяйстве хоть одного больного кролика с похожими симптомами заболевания миксоматоз, немедленно нужно привить все поголовье против данного заболевания.
Клетки, в которых содержатся животные, необходимо тщательно мыть, чистить, не допуская загрязнений. Всю территорию вокруг помещения, а также зону, где содержаться кролики, нужно также подвергать санитарной обработке. Поить и кормить питомцев необходимо проверенным и свежим кормом и чистой водой, периодически менять старые опилки на свежие. Животных необходимо время от времени обрабатывать в целях предупреждения заражения эктопаразитами.
Освободившиеся клетки обязательно нужно обжигать паяльной лампой или газовой горелкой, а также потом проводить дезинфекцию одним из дезинфицирующим препаратом.
Не опасно ли мясо заболевших миксоматозом кроликов в пищу?
Согласно правилам ветеринарно-санитарной экспертизы:
Кроликов, больных миксоматозом, к убою не допускают, а при диагностировании заболевания после убоя тушку вместе с внутренними органами и шкуркой уничтожают.
ТРАНСГЕННЫЕ И НОКАУТНЫЕ КРОЛИКИ В БИОМЕДИЦИНЕ И ГЕНОТЕРАПИИ. CRISPR/CAS9-ТЕХНОЛОГИИ (ОБЗОР) | Колоскова
1. Езерский В.А., Шишиморова М.С., Тевкин С.И., Трубицина Т.П., Колоскова Е.М., Безбородова О.А. и др. Интеграция и тканеспецифическая экспрессия гена лактоферрина человека в молочной железе трансгенных кроликов. Проблемы биологии продуктивных животных. Боровск. 2013;4:33–52.
2. Каркищенко В.Н., Болотских Л.А., Капанадзе Г.Д., Каркищенко Н.Н., Колоскова Е.М., Максименко С.В. и др. Создание линий трансгенных животных-моделей с генами человека NAT1 и NAT2. Биомедицина. 2016;(1):74–85.
3. Каркищенко В.Н., Рябых В.П., Болотских Л.А., Семенов Х.Х., Капанадзе Г.Д., Петрова Н.В. и др. Физиолого-эмбриологические аспекты создания трансгенных мышей с интегрированными генами NAT1 и NAT2 человека. Биомедицина. 2016;(1):52– 66.
4. Каркищенко Н.Н., Рябых В.П., Колоскова Е.М., Каркищенко В.Н. Создание гуманизированных мышей для фармакотоксикологических исследований (успехи, неудачи и перспективы).
Биомедицина. 2014;(3):4–22.
5. Макаренко И.Е., Калатанова А.В., Ванатиев Г.В., Мужикян А.А., Шекунова Е.В., Буренков П.В. и др. Выбор оптимального вида животных для моделирования экспериментального артериального тромбоза. Международный вестник ветеринарии. 2016;2:116–125.
6. Рыбакова А.В., Макарова М.Н., Макаров В.Г. Использование кроликов в доклинических исследованиях. Международный вестник ветеринарии. 2016;4:102–106.
7. Чемерис Д.А., Кирьянова О.Ю., Геращенков Г.А., Кулуев Б.Р., Рожнова Н.А., Матниязов Р.Т. и др. Биоинформатические ресурсы для CRISPR/Cas редактирования геномов. Биомика. 2017;9(3):203– 228.
8. Aida T., Chiyo K., Usami T., Ishikubo H., Imahashi R., Wada Y., et al. Cloning-free CRISPR/Cas system facilitates functional cassette knock-in in mice. Genome Biol. 2015;16(87):11.
9. Arias-Mutis O.J., Marrachelli V.G., Ruiz-Saurí A., Alberola A., Morales J.M., Such-Miquel L., et al. Development and characterization of an experimental model of diet-induced metabolic syndrome in rabbit.
PLoS One. 2017;23;12(5):e0178315.
10. Bosze Z., Hiripi L., Carnwath J.W., Niemann H. The transgenic rabbit as model for human diseases and as a source of biologically active recombinant proteins. Transgenic. Res. 2003;12:541–553.
11. Bosze Z., Houdebine L.M. Application of rabbits in biomedical research: a review. World Rabbit Sci. 2006;14:1–14.
12. Bosze Z., Major P., Baczko I., Odening K.E., Bodrogi L., Hiripi L., et al. The potential impact of new generation transgenic methods on creating rabbit models of cardiac diseases. Prog. Biophys. Mol. Biol. 2016;121:123–130.
13. Campbell I.M., Shaw C.A., Stankiewicz P., Lupski J.R. Somatic mosaicism: implications for disease and transmission genetics. Trends Genet. 2015;31(7):382–392.
14. Chen M., Yao B., Yang Q., Deng J., Song Y., Sui T., et al. Truncated C-terminus of fi brillin-1 induces Marfanoid-progeroid-lipodystrophy (MPL) syndrome in rabbit. Dis. Model. Mech. 2018;11(4). PII: dmm031542. DOI: 10.1242/dmm.
031542.
15. Chentoufi A.A., Dasgupta G., Christensen N.D., Hu J., Choudhury Z.S., Azeem A., et al. A novel HLA (HLA-A_0201) transgenic rabbit model for preclinical evaluation of human CD81 T cell epitope-based vaccines against ocular herpes. J. Immunol. 2010;184:2561–2571.
16. Chesné P., Adenot P.G., Viglietta C., Baratte M., Boulanger L., Renard J.P. Cloned rabbits produced by nuclear transfer from adult somatic cells. Nat. Biotechnol. 2002;20:366–369. 17. Darby C.A., Fitch J.R., Brennan P.J., et al. Samovar: Single-Sample Mosaic Single-Nucleotide Variant Calling with Linked Reads. iScience. 2019;18:1–10.
17. Deng J., Chen M., Liu Z., Song Y., Sui T., Lai L., et al. The disrupted balance between hair follicles and sebaceous glands in Hoxc13-ablated rabbits. FASEB J. 2019;33(1):1226–1234. DOI: 10.1096/fj.201800928RR.
18. Esteves P.J., Abrantes J., Baldauf H.M., BenMohamed L., Chen Y., Christensen N., et al. The wide utility of rabbits as models of human diseases.
Exp. Mol. Med. 2018;50(5):66. DOI: 10.1038/s12276-018-0094-1.
19. Fan J., Chen Y., Yan H., Niimi M., Wang Y., Liang J. Principles and Applications of Rabbit Models for Atherosclerosis Research. J. Atheroscler. Thromb. 2018;25(3):213–220. DOI: 10.5551/jat.RV17018.
20. Fan J., Kitajima S., Watanabe T., Xu J., Zhang J., Liu E., et al. Rabbit models for the study of human atherosclerosis: from pathophysiological mechanisms to translational medicine. Pharmacol. Ther. 2015;146:104–119. DOI: 10.1016/j.pharmthera.2014.09.009.
21. Favaro P., Finn J.D., Siner J.I., Wright J.F., High K.A., Arruda V.R. Safety of liver gene transfer following peripheral intravascular delivery of adeno-associated virus (AAV)-5 and AAV-6 in a large animal model. Hum. Gene Ther. 2011;22(7):843–852.
22. Fischer B., Chavatte-Palmer P., Viebahn C., Santos A.N., Duranthon V. Rabbit as a reproductive model for human health. Reproduction. 2012;144:1– 10. DOI: 10.1530/REP-12-0091.
23. Flisikowska T.
, Thorey I.S., Offner S., Ros F., Lifke V., Zeitler B., et al. Effi cient immunoglobulin gene disruption and targeted replacement in rabbit using zinc fi nger nucleases. PLoS One. 2011;6:e21045.
24. Gaudelli N.M., Komor A.C., Rees H.A., Packer M.S., Badran A.H., Bryson D.I., et al. Programmable base editing of A*T to G*C in genomic DNA without DNA cleavage. Nature. 2017;551(7681):464–471. DOI: 10.1038/nature24644.
25. Gehrke J.M., Cervantes O., Clement M.K., Wu Y., Zeng J., Bauer D.E., et al An APOBEC3A-Cas9 base editor with minimized bystander and off-target activities. Nat. Biotechnol. 2018;36(10):977–982. DOI: 10.1038/nbt.4199.
26. Gopinath C., Nathar T.J., Ghosh A., Hickstein D.D., Nelson E.J.R. Contemporary Animal Models For Human Gene Therapy Applications. Curr. Gene. Ther. 2015;15(6):531–540.
27. Guo R., Wan Y., Xu D., Cui L., Deng M., Zhang G., et al. Generation and evaluation of Myostatin knockout rabbits and goats using CRISPR/Cas9 system. Sci. Rep. 2016;15;6:29855.
DOI: 10.1038/srep29855.
28. Hammer R.E., Pursel V.G., Rexroad C.E. Jr., Wall R.J., Bolt D.J., Ebert K.M., et al. Production of transgenic rabbits, sheep and pigs by microinjection. Nature. 1985;315:680–683.
29. Honda A., Hirose M., Inoue K., Ogonuki N., Miki H., Shimozawa N., et al. Stable embryonic stem cell lines in rabbits: potential small animal models for human research. Reprod. Biomed. Online. 2008;17:706–715.
30. Honda A., Hirose M., Sankai T., Yasmin L., Yuzawa K., Honsho K., et al. Single-step generation of rabbits carrying a targeted allele of the tyrosinase gene using CRISPR/Cas9. Exp. Anim. 2015;64:31–37.
31. Honda A., Ogura A. Rabbit models for biomedical research revisited via genome editing approaches. J. Reprod. Dev2020. 2017;63(5):435–438. DOI: 10.1262/jrd.2017-053.
32. Houdebine L.M., Fan J. Rabbit biotechnology: rabbit genomics, transgenesis, cloning and models. Heildelberg/Berlin/New York: Springer Science & Business Media, 2009.
33.
https://monographies.ru/en/book/section?id=10062 35. Ji D., Zhao G., Songstad A., Cui X., Weinstein E.J. Effi cient creation of an APOE knockout rabbit. Transgenic Res. 2015;24:227–235.
34. Jiang W., Liu L., Chang Q., Xing F., Ma Z., Fang Z., et al. Production of Wilson Disease Model Rabbits with Homology-Directed Precision Point Mutations in the ATP7B Gene Using the CRISPR/Cas9 System. Sci. Rep. 2018;8(1):1332. DOI: 10.1038/s41598-018-19774-4.
35. Kamaruzaman N.A., Kardia E, Kamaldin N., Latahir A.Z., Yahaya B.H. The rabbit as a model for studying lung disease and stem cell therapy. Biomed. Res. Int. 2013;691830. DOI: 10.1155/2013/691830.
36. Kawano Y., Honda A. Gene Targeting in Rabbits: Single-Step Generation of Knock-out Rabbits by Microinjection of CRISPR/Cas9 Plasmids. Methods Mol. Biol. 2017;1630:109–120. DOI: 10.1007/978-1-4939-7128-2_10.
37. Komor A.C., Kim Y.B., Packer M.S., Zuris J.A., Liu D.R. Programmable editing of a target base in genomic DNA without double-stranded DNA cleavage.
Nature. 2016;533:420–424.
38. Kondo M., Sakai T., Komeima K., Kurimoto Y., Ueno S., Nishizawa Y., et al. Generation of a transgenic rabbit model of retinal degeneration. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2009;50:1371–1377.
39. Lee J.G., Sung Y.H., Baek I.J. Generation of genetically-engineered animals using engineered endonucleases. Arch. Pharm. Res. 2018;41(9):885– 897. DOI: 10.1007/s12272-018-1037-z.
40. Lenz W. A short history of thalidomide embryopathy. Teratology. 1988;38:203–215. DOI: 10.1002/tera.1420380303.
41. Li L., Zhang Q., Yang H., Zou Q., Lai C., Jiang F., et al. Fumarylacetoacetate Hydrolase Knock-out Rabbit Model for Hereditary Tyrosinemia Type 1. J. Biol. Chem. 2017;292(11):4755–4763. DOI: 10.1074/jbc.M116.764787.
42. Li Q., Qin Z., Wang Q., Xu T., Yang Y., He Z. Applications of Genome Editing Technology in Animal Disease Modeling and Gene Therapy. Comput. Struct. Biotechnol. J. 2019;17:689–698. DOI: 10.1016/j.csbj.2019.05.006.
43. Liu H. , Sui T., Liu D., Liu T., Chen M., Deng J., et al. Multiple homologous genes knockout (KO) by CRISPR/Cas9 system in rabbit. Gene. 2018;647:261– 267. DOI: 10.1016/j.gene.2018.01.044.
44. Liu T., Wang J., Xie X., Wang K., Sui T., Liu D., et al. DMP1 Ablation in the Rabbit Results in Mineralization Defects and Abnormalities in Haversian Canal/Osteon Microarchitecture. J. Bone Miner. Res. 2019. DOI: 10.1002/jbmr.3683.
45. Liu Z., Chen M., Chen S., Deng J., Song Y., Lai L., et al. Highly effi cient RNA-guided base editing in rabbit. Nat. Commun. 2018;9(1):2717. DOI: 10.1038/s41467- 018-05232-2.
46. Liu Z., Chen S., Shan H., Zhang Q., Chen M., Lai L., et al. Effi cient and precise base editing in rabbits using human APOBEC3A-nCas9 fusions. Cell Discov. 2019;5:31. DOI: 10.1038/s41421-019-0099-5.
47. Lombardi R.., Rodriguez G., Chen S.N., Ripplinger C.M., Li W., Chen J., et al. Resolution of established cardiac hypertrophy and fi brosis and prevention of systolic dysfunction in a transgenic rabbit model of human cardiomyopathy through thiolsensitive mechanisms.
Circulation. 2009;17:1398–1407.
48. Lozano W.M., Arias-Mutis O.J., Calvo C.J., Chorro F.J., Zarzoso M. Diet-Induced Rabbit Models for the Study of Metabolic Syndrome. Animals (Basel). 2019;9(7). PII: E463. DOI: 10.3390/ani9070463.
49. Lu R., Yuan T., Wang Y., Zhang T., Yuan Y., Wu D., et al. Spontaneous severe hypercholesterolemia and atherosclerosis lesions in rabbits with defi ciency of low-density lipoprotein receptor (LDLR) on exon 7. EBioMedicine. 2018;36:29–38. DOI: 10.1016/j.ebiom.2018.09.020.
50. Lu Y., Liang M., Zhang Q., Liu Z., Song Y., Lai L., et al. Mutations of GADD45G in rabbits cause cleft lip by the disorder of proliferation, apoptosis and epithelialmesenchymal transition (EMT). Biochim. Biophys. Acta Mol. Basis Dis. 2019;1865(9):2356–2367. DOI: 10.1016/j.bbadis.2019.05.015.
51. Lv Q., Yuan L., Deng J., Chen M., Wang Y., Zeng J., et al. Effi cient generation of myostatin gene mutated rabbit by CRISPR/Cas9. Sci. Rep. 2016;6:25029.
52. Maertens L.
, Lebas F., Szendrö Zs. Rabbit milk: a review of quantity, quality and non-dietary affecting factors. World Rabbit Sci. 2006;14:205–230.
53. Mage R.G., Esteves P., Rader C. Rabbit models of human diseases for diagnostics and therapeutics development. Dev. Comp. Immunol. 2019;92:99–104. DOI: 10.1016/j.dci.2018.10.003.
54. Mashiko D., Fujihara Y., Satouh Y., Miyata H., Isotani A., Ikawa M. Generation of mutant mice by pronuclear injection of circular plasmid expressing Cas9 and single guided RNA. Sci. Rep. 2013;3:3355.
55. Meier R.P.H., Muller Y.D., Balaphas A., Morel P., Pascual M., Seebach J.D., et al. Xenotransplantation: back to the future? Transpl. Int. 2018;31(5):465–477. DOI: 10.1111/tri.13104.
56. Mizuno S., Dinh T.T., Kato K., Mizuno-Iijima S., Tanimoto Y., Daitoku Y., et al. Simple generation of albino C57BL/6J mice with G291T mutation in the tyrosinase gene by the CRISPR/Cas9 system. Mamm. Genome. 2014;25:327–334.
57. Mohan R.R., Tovey J.C.K., Sharma A.
, Schultz G.S., Cowden J.W., Tandon A. Targeted Decorin gene therapy delivered with adenoassociated virus effectively retards corneal neovascularization in vivo. PLoS One. 2011;6(10):e26432.
58. Niimi M., Yang D., Kitajima S., Ning B., Wang C., Li S., et al. ApoE knockout rabbits: A novel model for the study of human hyperlipidemia. Atherosclerosis. 2016;245:187–193.
59. Oshiro H. The role of the lymphatic system in rabbit models for cancer metastasis research: a perspective from comparative anatomy. Okajimas Folia Anat. Jpn. 2014;91(2):25–28.
60. Parvinian A., Casadaban L.C., Gaba R.C. Development, growth, propagation, and angiographic utilization of the rabbit VX2 model of liver cancer: a pictorial primer and “how to” guide. Diagn. Interv. Radiol. 2014;20(4):335–340. DOI: 10.5152/dir.2014.13415.
61. Pellerin O., Amara I., Sapoval M., Méachi T., Déan C., Beaune P., et al. Hepatic Intra-arterial Delivery of a “Trojan-horses” Gene Therapy: A Pilot Study on Rabbit VX2 Hepatic Tumor Model.
Cardiovasc. Intervent. Radiol. 2018;41(1):153–162. DOI: 10.1007/s00270-017-1833-8.
62. Peng X. Transgenic rabbit models for studying human cardiovascular diseases. Comp. Med. 2012;62(6):472–479.
63. Peng X., Knouse J.A., Hernon K.M. Rabbit Models for Studying Human Infectious Diseases. Comp. Med. 2015;65(6):499–507.
64. Permuy M., López-Peña M., Muñoz F., GonzálezCantalapiedra A. Rabbit as model for osteoporosis research. J. Bone Miner. Metab. 2019;37(4):573–583. DOI: 10.1007/s00774-019-01007-x.
65. Prieto V., Ludwig J.M., Farris A.B., Nagaraju G.P., Lawal T.O., El-Rayes B., et al. Establishment of human metastatic colorectal cancer model in rabbit liver: A pilot study. PLoS One. 2017;12(5):e0177212. DOI: 10.1371/journal.pone.0177212.
66. Song J., Wang G., Hoenerhoff M.J., Ruan J., Yang D., Zhang J., et al. Bacterial and Pneumocystis Infections in the Lungs of Gene-Knockout Rabbits with Severe Combined Immunodefi ciency. Front. Immunol. 2018;9:429. DOI: 10.
3389/fimmu.2018.00429.
67. Song J., Yang D., Ruan J., Zhang J., Chen Y.E., Xu J. Production of immunodefi cient rabbits by multiplex embryo transfer and multiplex gene targeting. Sci Rep. 2017;7(1):12202. DOI: 10.1038/s41598-017-12201-0.
68. Song J., Yang D., Xu J., Zhu T., Chen Y.E., Zhang J. RS-1 enhances CRISPR/Cas9-and TALEN-mediated knock-in effi ciency. Nat. Commun. 2016;7:10548.
69. Song J., Zhong J., Guo X., Chen Y., Zou Q., Huang J., et al. Generation of RAG 1- and 2-deficient rabbits by embryo microinjection of TALENs. Cell Res. 2013;23:1059–1062.
70. Song Y., Liu T., Wang Y., Deng J., Chen M., Yuan L., et al. Mutation of the Sp1 binding site in the 5’ fl anking region of SRY causes sex reversal in rabbits. Oncotarget. 2017;8(24):38176–38183. DOI: 10.18632/oncotarget.16979.
71. Song Y., Xu Y., Deng J., Chen M., Lu Y., Wang Y., et al. CRISPR/Cas9-mediated mutation of tyrosinase (Tyr) 3’ UTR induce graying in rabbit. Sci. Rep. 2017;7(1):1569. DOI: 10.
1038/s41598-017-01727-y.
72. Song Y., Xu Y., Liang M., Zhang Y., Chen M., Deng J., et al. CRISPR/Cas9-mediated mosaic mutation of SRY gene induces hermaphroditism in rabbits. Biosci. Rep. 2018;38(2). PII: BSR20171490. DOI: 10.1042/BSR20171490.
73. Song Y., Yuan L., Wang Y., Chen M., Deng J., Lv Q., et al. Effi cient dual sgRNA-directed large gene deletion in rabbit with CRISPR/Cas9 system. Cell. Mol. Life Sci. 2016;73:2959–2968. DOI: 10.1007/s00018-016-2143-z.
74. Song Y., Zhang Y., Chen M., Deng J., Sui T., Lai L., et al. Functional validation of the albinismassociated tyrosinase T373K SNP by CRISPR/Cas9- mediated homology-directed repair (HDR) in rabbits. EBioMedicine. 2018;36:517–525. DOI: 10.1016/j. ebiom.2018.09.041.
75. Sui T., Lau Y.S., Liu D., Liu T., Xu L., Gao Y., et al. A novel rabbit model of Duchenne muscular dystrophy generated by CRISPR/Cas9. Dis. Model. Mech. 2018;11(6). PII: dmm032201. DOI: 10.1242/dmm.032201.
76. Sui T., Liu D., Liu T., Deng J.
, Chen M., Xu Y., et al. LMNA-mutated Rabbits: A Model of Premature Aging Syndrome with Muscular Dystrophy and Dilated Cardiomyopathy. Aging Dis. 2019;10(1):102–115. DOI: 10.14336/AD.2018.0209.
77. Sui T., Xu L., Lau Y.S., Liu D., Liu T., Gao Y., et al. Development of muscular dystrophy in a CRISPRengineered mutant rabbit model with frame-disrupting ANO5 mutations. Cell. Death. Dis. 2018;9(6):609. DOI: 10.1038/s41419-018-0674-y.
78. Sui T., Yuan L., Liu H., Chen M., Deng J., Wang Y., et al. CRISPR/Cas9-mediated mutation of PHEX in rabbit recapitulates human X-linked hypophosphatemia (XLH). Hum. Mol. Genet. 2016;25:2661–2671.
79. Taniyama Y., Morishita R., Aoki M., Nakagami H., Yamamoto K., Yamazaki K., et al. Therapeutic angiogenesis induced by human hepatocyte growth factor gene in rat and rabbit hind limb ischemia models: preclinical study for treatment of peripheral arterial disease. Gene Ther. 2001;8:181–189.
80. Thomas P.B., Samant D.M., Selvam S., Wei R.H., Wang Y.
, Stevenson D., et al. Adenoassociated virus– mediated il-10 gene transfer suppresses lacrimal gland immunopathology in a rabbit model of autoimmune dacryoadenitis. IOVS. 2010;51:5137–5144.
81. Tsurumi Y., Takeshita S., Chen D., Kearney M., Rossow S.T., Passeri J., et al. Direct intramuscular gene transfer of naked DNA encoding vascular endothelial growth factor augments collateral development and tissue perfusion. Circulation. 1996;94(12):3281–3290.
82. Volobueva A.S., Orekhov A.N., Deykin A.V. An update on the tools for creating transgenic animal models of human diseases — focus on atherosclerosis. Braz. J. Med. Biol. Res. 2019;52(5):e8108. DOI: 10.1590/1414-431X20198108.
83. Wang H., Yang H., Shivalila C.S., Dawlaty M.M., Cheng A.W., Zhang F., et al. One-step generation of mice carrying mutations in multiple genes by CRISPR/Cas-mediated genome engineering. Cell. 2013;153(4):910–918. DOI: 10.1016/j.cell.2013.04.025.
84. Wang Y., Fan N., Song J., Zhong J., Guo X.
, Tian W., et al. Generation of knockout rabbits using transcription activator-like effector nucleases. Cell. Regen. (Lond.). 2014;3:3. DOI: 10.1186/2045-9769-3-3.
85. Waugh J.M., Kattash M., Li J., Yuksel E., Kuo M.D., Lussier M., et al. Gene therapy to promote thromboresistance: Local overexpression of tissue plasminogen activator to prevent arterial thrombosis in an in vivo rabbit model. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999;96(3):1065–1070.
86. Weber J., Peng H., Rader C. From rabbit antibody repertoires to rabbit monoclonal antibodies. Exp. Mol. Med. 2017;49(3):e305. DOI: 10.1038/emm.2017.23.
87. Xu Y., Wang Y., Song Y., Deng J., Chen M., Ouyang H., et al. Generation and Phenotype Identifi cation of PAX4 Gene Knockout Rabbit by CRISPR/Cas9 System. G3 (Bethesda). 2018;8(8):2833–2840. DOI: 10.1534/g3.118.300448.
88. Yan Q., Zhang Q., Yang H., Zou Q., Tang C., Fan N., et al. Generation of multi-gene knockout rabbits using the Cas9/gRNA system. Cell. Regen. (Lond). 2014;3(1):12.
DOI: 10.1186/2045-9769-3-12.
89. Yang D., Song J., Zhang J., Xu J., Zhu T., Wang Z., et al. Identifi cation and characterization of rabbit ROSA26 for gene knock-in and stable reporter gene expression. Sci. Rep. 2016;6:25161.
90. Yang D., Xu J., Zhu T., Fan J., Lai L., Zhang J., et al. Effective gene targeting in rabbits using RNA-guided Cas9 nucleases. J. Mol. Cell. Biol. 2014;6(1):97–99. DOI: 10.1093/jmcb/mjt047.
91. Yang D., Zhang J., Xu J., Zhu T., Fan Y., Fan J., et al. Production of apolipoprotein C-III knockout rabbits using zinc fi nger nucleases. J. Vis. Exp. 2013;(81):e50957. DOI: 10.3791/50957.
92. Yin M., Jiang W., Fang Z., Kong P., Xing F., Li Y., et al. Generation of hypoxanthine phosphoribosyltransferase gene knockout rabbits by homologous recombination and gene trapping through somatic cell nuclear transfer. Sci. Rep. 2015;5:16023.
93. Yoshimi K., Kaneko T., Voigt B., Mashimo T. Allelespecifi c genome editing and correction of disease-associated phenotypes in rats using the CRISPR-Cas platform.
Nat. Commun. 2014;5:4240.
94. Yuan L., Sui T., Chen M., Deng J., Huang Y., Zeng J., et al. CRISPR/Cas9-mediated GJA8 knockout in rabbits recapitulates human congenital cataracts. Sci. Rep. 2016;6:22024.
95. Yuan L., Yao H., Xu Y., Chen M., Deng J., Song Y., et al. CRISPR/Cas9-Mediated Mutation of αA-Crystallin Gene Induces Congenital Cataracts in Rabbits. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2017;58(6):BIO34–BIO41. DOI: 10.1167/iovs.16-21287.
96. Yuan T., Zhong Y., Wang Y., Zhang T., Lu R., Zhou M., et al. Generation of hyperlipidemic rabbit models using multiple sgRNAs targeted CRISPR/Cas9 gene editing system. Lipids Health Dis. 2019;18(1):69. DOI: 10.1186/s12944-019-1013-8.
97. Zakhartchenko V., Flisikowska T., Li S., Richter T., Wieland H., Durkovic M., et al. Cell-mediated transgenesis in rabbits: chimeric and nuclear transfer animals. Biol. Reprod. 2011;84:229–237.
98. Zernii E.Y., Baksheeva V.E., Iomdina E.N., Averina O.A., Permyakov S.E., Philippov P.P., et al.
Rabbit Models of Ocular Diseases: New Relevance for Classical Approaches. CNS Neurol. Disord. Drug Targets. 2016;15(3):267–291.
99. Zhang J., Niimi M., Yang D., Liang J., Xu J., Kimura T., et al. Defi ciency of Cholesteryl Ester Transfer Protein Protects Against Atherosclerosis in Rabbits. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2017;37(6):1068– 1075. DOI: 10.1161/ATVBAHA.117.309114.
100. https://medach.pro/post/2059
пищух, кроликов и зайцев | Департамент рыбы и дикой природы штата Орегон
Департамент рыбы и дикой природы штата Орегон
Ключевые слова
Деятельность — Любой -Отчет об охоте на крупную дичьОтчет об охоте на крупную дичьОтчет об охоте на крупную дичьОтчет о ловле краба и моллюскаРыбалкаОтчет о рыбалкеОтчет об охоте на диких птицОтчет об охоте на диких птицОтчет об отдыхеНаблюдение за дикой природой Отчет о просмотре дикой природы
Тип — Any -СтатьяОбразовательный моментОбразовательный сегментОбразовательная коллекцияЛендингОтчет об отдыхеРазделы сайтаВиды и подвидыМастерская и событияЗоны или районы
Пропустить навигацию по разделам
Пищу, кролики и зайцы
В эту группу мелких млекопитающих входят кролики, зайцы, зайцы и кролики.
Американская пищуха
Американская пищуха размером с крысу характеризуется округлыми ушами, отсутствием внешнего хвоста, голыми посадочными подушечками и задними кормами, едва длиннее передних.
Пищам требуются осыпи, расщелины скал и другие микросреды на большой высоте, обеспечивающие прохладный микроклимат. Необходим адекватный корм вблизи скалистых расщелин.
В Орегоне этот вид обитает только в подходящих местах обитания в Каскадном хребте и горах Валлова, Блу, Строберри, Стенс, Харт и Уорнер, а также в кратере Ньюберри в округе Дешутс и пиках Гризли и Кугуар в западной части округа Лейк.
Американская пищуха является видом, включенным в Стратегию сохранения штата Орегон, и ограничена его чувствительностью к высоким температурам и уязвимостью к изменению климата.
Фото ©Keith Kohl, ODFW
Карликовый кролик
Уши карликового кролика короткие, округлые, внутри и снаружи покрыты длинными шелковистыми волосками; хвост небольшой, покрыт волосками с широкими охристыми перевязями с узкими черноватыми кончиками сверху и снизу; а лапы короткие, снизу густо опушены и окрашены в светло-оранжево-желтый цвет.
В Орегоне карликовые кролики были обнаружены к востоку и югу от линии, соединяющей Кламат-Фолс, Фремонт, Редмонд и Бейкер-Сити. Этот кролик тесно связан с местообитаниями, где преобладает большая полынь.
Карликовый кролик является видом, включенным в Стратегию сохранения штата Орегон, в экорегионе Северного бассейна и хребта.
Фото из Washington Fish and Wildife
Кустарниковый кролик
Кустарниковый кролик редко отваживается отойти дальше, чем на несколько метров от очень густого кустарника, который является обязательным компонентом их среды обитания. Взлетно-посадочные полосы переплетаются через заросли кустарника с окружающими травянистыми участками и не зарастают растительностью для легкого и быстрого доступа к местам кормления и обратно.
В Орегоне кустарниковый кролик встречается в долине Уилламетт и других внутренних долинах, в прибрежных районах и в долинах вдоль прибрежных ручьев от реки Колумбия на юге и в предгорьях Каскадного хребта на западе.
Фото ©Keith Kohl, ODFW
Восточный кролик
Восточный кролик — самый крупный представитель рода в Орегоне. В целом спинной покров коричневатый, становится более темным (почти черным) на крупе и более светлым охристо-коричневым на боках; пятно на затылке оранжево-коричневое без черных волосков, а голова того же цвета, что и спина. Волосы на спине имеют стально-серое основание, за которым следуют полосы коричневато-черного, желтовато-коричневого и черного цвета. Волосы на брюшной стороне белые с серым основанием, что придает пятнистый вид, когда волосы распущены, а хвостовые волосы белые до основания.
Этот кролик был завезен в округ Бентон в 1937 году и в округ Линн в 1941 году из Огайо и Иллинойса. С этих мест восточные хлопчатобумажные хвосты распространились, по крайней мере, через среднюю часть долины Уилламетт. Источник животных в районе Портленда неизвестен, но это может быть от стада Миссури, завезенного недалеко от Баттл-Граунд, штат Вашингтон, в 1933 году.
дубы, ясени и черные тополя и вкрапления среди трав и разнотравья.
Фото Шарлотты Ганскопп
Горный кролик
Горный кролик средних размеров, светло-серовато-коричневого цвета. Его хвост белый, а уши относительно широкие и округлые.
Обычно приурочен к скалистым обнажениям с доминирующей растительностью, состоящей из крупной полыни, горького кустарника, кроличьего куста, западного можжевельника и горного красного дерева.
В Орегоне встречается по всему штату к востоку от Каскадного хребта с западным расширением в округ Жозефин.
Фото ©Keith Kohl, ODFW
Заяц-беляк
Заяц-беляк — самый маленький представитель рода в Орегоне. Особи в популяциях к востоку от Каскадного хребта и некоторые особи в Каскадном хребте зимой становятся белыми, а летом — коричневыми.
Этот заяц приурочен к густым зарослям молодых хвойных деревьев, особенно с нижними ветвями, касающимися земли, и особенно ели и западной лиственницы с вкраплениями небольших полян, заросших травами и разнотравьем.
Фото из ODFW
Чернохвостый заяц
Чернохвостый заяц немного меньше белохвостого зайца, но значительно крупнее зайца-беляка. По внешнему виду он очень похож на белохвостого зайца.
К западу от Каскадного хребта, волосы на спине этого кролика имеют серый цвет, переходящий в темно-коричневую или черноватую основу, за которой следует узкая полоса желтовато-коричневого цвета и черный кончик. Волосы на горле, боках и надхвостье имеют серое основание, переходящее в желтовато-коричневый, с короткими черными кончиками. На брюшной стороне волосы белые со светло-розово-желтыми кончиками. Хвост черный на спине и темно-желтый на брюхе. Уши темно-желтые с черным перцем и переходящие в черный на кончиках. Лапы в основном белые с желтовато-коричневыми пятнами на спине. В целом, окраска темно-желтая, переходящая в черный цвет на спине. Летом шерсть значительно светлее; черные полосы на волосках короче.
К востоку от Каскадного хребта светлые полосы на спинных волосках почти белые, а не желтовато-коричневые, а темные полосы намного уже.
Общий вид зимней шерсти похож на летний мех к западу от Каскадного хребта, но седеет. Лапы намного темнее, а спинная поверхность хвоста более черная.
В Орегоне чернохвостый заяц встречается к западу от Каскадного хребта только в долинах Роуг, Ампкуа и Уилламетт. К востоку от Каскадного хребта встречается в полынных районах. Он использует различные среды обитания в пределах своего ареала.
Фото Боба Пети
Белохвостый заяц
Летний и зимний окрасы белохвостого зайца кардинально отличаются. Летом общий вид серовато-темно-сероватый с оттенком розовато-желтого, с более светлым оттенком по бокам. Зимой это цвет грязного снега, светлее по бокам.
В Орегоне белохвостый заяц встречается к востоку и югу от линии, соединяющей Руфус, Мопен и Антилопу, Джон Дэй, Джунтура, Филдс, Форт-Рок, Форт-Кламат и Кламат-Фолс. Это связано с местообитаниями дерновинных трав.
Белохвостый заяц — вид, включенный в Стратегию сохранения штата Орегон в экорегионе Северного бассейна и хребта.
Фото Википедии
Горный кролик: факты, продолжительность жизни, поведение и уход (с иллюстрациями) В частности, горный кролик в основном содержится в западном регионе Соединенных Штатов. Они довольно маленькие, редко достигают 3 фунтов в весе. Как травоядные, они выживают на различных растениях, семенах и травах.
Горные хлопчатобумажные хвосты предпочитают жить в густом кустарнике, чтобы спрятаться от многочисленных хищников, которые на них охотятся. Поскольку они являются любимой пищей очень многих существ, эти кролики, как правило, живут намного дольше в неволе; до 7 лет, по сравнению со средней продолжительностью жизни всего 15 месяцев в дикой природе.
Краткая информация о горном кролике
| Название вида: | Sylvilagus nuttallii |
| Семейство: | Зайцеобразные |
| Уровень обслуживания: | Умеренный |
| Температура: | 60°-70° по Фаренгейту |
| Темперамент: | Послушный |
| Цветовая форма: | Серый/коричневый |
| Срок службы: | До 7 лет |
| Размер: | 13-18 дюймов |
| Диета: | Травоядное |
| Минимальный размер резервуара: | 12 квадратных футов |
| Комплектация бака: | Большой корпус для проводов |
Горный кролик Обзор
Горный кролик, как правило, довольно послушные существа.
В дикой природе они являются добычей практически всех хищников, включая лисиц, койотов, рысей, змей, сов и даже людей. У них очень короткий жизненный цикл, особенно в дикой природе.
Чтобы справиться с этим, горные хлопчатобумажные хвосты являются плодовитыми производителями, производящими от четырех до пяти пометов каждый год. Каждый помет состоит из четырех-восьми детенышей, что дает 16-40 детенышей в год от одной самки. Цикл продолжается быстро, новорожденных кроликов отнимают от груди всего в 1 месяц. К 3 месяцам кролик становится половозрелым и готов к размножению.
В отличие от многих существ, которые спят, горные хлопчатобумажные хвосты почти всегда в пути в поисках нового места с постоянным запасом пищи. Они, как правило, находят убежище в густых зарослях, оставаясь в этом районе лишь на короткое время, питаясь тем, что доступно поблизости.
В неволе эти кролики живут значительно дольше. Однако им нужно много места, так как им нужно прыгать для упражнений.
Как минимум, вам понадобится вольер площадью 12 квадратных футов для одного горного хлопкового хвоста. Конечно, чем больше места, тем лучше.
Сколько стоят горные кролики?
Если вы хотите добавить в свою семью горного хлопкового хвоста, то вы будете рады узнать, что это чрезвычайно доступные домашние животные. На самом деле, вы, вероятно, потратите больше на вольер, чем на покупку кролика.
Как правило, горные хлопчатобумажные хвосты можно найти всего за 10-15 долларов. В магазинах вы можете заплатить около 30 долларов. Корпус, вероятно, будет стоить больше, если вы не найдете тот, который кто-то раздает.
Даже уход за горным кроликом доступен по цене. По сравнению с кормом для собак или кошек, корм для кроликов довольно дешев, и они не очень дороги, потому что они такие маленькие твари.
Типичное поведение и темперамент
В дикой природе горные хлопчатобумажные хвосты невероятно пугливы.
В конце концов, почти все хотят их съесть. В неволе это никогда не покидает. В то время как некоторые виды кроликов являются отличными домашними животными, горные хлопчатобумажные хвосты обычно не включаются в этот список. Они, как правило, остаются недоверчивыми, и вам будет трудно установить какую-либо связь со своим питомцем.
Внешний вид и разновидности
Горные кролики имеют длину около 13-18 дюймов, когда они полностью выращены, с мехом серо-коричневого цвета. Нижняя сторона, как правило, бледная, и вы увидите больше коричневого цвета на задних лапах и в нижней части тела кролика.
Как и у большинства кроликов, у горного кролика длинные и мощные задние лапы, которые помогают им быстро преодолевать расстояние. По сравнению с другими видами кроликов, у этих хлопчатобумажных хвостов маленькие уши. Их уши имеют закругленные кончики с заметной шерстью внутри.
Между образцами мало различий. Все они имеют общий внешний вид и вырастут до одинаковых размеров.
Самцы от природы крупнее самок.
Как ухаживать за горным кроликом
Среда обитания, условия содержания в клетке и установкаМинимум вашему горному кролику потребуется 12 квадратных футов пространства для одного экземпляра. Однако лучше, если вы сможете предоставить больше места, и это приведет к более здоровому питомцу.
В этом пространстве вам нужно выделить отдельную зону для сна, покрытую каким-либо мягким постельным бельем. Хэй — хороший выбор. Эта область также должна быть защищена от непогоды, предлагая вашему кролику безопасное убежище, куда он может сбежать, если погода начнет портиться. Он должен быть полностью водонепроницаемым, гарантируя, что никакой дождь не сможет проникнуть внутрь и оставить вашего кролика в мокрых и ужасных условиях на длительное время.
Горный кролик предпочитает температуру около 60°-70° по Фаренгейту, хотя они могут жить и в широком диапазоне температур. Пока вы предоставляете место, где ваш кролик может найти передышку от ветра, дождя и других стихий, он должен быть в состоянии справиться с любой внешней температурой.
В конце концов, они прекрасно выживают в природе.
Вам также понадобится след кролика; область, где ваш кролик может бродить, исследовать и заниматься спортом. В идеале, эта дорожка должна быть обнесена стеной или ограждена забором, чтобы хищники не добрались до вашего кролика и чтобы ваш кролик не сбежал. Эта кроличья дорожка может быть прикреплена к вольеру вашего кролика для простоты использования, или это может быть отдельная область, куда вы берете своего кролика для упражнений.
Изображение предоставлено: Megan Zopf, PixabayУживаются ли горные кролики с другими домашними животными?
Помните, горный хлопчатобумажный хвост — добыча. В природе все пытается их убить, поэтому они от природы довольно пугливы. Кролик со временем привыкнет к вам, но заставить его чувствовать себя комфортно с другими домашними животными может оказаться труднее.
Вообще говоря, кролики прекрасно уживаются с другими кроликами. Все немного по-другому, если вы начнете знакомить собак и кошек с уравнением.
Собаки и кошки являются естественными хищниками, которые в дикой природе питаются кроликами. Ваш кролик будет очень настороженно относиться к этим существам. Но если они очень спокойны, послушны и не делают резких или угрожающих движений, ваш кролик может научиться ладить с ними. Однако не ожидайте, что это произойдет быстро. Потребуется терпение и многократное воздействие.
Чем кормить горного кролика
Горный кролик — травоядное животное, поэтому они питаются исключительно растительной пищей, такой как семена, листья, трава и многое другое. Вы можете кормить своего кролика разнообразными продуктами в неволе.
Придерживайтесь натуральных овощей и фруктов, таких как брокколи, морковь, шпинат, яблоки и клубника. Они также будут есть траву, которую вы можете купить или просто позволить им пастись во дворе. Еще один простой и удобный вариант — гранулы для кроликов, которые предназначены для полноценного питания вашего хлопкового хвоста.
Изображение предоставлено Полом Бреннаном, PixabayПоддержание здоровья горного кролика
Поддержание здоровья горного кролика не очень сложно.
Вам нужно будет регулярно заниматься основами. Убедитесь, что вы кормите кролика достаточным количеством корма, но не перекармливаете. Рацион должен быть разнообразным и состоять из множества различных продуктов, включая свежие фрукты, овощи, а также коммерческие гранулы и злаки.
Вам также необходимо содержать вольер для кроликов в чистоте. По мере накопления отходов растет и восприимчивость к болезням. Регулярная чистка каждую неделю может гарантировать, что ваш кролик останется в добром здравии.
Обеспечьте достаточно возможностей для физических упражнений. В дикой природе эти кролики постоянно в движении. Вам понадобится большая площадь, где ваш кролик сможет безопасно рассредоточиться и получить столь необходимую физическую активность, если вы хотите, чтобы он оставался в добром здравии.
Разведение
Горный кролик может производить до пяти пометов в год. Обычно они спариваются с марта по июль. После спаривания для рождения детенышей требуется около 1 месяца.
Только через 3 месяца потомство готово к продолжению цикла.
Если вы хотите разводить горного кролика, вам понадобятся и самка, и самец. Если вы держите их вместе в течение месяцев с марта по июль, и они оба в добром здравии, вы можете получить помет, прежде чем узнаете об этом. Но ситуация может быстро выйти из-под контроля, так как в каждом помете рождается 4-8 детенышей, а кролики могут производить много пометов каждый год. Убедитесь, что вы готовы к тому, что требует разведения от вас как владельца. Поговорите со своим ветеринаром, прежде чем принимать какие-либо трудные решения.
Подходит ли вам горный кролик?
Горные кролики широко распространены в западной части США, но их нечасто можно встретить в неволе. Хотя за ними легко ухаживать, и они могут прожить в неволе дольше, чем в дикой природе, по своей природе они боязливые и своенравные животные, которым не всегда комфортно с людьми. Таким образом, вы не сможете сблизиться со своим кроликом. Другие виды кроликов становятся приятными и любящими компаньонами, и они становятся гораздо лучшими домашними животными, чем горные кролики.
Рекомендуемое изображение: moosehenderson, Shutterstock
Центральный Орегон пищухи, кролики и зайцы – Think Wild – больница и заповедник дикой природы
Нажмите здесь, если вы нашли раненую пищуху, кролика или зайца.
Американская пищуха (Ochotona Princeps)
Для пищухи необходимы осыпи, расщелины скал и другие высокогорные микросреды, обеспечивающие прохладный микроклимат и достаточное количество корма. Основным фактором, ограничивающим распространение, является температура; они не могут переносить температуру выше 77 ° F более чем на несколько часов.
Они были найдены в низких потоках лавы Национального вулканического памятника Ньюберри. Исследования пищух продолжаются и проводятся в различных западных штатах. Предварительная информация, полученная в результате исследований, показала, что поведение пищух в низинных лавовых потоках отличается от поведения пищух, живущих на возвышенностях.
Более ранние исследования показывают, что у пищух есть два основных периода кормления летом и ранней осенью: с 4:30 до 10:00 утра и с 3:00 до 8:00 во второй половине дня и вечером, но некоторая активность снижается.
продолжается в светлое время суток. С начала июня взрослые пищухи собирают растительность с луга и переносят ее на свою территорию в пределах осыпи, где после высыхания на солнце хранят под защитным покровом валунов. Эта деятельность, называемая сенокосом, продолжается до начала ноября. Одних стог сена недостаточно, чтобы обеспечить пропитание зимой, и некоторые кормодобывания происходят через снежные туннели.
Карликовый кролик (Brachylagus idahoensis)
В Орегоне карликовые кролики были обнаружены к востоку и югу от линии, соединяющей Кламат-Фолс, Фремонт, Редмонд и Бейкер-Сити. Этот кролик тесно привязан к местам обитания, где преобладают большие полыни и рыхлая почва для рытья нор. Население штата Орегон сократилось в результате преобразования среды обитания в сельское хозяйство и фрагментации оставшейся среды обитания. Исследования показывают, что оптимальным является 40% покрытие территории кустарником, и они не занимают площади менее 20%. Им нужна глубокая, рыхлая почва, чтобы вырыть нору.
Это единственные кролики в Северной Америке, которые роют себе норы; они также будут использовать норы других животных. Они активны в любое время суток; они отдыхают под полынью или в норах, устроенных у основания полыни. Весной их рацион составляют различные части полыни, а также травы.
Горный кролик (Sylvilagus nuttallii)
Горный кролик живет в скалистых оврагах или прибрежных зарослях пустынь, покрытых полынью. Он также встречается в можжевеловых лесах и по краям сосновых лесов Пондероза, но не на больших высотах в горах. В основном они активны на рассвете и в сумерках. Эти кролики не очень быстрые, поэтому они держатся в пределах легкой досягаемости от скалистых укрытий, где они умеют переезжать через массы разбитой лавы. Их пища летом — это в основном зеленая растительность, которая поставляет как пищу, так и воду. В зависимости от района их рацион может включать в себя большое количество кустарников, таких как полынь и кроличий кустарник.
Поскольку в зимние месяцы источники пищи становятся более ограниченными, их рацион может включать более древесные части растений, такие как кора и ветки.
Также известно, что горный кролик лазает по деревьям можжевельника в поисках пищи.
Фото: Джастин Уайлд
Заяц-беляк (Lepus americanus)
Заяц-беляк обитает в хвойных лесах с соответствующим кустарниковым покровом. Это включает прибрежную растительность вдоль ручьев и заросли салала. Эти зайцы в основном активны вечером и всю ночь до раннего утра. Летом он питается такими растениями, как трава, папоротники и листья; зимой питается ветками и корой деревьев. Зайцы-снегоступы летом коричневые, и на большей части своего ареала этот вид линяет в белую зимнюю шерсть.
Оба пола часто стучат задними лапами по земле. Стук на удивление громкий и слышен на некотором расстоянии. Молодые рождаются примерно с середины апреля до середины августа. Зайцы-снегоступы не полностью вырастают, пока им не исполнится около пяти месяцев.
Фотографии: Д. Гордон Э. Робертсон, Вальтер Зигмунд
Чернохвостый заяц (Lepus californicus)
Чернохвостый заяц встречается в открытых посадках на полях и в пустынных районах с разбросанной полынью. Летом он питается разнообразными зелеными растениями, а зимой – сушеными и древесными растениями. Чернохвостый заяц получает большую часть необходимой ему воды из растений, которые он ест.
Чернохвостые зайцы обычно не занимают норы: они обычно проводят день, отдыхая в выкопанной дупле в тени. Они питаются ближе к вечеру и ночью. В основном они нелюдимы, но в периоды засухи их загоняют к общим источникам пищи.
Чернохвостые зайцы полагаются на скорость, маскировку и «замирание» для защиты. Вырвавшись из укрытия, чернохвост может прыгнуть на 20 футов в прыжке и развить максимальную скорость 30-35 миль в час по зигзагообразному курсу.
Фото: Джим Харпер
Белохвостый кролик (Lepus townsendii)
Населяет открытые районы, такие как полынные пустыни и луга, но его также можно встретить на открытых участках в хвойных лесах и альпийских лугах.