уход, содержание, размножение, совместимость, корм, фото-обзор
Оглавление
Аквариум для ампулярий
Аквариумные улитки ампулярии по популярности содержания не уступают даже некоторым видам рыб. Эти яркие и красивые, а главное, миролюбивые брюхоногие моллюски станут украшением любого аквариума. Содержать улиток можно как поодиночке, так и группами.
Ампулярии относятся к крупным улиткам, размер раковины отдельных особей может достигать 10 см. Рекомендуется, чтобы на одну особь приходилось не менее 10 литров воды. Минимальный объем аквариума для содержания ампулярий составляет 40 литров.
Очень важно, чтобы аквариум для ампулярий был оборудован крышкой и не имел крупных технологических отверстий. Улитки обладают поразительной способностью находить любые щели. Особенно этим славятся самки, которые ищут место для новой кладки яиц. Если улитка выпадет из аквариума, то сможет продержаться вне воды не более суток, после чего погибнет. При падении может пострадать и раковина моллюсков.
Достаточный уход за аквариумом включает в себя очистку стенок, регулярную сифонку грунта с подменой воды и промывание губки фильтра.
Параметры воды
Ампулярии — теплолюбивые улитки, которых лучше всего содержать при температуре 23-25°С. Если температура воды будет низкой, то у моллюсков замедлится обмен веществ, и они будут находиться в состоянии «спячки». В противоположной ситуации, если вода будет слишком теплой, ампулярии будут очень активны, что также негативно сказывается на их состоянии и приводит к сокращению продолжительности жизни.
Крайне не рекомендуется содержать ампулярий в очень мягкой воде. Для построения раковины улиткам нужен кальций, поэтому в мягкой воде часто наблюдается размягчение и разрушение раковин. Жесткость воды должна составлять 8-18 dGH. А вот кислотность воды особой роли не играет, оптимальными будут значения pH=6.5-7.8.
Ампулярии некомфортно чувствуют себя в очень мягкой водеСвет
Различные виды ампулярий по-разному относятся к освещению. Одни предпочитают активность в темноте, других яркий свет совершенно не смущает. Особых требований к свету улитки не предъявляют. Но стоит отметить, что при содержании в аквариумах с ярким освещением, раковины ампулярий могут покрываться зелеными водорослями, что портит их внешний вид, хотя не причиняет моллюскам никакого вреда.
Грунт
Для содержания
ампулярий наиболее подходящими будут мягкий песок или небольшой окатанный
грунт. Не рекомендуется использовать субстраты с острыми гранями, о которые
улитки могут повредить свои мягкие ткани.
Растения
Ампулярии относятся к всеядным улиткам. В первую очередь они обращают внимание на корма животного происхождения, но если моллюски будут испытывать недостаток корма, то запросто примутся за объедание растений с нежными листьями. Поэтому лучше всего остановиться на жестколистных видах — анубиасах, гигантской валлиснерии, криптокоринах.
Кормление ампулярий
Проблем с кормлением ампулярий в домашних условиях обычно не возникает. Они прекрасно подъедают любой корм, которые не был съеден рыбками и упал на дно. При этом форма особой роли не играет: это могут быть и хлопья, и чипсы, и гранулы. Однако важно помнить, что ампуляриям трудно выиграть конкуренцию за корм с рыбками, поэтому необходимо следить за тем, чтобы корм все-таки доставался улиткам.
В рацион
ампулярий должна обязательно входить растительность, поэтому необходима
периодическая подкормка таблетками для растительноядных рыб. Хорошим выбором
станут пластинки Tetra Pleco Spirulina Wafers или Tetra Wafer Mix.
Высокое
содержание водоросли спирулины полностью удовлетворит потребность улиток в
растительном корме. Таблетки быстро опускаются на дно, что позволяет кормить
ампулярий адресно. При этом корм хорошо сохраняет свою форму и не вызывает
помутнение воды.
Совместимость
Лучших компаньонов для общего аквариума, чем ампулярии, найти трудно. Они совершенно безобидны и не причинят вреда другим водным обитателям.
Но не все виды рыб подходят для совместного содержания с улитками. Некоторые из них постоянно тревожат медлительных моллюсков.
Отличными соседями станут небольшие живородящие рыбки (гуппи, пецилии), сомики, неоны, данио, тетры.
Ампулярии хорошо уживаются с мирными тропическими рыбкамиАктивные барбусы (суматранский, мутант) могут обкусывать усики у ампулярий, поэтому их совместное сожительство не рекомендуется. Не лучшими соседями станут агрессивные цихлиды и лабиринтовые. Они могут поедать молодых улиток или не давать им выбираться на поверхность для дыхания.
Существуют виды рыб, которые активно питаются улитками — тетраодоны и боции. В аквариумы с ними ампулярий лучше не запускать. Также не стоит совмещать этих красивых моллюсков с хищными улитками хеленами. На взрослых улиток они нападают редко, а вот молодых ампулярий могут быстро истребить.
Продолжительность жизни
В домашних условиях продолжительность жизни ампулярий может составлять 3-5 лет, при условии, что температура в аквариуме будет находится в пределах 18-25°С. В очень теплой воде моллюски редко живут более полутора лет.
Ампулярия: размножение в домашних условиях
Если мы взглянем на любой природный водоём, то обнаружим в нём не только рыбок и целое сообщество других организмов, в том числе и брюхоногих моллюсков, или, проще говоря, улиток. Неудивительно, что многие владельцы аквариумов желают завести себе подобных питомцев для разнообразия. И что не говори, в топе аквариумных моллюсков первое место всегда занимает ампулярия.
Эта красивая и крупная улитка, которая имеет несколько вариантов расцветок и совершенно неприхотлива в содержании.
Есть от нее и определенная польза. Например, она подъедает остатки корма от рыб. Многие задаются вопросом: а можно ли получить потомство от ампулярии в домашних условиях? Оказывается, можно и достаточно легко. В нашей статье мы расскажем вам, как правильно все организовать.
Как отличить самку ампулярии от самца
В отличие от большинства других улиток, ампулярии являются раздельнополыми, поэтому для размножения понадобятся самец и самка. Но с этим возникают определённые трудности, ведь половой диморфизм у этих моллюсков не выражен совсем. Поэтому, если вы нацелены на размножение ампулярий, то стоит приобрести не менее шести особей, уж среди них точно попадутся мужская и женская.
Ампулярии раздельнополы, но внешне отличить самца от самки невозможноУсловия для размножения
Ампулярии способны размножаться круглый год, но в тёплое время делают это гораздо чаще. Как-то простимулировать улиток к разведению у вас не получится. Подчиняясь инстинктам, они начнут процесс тогда, когда будут готовы.
Далее самка отыскивает место, где будет откладывать яйца. Причем делает она это всегда на воздухе, а не воде. Самое распространенное место – пространство между уровнем воды и крышкой аквариума. В природе подобное поведение позволяет уберечь кладку от подводных хищников. Процесс откладывания яиц всегда происходит по ночам, после выключения лампы. Происходит он следующим образом. Самка оставляет на стекле крупные (2-3 мм) клейкие икринки и сразу же с помощью свой «ноги» собирает из них плотную гроздь, похожую на виноград. Общая длина кладки может достигать 2-4 см. При этом одна самка может сделать их несколько, возвращаясь через несколько дней.
Ампулярии делают кладку выше уровня водыСвежие яйца мягкие и блестящие. Но приблизительно через сутки на воздухе затвердевают и становятся матовыми. В зависимости от вида, кладка может быть окрашена в белый или розовый цвет. Внутри нее происходит формирование новой жизни. И именно в этот период икра ампулярий требует небольшого ухода.
В чём он заключается?
Прежде всего, после обнаружения новой кладки проверьте ее расположение. Если она будет находиться недалеко от источника освещения, то быстро высохнет. В таком случае, её следует аккуратно срезать ножом или лезвием и поместить на небольшой плавучий островок из пенопласта. Также оцените, не будут ли на кладку капать крупные капли конденсата. В таких условиях икра также может погибнуть. Во всех остальных случаях достаточно несколько раз в день опрыскивать кладку из пульверизатора, что она не сохла. Не допускайте опускания яиц под воду: это нарушит их защитный слой и зародыши погибнут.
Яйца ампулярий требуют регулярного увлажненияСкорость инкубации икры напрямую зависит от температуры воздуха возле кладки. При 24-26°С, улитки вылупятся через 2 недели, а при 18-20°С только через три. Чем ближе момент появления малышей, тем более прозрачной становится оболочка яиц. В какой-то момент в них уже можно разглядеть раковинки маленьких улиток.
На свет юные ампулярии появляются практически все вместе.
Часть из них падает на дно аквариума и забивается в щели между камнями, часто остается висеть на стекле, некоторые поедаются рыбками. Чтобы собрать как можно больше улиточек, под кладку можно поставить отсадник, в котором далее можно будет подращивать малышей. Стоит отметить, что молодые улитки уже полностью сформированы и готовы самостоятельно питаться.
Жизнь маленьких ампулярий
Для кормления маленьких ампулярий подойдут качественные сухие корма для донных рыб, например, Tetra WaferMix или Tetra TabiMin Tablets. Можно предлагать улиткам рубленную ряску, риччию, ошпаренные листья салата.
Вылупившиеся ампулярии способны питаться самостоятельноВ подходящих условиях ампулярии быстро растут. Нельзя содержать улиток в мягкой воде. Недостаток кальция может привести к разрушению раковин.
Репродуктивные технологии для получения и поддержания ценных пород животных
1. Jacob HJ. Функциональная геномика и модели крыс. Геном Res 1999; 9: 1013–1016. [PubMed] [Google Scholar]
2.
3. Маллинз Дж.Дж., Питерс Дж., Гантен Д. Фульминантная гипертензия у трансгенных крыс, несущих мышиный ген Ren-2. Природа 1990; 344: 541–544. [PubMed] [Google Scholar]
4. Charreau B, Tesson L, Soulillou JP, Pourcel C, Anegon I. Трансгенез у крыс: технические аспекты и модели. Трансгенный рез 1996; 5: 223–234. [PubMed] [Google Scholar]
5. Li P, Tong C, Mehrian-Shai R, Jia L, Wu N, Yan Y, Maxson RE, Schulze EN, Song H, Hsieh CL, Pera MF, Ying QL.
Компетентные эмбриональные стволовые клетки зародышевой линии, полученные из бластоцист крысы.
Сотовый 2008; 135:
1299–1310. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
6. Buehr M, Meek S, Blair K, Yang J, Ure J, Silva J, McLay R, Hall J, Ying QL, Smith A. Захват аутентичных эмбриональных стволовых клеток из бластоцисты крысы. Сотовый 2008; 135: 1287–1298 гг. [PubMed] [Google Scholar]
7. Liao J, Cui C, Chen S, Ren J, Chen J, Gao Y, Li H, Jia N, Cheng L, Xiao H, Xiao L. Получение индуцированных плюрипотентных линий стволовых клеток из клеток взрослых крыс. Клеточная стволовая клетка 2009; 4: 11–15. [PubMed] [Академия Google]
8. Li W, Wei W, Zhu S, Zhu J, Shi Y, Lin T, Hao E, Hayek A, Deng H, Ding S. Генерация плюрипотентных стволовых клеток, индуцированных крысами и людьми, путем комбинирования генетического перепрограммирования и химических ингибиторов. Клеточный ствол Сотовый 2009; 4: 16–19. [PubMed] [Google Scholar]
9. Китада К., Ишишита С., Тосака К., Такахаши Р., Уэда М., Кенг В.В., Хори К., Такеда Дж.
Мутагенез с транспозонами у крыс.
Национальные методы 2007 г.; 4:
131–133. [PubMed] [Google Scholar]
10. Lu B, Geurts AM, Poirier C, Petit DC, Harrison W, Overbeek PA, Bishop CE. Создание крысиных мутантов с использованием системы транспозонов «Спящая красавица» с цветовой меткой шерсти. Геном мамм 2007; 18: 338–346. [PubMed] [Академия Google]
11. Zan Y, Haag JD, Chen KS, Shepel LA, Wigington D, Wang YR, Hu R, Lopez-Guajardo CC, Brose HL, Porter KI, Leonard RA, Hitt AA, Schommer SL, Elegbede AF, Gould MN . Производство нокаутных крыс с использованием мутагенеза ENU и скринингового анализа на основе дрожжей. Нац биотехнология 2003; 21: 645–651. [PubMed] [Google Scholar]
12. Смитс Б.М., Мудде Дж.Б., ван де Бельт Дж., Верел М., Оливье Дж., Хомберг Дж., Гурьев В., Кулс А.Р., Элленбрук Б.А., Пластерк Р.Х., Куппен Э. Генерация нокаутов генов и мутантных моделей у лабораторных крыс с помощью мутагенеза с выбранной целью, управляемого ENU. Фармакогенет Геномика 2006; 16: 159–169. [PubMed] [Google Scholar]
13.
Гертс А.М., Кост Г.Дж., Фрейверт Ю., Цейтлер Б., Миллер Ю.К., Чой В.М., Дженкинс С.С., Вуд А., Цуй Х, Мэн Х, Винсент А., Лам С., Михалкевич М., Шиллинг Р., Феклер Дж., Кэллоуэй С., Вейлер Х., Менорет С., Анегон И., Дэвис Г.Д., Чжан Л., Ребар Э.Дж., Грегори П.Д., Урнов Ф.Д., Джейкоб Х.Дж., Буелоу Р.
Нокаут крыс с помощью микроинъекции эмбриону нуклеаз цинковых пальцев. Наука 2009; 325:
433. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
14. Tesson L, Usal C, Menoret S, Leung E, Niles BJ, Remy S, Santiago Y, Vincent AI, Meng X, Zhang L, Gregory PD , Анегон I, Стоимость GJ. Нокаутные крысы, полученные путем микроинъекции эмбрионов TALEN. Нац биотехнология 2011; 29: 695–696. [PubMed] [Google Scholar]
15. Li D, Qiu Z, Shao Y, Chen Y, Guan Y, Liu M, Li Y, Gao N, Wang L, Lu X, Zhao Y, Liu M. Нацеливание на наследственные гены у мышей и крыс с использованием системы CRISPR-Cas. Нац биотехнология 2013; 31: 681–683. [PubMed] [Google Scholar]
16. Li W, Teng F, Li T, Zhou Q.
Одновременная генерация и передача по зародышевой линии множественных генных мутаций у крыс с использованием систем CRISPR-Cas. Нат
Биотехнология 2013; 31: 684–686. [PubMed] [Google Scholar]
17. Мик С., Масимо Т., Бурдон Т. От инженерии до редактирования генома крысы. Геном мамм 2017; 28: 302–314. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
18. Хории Т., Араи Ю., Ямадзаки М., Морита С., Кимура М., Ито М., Абэ Ю., Хатада И. Валидация методов микроинъекций для создания нокаутных мышей с помощью CRISPR/Cas-опосредованной инженерии генома. наука 2014 г.; 4: 4513. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
19. Канеко Т., Масимо Т. Создание грызунов с нокаутом и нокаутом с использованием инженерных эндонуклеаз путем прямой инъекции эмбриона. Методы Мол Биол 2015; 1239: 307–315. [PubMed] [Google Scholar]
20. Канеко Т. Редактирование генома крысы. Методы Мол Биол 2017; 1630: 101–108. [PubMed] [Академия Google]
21. Масимо Т., Такидзава А.
, Фойгт Б., Йошими К., Хиай Х., Курамото Т., Серикава Т.
Создание нокаутных крыс с Х-сцепленным тяжелым комбинированным иммунодефицитом (X-SCID) с использованием нуклеаз с цинковыми пальцами. PLoS
ОДИН 2010; 5: e8870. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
22. Машимо Т., Такидзава А., Кобаяси Дж., Кунихиро Ю., Йошими К., Исида С., Танабэ К., Янаги А., Татибана А., Хиросе Дж., Йомода Дж., Моримото С., Курамото Т., Фойгт Б., Ватанабэ Т., Хиай Х., Татено С., Комацу К., Серикава Т. Создание и характеристика крыс с тяжелым комбинированным иммунодефицитом. Сотовые отчеты за 2012 г.; 2: 685–694. [PubMed] [Google Scholar]
23. Самата Б., Кикучи Т., Мияваки Ю., Моризанэ А., Масимо Т., Накагава М., Окита К., Такахаши Дж. Крысы с Х-сцепленным тяжелым комбинированным иммунодефицитом (X-SCID) для ксенотрансплантации и поведенческой оценки. Джей Нейроски Методы 2015; 243: 68–77. [PubMed] [Google Scholar]
24. Katsukawa M, Nakajima Y, Fukumoto A, Doi D, Takahashi J.
Безотказная терапия гамма-облучением против опухолевого образования, вызванного плюрипотентными стволовыми клетками человека, полученными из нейральных предшественников.
Стволовые клетки Dev 2016; 25: 815–825. [PubMed] [Академия Google]
25. Кристиан М., Чермак Т., Дойл Э.Л., Шмидт С., Чжан Ф., Хуммель А., Богданове А.Дж., Войтас Д.Ф. Нацеливание на двухцепочечные разрывы ДНК с помощью эффекторных нуклеаз TAL. Генетика 2010; 186: 757–761. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
26. Miller JC, Tan S, Qiao G, Barlow KA, Wang J, Xia DF, Meng X, Paschon DE, Leung E, Hinkley SJ, Dulay GP, Hua К.Л., Анкудинова И., Кост Г.Дж., Урнов Ф.Д., Чжан Х.С., Холмс М.С., Чжан Л., Грегори П.Д., Ребар Э.Дж. Нуклеазная архитектура TALE для эффективного редактирования генома. Нац биотехнология 2011; 29: 143–148. [PubMed] [Google Scholar]
27. Масимо Т., Канеко Т., Сакума Т., Кобаяши Дж., Кунихиро Ю., Фойгт Б., Ямамото Т., Серикава Т.
Эффективное нацеливание на гены с помощью эффекторных нуклеаз TAL, введенных совместно с экзонуклеазами в зиготы.
Научный представитель 2013 г .;
3: 1253. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
28. Сакума Т., Очиай Х., Канеко Т., Масимо Т., Токумасу Д., Сакане Ю., Судзуки К., Миямото Т., Сакамото Н., Мацуура С., Ямамото Т. Повторяющийся паттерн не-RVD вариаций в ДНК-связывающих модулях усиливает активность TALEN. Научный представитель 2013 г .; 3: 3379. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
29. Cong L, Ran FA, Cox D, Lin S, Barretto R, Habib N, Hsu PD, Wu X, Jiang W, Marraffini LA, Zhang F. Мультиплексная инженерия генома с использованием систем CRISPR/Cas. Наука 2013; 339: 819–823. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
30. Мали П., Ян Л., Эсвельт К.М., Аах Дж., Гуэлл М., ДиКарло Дж.Э., Норвилл Дж.Э., Черч Г.М. Инженерия генома человека с помощью РНК с помощью Cas9. Наука 2013; 339: 823–826. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
31. Йошими К., Канеко Т., Фойгт Б., Масимо Т.
Аллель-специфическое редактирование генома и коррекция ассоциированных с заболеванием фенотипов у крыс с использованием платформы CRISPR-Cas.
Нат
Коммуна 2014; 5: 4240. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
32. Йошими К., Кунихиро Ю., Канеко Т., Нагахора Х., Фойгт Б., Масимо Т. Опосредованное ssODN нокаут-ин с CRISPR-Cas для больших геномных областей в зиготах. Нацкоммуна 2016; 7: 10431. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
33. Taketsuru H, Kaneko T. Эффективный сбор и криоконсервация эмбрионов инбредных крыс линии F344. Криобиология 2013; 67: 230–234. [PubMed] [Академия Google]
34. Гурьев В., Уорли К., Сонг Х., Хиш С.В., Чжао С., Гольдштейн С., Хаузер Х., Адамс Д., Шварц Д., Масимо Т., Тойода А., Фудзияма А., Войт Б., Серикава Т., Гиббс Р., Куппен E. Последовательность генома лабораторных крыс: прогресс и будущие задачи. В : Модели крысиного генома; 2012 г.; Кембридж, Великобритания. Аннотация Т41. [Google Scholar]
35. Саар К., Бек А., Бихоро М.Т., Бирни Э., Броклбанк Д., Чен Ю., Куппен Э., Демончи С., Допазо Дж., Фличек П., Фольо М., Фудзияма А., Гут И.
Г., Гогье Д., Гиго Р., Гурьев В., Хайниг М., Хуммель О., Ян Н., Клагес С., Крен В., Кубе М., Куль Х., Курамото Т., Куроки Ю., Лехнер Д., Ли Ю.А., Лопес-Бигас Н., Латроп Г.М., Масимо Т., Медина И., Мотт Р., Патоне Г., Перрье-Корне Дж. А., Платцер М., Правенец М., Райнхардт Р., Сакаки Ю., Шильхабель М., Шульц Х., Серикава Т., Шихагаиэ М., Тацумото С., Таудиен С., Тойода А., Фойгт Б., Зеленика Д., Зимдал Х., Хабнер Н. Консорциум STAR. SNP и картирование гаплотипов для генетического анализа крыс. Нат Жене, 2008 г.; 40:
560–566. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
36. Sung YH, Kim JM, Kim HT, Lee J, Jeon J, Jin Y, Choi JH, Ban YH, Ha SJ, Kim CH, Lee HW, Kim JS. Высокоэффективный нокаут генов у мышей и рыбок данио с помощью РНК-управляемых эндонуклеаз. Геном Res 2014; 24: 125–131. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
37. Аида Т., Чиё К., Усами Т., Исикубо Х., Имахаши Р., Вада Ю., Танака К.Ф., Сакума Т., Ямамото Т., Танака К.
Система CRISPR/Cas без клонирования облегчает нокаут функциональной кассеты у мышей.
Геном Биол 2015;
16: 87. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
38. Грабарек Ю.Б., Плюса Б., Гловер Д.М., Зерницка-Гетц М. Эффективная доставка дцРНК в ооциты мышей, окруженные оболочкой, и преимплантационные эмбрионы путем электропорации. Бытие 2002; 32: 269–276. [PubMed] [Google Scholar]
39. Peng H, Wu Y, Zhang Y. Эффективная доставка ДНК и морфолино в преимплантационные эмбрионы мыши с помощью электропорации. ПЛОС ОДИН 2012; 7: е43748. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
40. Бронсон Р.А., Макларен А. Перенос яйцеклетки мыши с блестящей оболочкой и без нее. J Reprod Fertil 1970; 22: 129–137. [PubMed] [Google Scholar]
41. Modliński JA. Роль блестящей оболочки в развитии яиц мышей in vivo. J Embryol Exp Morphol 1970; 23: 539–547. [PubMed] [Google Scholar]
42. Канеко Т., Сакума Т., Ямамото Т., Масимо Т.
Простой нокаут путем электропорации сконструированных эндонуклеаз в интактных эмбрионах крыс. Научный представитель 2014 г .
;
4: 6382. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
43. Канеко Т. Редактирование генома мыши и крысы методом электропорации. Методы Мол Биол 2017; 16:30: 81–89. [PubMed] [Google Scholar]
44. Канеко Т., Масимо Т. Простое редактирование генома интактных эмбрионов грызунов методом электропорации. ПЛОС ОДИН 2015; 10: е0142755. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
45. Qin W, Dion SL, Kutny PM, Zhang Y, Cheng AW, Jillette NL, Malhotra A, Geurts AM, Chen YG, Wang H. Эффективное CRISPR/Cas9-опосредованное редактирование генома у мышей с помощью электропорации зиготы нуклеазы. Генетика 2015; 200: 423–430. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
46. Takahashi G, Gurumurthy CB, Wada K, Miura H, Sato M, Ohtsuka M. GONAD: редактирование генома с помощью системы доставки нуклеиновых кислот в яйцеводах: новый независимый от микроинъекций метод инженерии генома у мышей. Научный представитель 2015 г .; 5: 11406. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
47.
Ким К., Рю С.М., Ким С.Т., Пэк Г., Ким Д., Лим К., Чон Э., Ким С., Ким Д.С.
Высокоэффективное редактирование оснований под управлением РНК у эмбрионов мышей. Нац биотехнология 2017; 35:
435–437. [PubMed] [Google Scholar]
48. Remy S, Chenouard V, Tesson L, Usal C, Menoret S, Brussel L, Heslan JM, Nguyen TH, Bellien J, Merot J, De Cian A, Giovannangeli C, Concordet JP , Анегон И. Создание крыс с отредактированными генами путем доставки белка CRISPR/Cas9 и донорской ДНК в интактные зиготы с помощью электропорации. наука 2017 г.; 7: 16554. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
49. Teixeira M, Py BF, Bosc C, Laubreton D, Moutin MJ, Marvel J, Flamant F, Markossian S. Электропорация зигот мыши с комплексами РНК/Cas9 с двойной направляющей для простого и эффективного редактирования генома без клонирования. наука Респ. 2018; 8: 474. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
50. Утсуми К., Хочи С., Иритани А.
Криопротекторное действие полиолов на эмбрионы крыс при двухэтапном замораживании.
Криобиология 1992; 29:
332–341. [PubMed] [Google Scholar]
51. Такахаши Р., Хирабаяши М., Уэда М. Получение трансгенных крыс с использованием криоконсервированных зигот пронуклеарной стадии. Трансгенный Рез 1999; 8: 397–400. [PubMed] [Google Scholar]
52. Liu J, Woods EJ, Agca Y, Critser ES, Critser JK. Криобиология крысиных эмбрионов II: Теоретическая модель разработки процедур прерывистой медленной заморозки. Биол Репрод 2000; 63: 1303–1312. [PubMed] [Google Scholar]
53. Коно Т., Судзуки О., Цунода Ю. Криоконсервация бластоцист крыс методом витрификации. Криобиология 1988; 25: 170–173. [PubMed] [Google Scholar]
54. Тада Н., Сато М., Мизороги Т., Касаи К., Огава С. Эффективная криоконсервация бесшерстных мутантных (лысых) и нормальных эмбрионов крыс линии Вистар методом витрификации. Лаборатория Аним наука 1995; 45: 323–325. [PubMed] [Google Scholar]
55. Исаченко В.В., Исаченко Е.Ф., Осташко Ф.И., Грищенко В.И.
Сверхбыстрая заморозка эмбрионов крыс с быстрым разведением проницаемых криопротекторов.
Криобиология 1997;
34: 157–164. [PubMed] [Google Scholar]
56. Jiang JY, Umezu M, Sato E. Витрификация двухклеточных эмбрионов крыс, полученных от неполовозрелых крыс rdw с гипотиреозом, путем оплодотворения in vitro в среде на основе этиленгликоля. решения. Криобиология 1999; 38: 160–164. [PubMed] [Академия Google]
57. Это Т., Такахаши Р., Камисако Т., Хиоки К., Сотомару Ю. Исследование раствора криопротектора, подходящего для витрификации эмбрионов крыс на стадии двух клеток. Криобиология 2014; 68: 147–151. [PubMed] [Google Scholar]
58. Хан М.С., Нива К., Касаи М. Витрификация эмбрионов крыс на разных стадиях развития. Териогенология 2003; 59: 1851–1863 гг. [PubMed] [Google Scholar]
59. Накацукаса Э., Иномата Т., Икеда Т., Сино М., Кашивазаки Н. Получение живых потомков крыс путем внутриматочной инсеминации придатками сперматозоидов, криоконсервированных при -196 градусов С. Репродукция 2001 г.; 122: 463–467. [PubMed] [Google Scholar]
60.
Накацукаса Э., Кашивазаки Н., Такидзава А., Сино М., Китада К., Серикава Т., Хакамата Ю., Кобаяши Э., Такахаши Р., Уэда М., Накашима Т., Накагата Н.
Криоконсервация сперматозоидов закрытых колоний, а также инбредных, спонтанно-мутантных и трансгенных линий крыс. Комп
Мед 2003; 53: 639–641. [PubMed] [Google Scholar]
61. Benson JD, Woods EJ, Walters EM, Critser JK. Криобиология сперматозоидов. Териогенология 2012; 78: 1682–169 гг.9. [PubMed] [Google Scholar]
62. Янагимати Р. Интрацитоплазматическая инъекция сперматозоидов и сперматогенных клеток: ее биология и применение у людей и животных. Репрод Биомед Онлайн 2005; 10: 247–288. [PubMed] [Google Scholar]
63. Гото К., Киношита А., Такума Ю., Огава К. Оплодотворение бычьих ооцитов инъекцией иммобилизованных, убитых сперматозоидов. Ветеринарная рекомендация 1990 г.; 127: 517–520. [PubMed] [Google Scholar]
64. Kimura Y, Yanagimachi R.
Ооциты мыши, инъецированные тестикулярными сперматозоидами или круглыми сперматидами, могут развиваться в нормальное потомство.
Развитие 1995; 121: 2397–2405. [PubMed] [Google Scholar]
65. Уэхара Т., Янагимати Р. Микрохирургическая инъекция сперматозоидов в яйцеклетки хомяков с последующей трансформацией ядер сперматозоидов в мужские пронуклеусы. Биол Репродукция 1976 г .; 15: 467–470. [PubMed] [Google Scholar]
66. Уэхара Т., Янагимати Р. Поведение ядер сперматозоидов яичка, головки и хвоста придатка яичка, инъецированных в яйца хомяков. Биол Репродукция 1977 г .; 16: 315–321. [PubMed] [Google Scholar]
67. Огура А., Огонуки Н., Мики Х., Иноуэ К. Микроинсеминация и перенос ядер с использованием мужских половых клеток. Int Rev Cytol 2005; 246: 189–229. [PubMed] [Google Scholar]
68. Канеко Т. Простое сохранение гамет и искусственное воспроизводство млекопитающих с использованием методов микроосеменения. Репродукт Мед Биол 2014; 14: 99–105. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
69. Kimura Y, Yanagimachi R.
Интрацитоплазматическая инъекция спермы мыши. Биол Репрод 1995; 52:
709–720.
[PubMed] [Google Scholar]
70. Палермо Г., Джорис Х., Деврой П., Ван Стейртегем А.С. Беременность после интрацитоплазматической инъекции одного сперматозоида в ооцит. Ланцет 1992; 340: 17–18. [PubMed] [Google Scholar]
71. Дозорцев Д., Вакаяма Т., Ермилов А., Янагимачи Р. Внутрицитоплазматическая инъекция спермы крысе. Зигота 1998; 6: 143–147. [PubMed] [Google Scholar]
72. Хирабаяши М., Като М., Аото Т., Секимото А., Уэда М., Миёси И., Касаи Н., Хочи С. Потомство, полученное в результате интрацитоплазматической инъекции спермы трансгенной крысы. Трансгенный Рез 2002; 11: 221–228. [PubMed] [Google Scholar]
73. Хирабаяши М., Като М., Аото Т., Уэда М., Хочи С. Спасение бесплодных линий трансгенных крыс путем интрацитоплазматической инъекции криоконсервированных круглых сперматид. Мол Репрод Дев 2002 г.; 62: 295–299. [PubMed] [Google Scholar]
74. Канеко Т., Кимура С., Накагата Н.
Потомство, полученное из ооцитов, инъецированных спермой крыс, замороженных или лиофилизированных без криозащиты.
Териогенология 2007; 68: 1017–1021. [PubMed] [Google Scholar]
75. Вакаяма Т., Уиттингем Д.Г., Янагимати Р. Получение нормального потомства из ооцитов мышей, которым вводили криоконсервированные сперматозоиды с криозащитой или без нее. J Репродукция Фертил 1998; 112: 11–17. [PubMed] [Google Scholar]
76. Kusakabe H, Szczygiel MA, Whittingham DG, Yanagimachi R. Поддержание генетической целостности замороженных и лиофилизированных сперматозоидов мышей. Proc Natl Acad Sci USA 2001; 98: 13501–13506. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
77. Wakayama T, Yanagimachi R. Развитие нормальных мышей из ооцитов, которым вводили лиофилизированные сперматозоиды. Нац биотехнология 1998; 16: 639–641. [PubMed] [Google Scholar]
78. Канеко Т., Уиттингем Д.Г., Оверстрит Дж.В., Янагимати Р. Толерантность ядер сперматозоидов мышей к лиофилизации зависит от их дисульфидного статуса. Биол Репрод 2003; 69: 1859–1862. [PubMed] [Google Scholar]
79. Канеко Т.
, Накагата Н.
Улучшение долгосрочной стабильности лиофилизированных сперматозоидов мыши путем добавления хелатирующего агента.
Криобиология 2006; 53: 279–282. [PubMed] [Google Scholar]
80. Канеко Т., Уиттингем Д.Г., Янагимати Р. Влияние значения рН лиофилизированного раствора на целостность хромосом и способность к развитию сперматозоидов мышей. Биол Репродукция 2003 г.; 68: 136–139. [PubMed] [Google Scholar]
81. Хирабаяси М., Като М., Ито Дж., Хочи С. Жизнеспособное потомство крыс, полученное из ооцитов, интрацитоплазматически инъецированных лиофилизированными головками сперматозоидов. Зигота 2005; 13: 79–85. [PubMed] [Google Scholar]
82. Канеко Т. Лиофилизация спермы и микроосеменение для биобанкинга и поддержания генетического разнообразия у млекопитающих. Репрод Фертил Дев 2016; 28: 1079–1087. [PubMed] [Google Scholar]
83. Канеко Т., Кимура С., Накагата Н.
Важность условий первичной культуры для развития эмбрионов крыс ИКСИ и длительного сохранения лиофилизированной спермы.
Криобиология 2009; 58: 293–297. [PubMed] [Google Scholar]
84. Канеко Т., Серикава Т. Успешное долгосрочное сохранение спермы крыс путем лиофилизации. ПЛОС ОДИН 2012; 7: е35043. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
85. Канеко Т., Серикава Т. Длительное хранение лиофилизированных сперматозоидов мышей. Криобиология 2012; 64: 211–214. [PubMed] [Академия Google]
86. Кусакабэ Х. Хромосомная целостность и повреждение ДНК в лиофилизированных сперматозоидах. Репрод Мед Биол 2011; 10: 199–210. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
87. Канеко Т. Простая консервация спермы путем лиофилизации для сохранения штаммов животных. Методы Мол Биол 2015; 1239: 317–329. [PubMed] [Google Scholar]
88. Biggers JD. Испарительная сушка сперматозоидов мышей. Reprod Biomed Online 2009; 19 (доп. 4): 4338. [PubMed] [Google Scholar]
89. Dickey RP, Lu PY, Sartor BM, Dunaway HE, Jr, Pyrzak R, Klumpp AM.
Шаги, предпринятые для защиты и спасения криоконсервированных эмбрионов во время урагана Катрина.
Фертиль Стерил 2006;
86: 732–734. [PubMed] [Академия Google]
90. Канеко Т., Ито Х., Сакамото Х., Онума М., Иноуэ-Мураяма М. Сохранение спермы путем сублимационной сушки для сохранения диких животных. ПЛОС ОДИН 2014; 9: е113381. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
Репродукция и генетику мгновенного скота. рентабельность любого мясного предприятия. На этой странице вы узнаете все, что нужно знать о супоросности мясного скота, воспроизводстве, скрещивании и искусственном осеменении. Ознакомьтесь с полезными советами по выбору подходящего быка, хранению замороженной спермы и обращению с ней, а также по улучшению воспроизводства с помощью пищевых жиров.
Управление воспроизводством мясного скота – скрещивание и ИО
Адекватное питание и уход являются неотъемлемой частью плана воспроизводства мясного скота. Генетическая практика, хотя ее часто упускают из виду, не менее важна. При правильном выполнении такие методы, как отбор породы, скрещивание и искусственное осеменение (ИО), могут повысить эффективность и продуктивность стада.
Отбор породы и скрещивание
В мясной промышленности скрещивание крупного рогатого скота обеспечивает два основных преимущества: объединение сильных сторон различных пород и использование преимущества гетерозиса.
Сегодня существует большое разнообразие мясных пород крупного рогатого скота, каждая из которых имеет свои уникальные черты, которые позволяют им преуспевать в различных условиях. При выборе быка учитывайте свои цели и выбирайте животное, которое может улучшить вашу работу там, где это необходимо.
К популярным видам мясного скота относятся ангус, симменталь, шароле, салер и гельбви. Обратите внимание, что генетически разные породы обычно проявляют больше гетерозиса, чем породы, которые генетически схожи.
Искусственное осеменение крупного рогатого скота
Искусственное осеменение (ИО) в животноводстве является одним из наиболее эффективных способов повышения продуктивности. ИО в коммерческих стадах мясных пород дает ряд преимуществ, таких как использование превосходной генетики, получение ремонтных телок и повышение производительности роста.
Искусственное осеменение также может внести положительные изменения в программы скрещивания. Используя ИИ, операции с говядиной могут избежать инбридинга и зафиксировать дополнительный гетерозис.
Выявление охоты и проблемы бесплодия
При реализации плана воспроизводства ключевыми факторами являются эффективное выявление охоты и своевременное осеменение. Неспособность идентифицировать коров в охоте или неправильное время осеменения может привести к увеличению периода между отелями и дополнительным расходам.
Для успешного обнаружения охоты производители должны хорошо понимать эстральный цикл. Это поможет распознать признаки течки и увидеть, как они сочетаются с другими поведенческими признаками на протяжении всего цикла.
Однако иногда коровы не размножаются, несмотря на точное определение охоты. Это может быть вызвано многими причинами, такими как неправильное обращение со спермой быков, изменение погоды или проблемы с репродуктивной функцией.
Проблемы бесплодия у мясного скота
Плохое питание является одной из основных причин репродуктивных проблем у крупного рогатого скота. Другие факторы включают стресс, генетику, неправильную технику осеменения, плохое состояние организма, неправильное использование лекарств/гормонов и некоторые заболевания.
Беременность и отел мясных коров
Продолжительность беременности крупного рогатого скота может варьироваться в зависимости от породы, физического состояния, возраста и пола. Обычно продолжительность беременности составляет от 279 до 287 дней.
Отел у разных коров протекает по-разному. На этапе подготовки у коров могут проявляться такие признаки, как снижение аппетита, расслабление тазовых связок, впадина между нижними костями и головкой хвоста, а также напряжение. Стандартная доставка обычно занимает от 30 минут до часа. Телкам, однако, может потребоваться до 3-4 часов. Ознакомьтесь с нашими ресурсами по отелу и подготовке к сезону отела.